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    桂花殘?jiān)锌傸S酮的提取及抗氧化作用研究

    2015-12-16 07:57:22劉軍海李志洲王俊宏
    中國飼料 2015年10期
    關(guān)鍵詞:殘?jiān)?/a>抗壞血酸提取液

    劉軍海, 李志洲, 王俊宏, 鄭 楠

    (陜西理工學(xué)院化學(xué)與環(huán)境科學(xué)學(xué)院,陜西漢中 723000)

    天然植物黃酮具有抗腫瘤、抗氧化、抗菌等生理作用,能夠維持腸道菌落平衡,提高機(jī)體免疫力,促進(jìn)動(dòng)物生長,降低料肉比。除此之外,還具有類雌激素作用,可提高動(dòng)物繁殖能力,而且安全無毒(占今舜等,2014;陳佩佩等,2012)。 研究發(fā)現(xiàn),桂花殘?jiān)泻胸S富的黃酮類化合物,如果將這一資源利用起來作為飼料添加劑的來源,不僅降低了飼料成本,也提高了桂花的綜合利用價(jià)值(朱沛沛等,2012;王麗梅等,2012)。本試驗(yàn)研究了微波預(yù)處理對酶解法提取桂花殘?jiān)傸S酮的影響,通過正交試驗(yàn)優(yōu)化了提取工藝條件,并對其抗氧化活性進(jìn)行研究,旨在為桂花殘?jiān)傸S酮在飼料工業(yè)中的應(yīng)用提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料及儀器 桂花殘?jiān)?,粉碎后恒溫干燥備用;蘆丁(中國藥品生物制品檢驗(yàn)所,純度≥98%);纖維素酶(15000 U/g,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);乙醇、NaNO2、Al(NO)3、醋酸鈉、冰醋酸、硫酸亞鐵、雙氧水、水楊酸、抗壞血酸、2,2-二苯代苦味?;诫禄―PPH)等均為分析純。

    GR-200電子天平 (日本 AND)、pHS-3TC(0.01級)精密酸度計(jì)(上海天達(dá)儀器有限公司)、WF-2000微波快速反應(yīng)系統(tǒng)(上海屹堯分析儀器有限公司)、DHG-9075A型電熱鼓風(fēng)箱(上海一恒科技有限公司)、Cary50型紫外可見分光光度計(jì)(美國瓦里安)、80-1型離心機(jī) (江蘇金壇正基儀器有限公司)、FW117中草藥粉碎機(jī)(天津泰斯特儀器有限公司)、SHZ-D9(Ⅲ)循環(huán)水式真空泵(鞏義市予華儀器有限公司)。

    1.2 試驗(yàn)方法

    1.2.1 蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 采用NaNO2-Al(NO3)3比色法測定總黃酮含量(王桃云等,2009)。精密稱取0.010 g在60℃烘干至恒重的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品,置100 mL的容量瓶中,用體積分?jǐn)?shù)為60%的乙醇定容,配制濃度為0.2 mg/mL的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)液,精密量取蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液 0、1.0、2.0、4.0、6.0、8.0、10 mL,分別移入7個(gè)25 mL的容量瓶中,先加入0.3 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為5%的NaNO2,搖勻,靜置6 min,再加入 0.3 mL 質(zhì)量分?jǐn)?shù)為 10%的 Al(NO3)3,靜置6 min,待溶液充分絡(luò)合,顏色不再變化后加入4 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)為4%的NaOH,最后用體積分?jǐn)?shù)為60%的乙醇定容至刻度線,在510 nm處測定吸光度,分別以蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液及測定的吸光度為橫縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,回歸方程為:

    A=15.05C+0.0114,R2=0.9984;

    式中:A為吸光度值;C為蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液,mg/mL。

    1.2.2 桂花殘?jiān)傸S酮的提取 稱取備用的桂花殘?jiān)勰?.000 g,倒入50 mL錐形瓶中,加入60%體積分?jǐn)?shù)的乙醇,移入微波反應(yīng)系統(tǒng),根據(jù)設(shè)定的參數(shù)進(jìn)行微波預(yù)處理后再加入緩沖液調(diào)節(jié)pH,在恒溫水浴槽中進(jìn)行酶解。酶解完成后得到的提取液經(jīng)過抽濾、離心,取上清液作為提取液的最終測定樣本測定桂花殘?jiān)傸S酮吸光度,計(jì)算提取率。

    將測定的桂花殘?jiān)傸S酮的吸光度回代入標(biāo)準(zhǔn)曲線方程中求出對應(yīng)的濃度C,按下式計(jì)算提取率。

    桂花殘?jiān)傸S酮提取率/(mg/g)=VCX/W;

    式中:V為測定液的體積;C為桂花殘?jiān)傸S酮測定樣品液濃度;X為桂花殘?jiān)傸S酮提取液稀釋總倍數(shù);W為每次提取加入的桂花殘?jiān)|(zhì)量,g。

    1.3 桂花殘?jiān)傸S酮的抗氧化活性試驗(yàn)

    1.3.1 清除羥自由基活性研究 參照陳佳等(2011)和孟娜(2014)的方法,將微波預(yù)處理酶法最佳工藝條件下提取的桂花殘?jiān)傸S酮提取液配制成不同質(zhì)量濃度梯度的溶液8份,相同質(zhì)量濃度的抗壞血酸作為對比,每個(gè)質(zhì)量濃度的提取液均取2.00 mL移入25 mL的容量瓶中,依次加入6.0 mmol/L的硫酸亞鐵 2.0 mL,1.0 mmol/L的雙氧水2.0 mL混合均勻,靜置10 min后再加入6.0 mmol/L的水楊酸2.0 mL,反應(yīng)30 min于510 nm處測定吸光度,記為A0;用雙氧水代替水楊酸測得的吸光度記為A1;以蒸餾水代替提取液所測得的吸光度記為A2。每次試驗(yàn)重復(fù)三次,以其平均值作為最終的試驗(yàn)值,按下式計(jì)算清除率:

    羥自由基清除率/%=[1-(A0-A1)/A2]×100。

    1.3.2 清除DPPH自由基活性研究 參照孟娜等(2014)和丁振柱(2011)的方法,將微波預(yù)處理酶法最佳工藝條件下提取的桂花殘?jiān)傸S酮提取液配制成不同質(zhì)量濃度梯度的溶液8份,每個(gè)質(zhì)量濃度的溶液均取2.0 mL移入10 mL的具塞試管中,再加入2.0 mL濃度為0.06 mg/mL的DPPH自由基溶液(用60%體積分?jǐn)?shù)的乙醇溶解0.06 mg的DPPH自由基,轉(zhuǎn)移到100 mL棕色的容量瓶中定容),混合均勻后反應(yīng)30 min,于4000 r/min離心10 min,取上清液在波長517 nm處測定吸光度,記為A0;另移取2.0 mL不同質(zhì)量濃度的總黃酮溶液于10 mL的具塞試管中,分別加入無水乙醇2.0 mL,在波長517 nm處測定其吸光度,記為A1;以2.0 mL 0.03 mg/mL的DPPH自由基溶液和2.0 mL無水乙醇反應(yīng)作為參比測定吸光度,記為A2;以抗壞血酸作為對照。每個(gè)試驗(yàn)平行測定三次,取平均值作為最終試驗(yàn)數(shù)據(jù)。按下式計(jì)算清除率:

    DPPH 自由基清除率/%=[1-(A0-A1)/A2]×100。

    1.4 正交試驗(yàn)因素與水平 基于單因素試驗(yàn)結(jié)果,選取試驗(yàn)所涉及的5個(gè)單因素作為影響因子,桂花殘?jiān)傸S酮提取率為響應(yīng)值,設(shè)計(jì)正交試驗(yàn)進(jìn)一步考察酶法提取桂花殘?jiān)傸S酮中酶解時(shí)間、纖維素酶用量、料液比、pH及酶解溫度對桂花殘?jiān)傸S酮提取率的影響,并優(yōu)化篩選出最佳提取工藝參數(shù),正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素與水平見表1。

    表1 正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素與水平

    2 試驗(yàn)結(jié)果與分析

    2.1 微波預(yù)處理對酶法提取桂花殘?jiān)傸S酮的影響 稱取1 g桂花殘?jiān)勰┓湃?0 mL的錐形瓶中,加入25 mL體積分?jǐn)?shù)為60%的乙醇,轉(zhuǎn)入微波反應(yīng)系統(tǒng)中預(yù)處理1 min,微波溫度50℃,微波功率300 W。預(yù)處理后移出,加入纖維素酶8 mg,調(diào)節(jié)pH=6,在50℃條件下酶解。桂花殘?jiān)傸S酮提取率在微波預(yù)處理和未經(jīng)微波預(yù)處理情況下隨酶解時(shí)間延長的變化結(jié)果如圖1所示。

    圖1 微波預(yù)處理對桂花殘?jiān)傸S酮提取效果的影響

    由圖1可以看出,與未經(jīng)微波預(yù)處理組相比,微波預(yù)處理組不僅提取率高而且縮短了提取時(shí)間。微波預(yù)處理組酶解40 min的提取率和未經(jīng)預(yù)處理組酶解90 min的提取效果基本相當(dāng),微波預(yù)處理組酶解60 min時(shí)提取率最高達(dá)到25.19 mg/g,而未經(jīng)微波預(yù)處理酶解60 min提取率僅為17.33 mg/g。微波輻射能加快分子熱運(yùn)動(dòng),細(xì)胞內(nèi)的壓強(qiáng)不斷增大最終破壞細(xì)胞壁,再經(jīng)過充分酶解,桂花殘?jiān)械目傸S酮更易溶出而被提取出來。微波預(yù)處理對酶解過程具有一定的協(xié)同及促進(jìn)作用。

    2.2 單因素試驗(yàn)結(jié)果及分析

    2.2.1 纖維素酶用量對桂花殘?jiān)傸S酮提取率的影響 稱取1 g桂花殘?jiān)勰┓湃?0 mL的錐形瓶中,加入25 mL的體積分?jǐn)?shù)為60%的乙醇,添加不同量的纖維素酶,用緩沖液調(diào)節(jié)pH=6,在50℃條件下酶解60 min,考察纖維素酶用量對桂花殘?jiān)傸S酮提取量的影響,結(jié)果如圖2所示。

    圖2 纖維素酶用量對桂花殘?jiān)傸S酮提取率的影響

    纖維素酶能破壞桂花殘?jiān)募?xì)胞壁,有助于總黃酮的溶出。由圖2可知,纖維素酶用量在10 mg時(shí)桂花殘?jiān)锌傸S酮的提取率最大,這主要是因?yàn)槔w維素酶添加量較少,桂花殘?jiān)募?xì)胞壁破壞不完全,黃酮不能全部釋放出來;纖維素酶添加量較多進(jìn)一步促進(jìn)了破壁效果,各種醇溶性雜質(zhì)競相溶出,但同時(shí)也容易和桂花殘?jiān)械亩嗵穷愇镔|(zhì)黏附,堵塞總黃酮的部分溶出通道,因此提取率減小,故10 mg纖維素酶的效果最好。

    2.2.2 料液比對桂花殘?jiān)傸S酮提取率的影響 稱取1 g桂花殘?jiān)勰┓湃?0 mL錐形瓶中,配制成不同的料液比,添加8 mg纖維素酶,用緩沖液調(diào)節(jié)pH=6,在50℃條件下酶解60 min,考察料液比對桂花殘?jiān)傸S酮含量的影響,結(jié)果如圖3所示。

    圖3 料液比對桂花殘?jiān)傸S酮提取率的影響

    由圖3可知,并不是料液比越大提取率越高。料液比在1∶35 g/mL時(shí)桂花殘?jiān)傸S酮的提取率最大,料液比小,一方面?zhèn)髻|(zhì)速率小,另一方面酶在提取劑中分散空間有限容易黏結(jié),活性受到影響,因此提取效果不好;料液比增大溶劑消耗量大且提取率增幅不明顯,對于優(yōu)化工藝來說沒有太大意義,1∶25~1∶35 g/mL 桂花殘?jiān)奶崛÷时容^接近,綜合考慮提取成本及提取率,選擇1∶25g/mL為最佳料液比。

    2.2.3 pH對桂花殘?jiān)傸S酮提取率的影響 稱取1 g桂花殘?jiān)勰┓湃?0 mL的錐形瓶中,加入25 mL體積分?jǐn)?shù)為60%的乙醇,添加8 mg纖維素酶,用緩沖液調(diào)節(jié)為不同的pH,在50℃條件下酶解60 min,考察pH對桂花殘?jiān)傸S酮含量的影響,結(jié)果如圖4所示。

    圖4 pH對桂花殘?jiān)傸S酮提取率的影響

    纖維素酶的活性高對應(yīng)的桂花殘?jiān)傸S酮提取率就高,pH是影響纖維素酶活性的重要因素。由圖4可知,弱酸環(huán)境對纖維素酶活性的影響非常明顯,桂花殘?jiān)傸S酮在pH=6時(shí)提取率最高,偏堿性的環(huán)境中纖維素酶容易失活,總黃酮的提取效果不好,因此,提取時(shí)選擇pH=6較好。

    2.2.4 酶解溫度對桂花殘?jiān)傸S酮提取率的影響稱取1 g桂花殘?jiān)勰┓湃?0 mL的錐形瓶中,加入25 mL的體積分?jǐn)?shù)為60%的乙醇,添加8 mg纖維素酶,用緩沖液調(diào)節(jié)pH=6,在不同溫度條件下酶解60 min,考察酶解溫度對桂花殘?jiān)傸S酮含量的影響,結(jié)果如圖5所示。

    圖5 酶解溫度對桂花殘?jiān)傸S酮提取率的影響

    溫度是酶解過程中一個(gè)重要的影響因素,酶在適宜的溫度下才會(huì)有效地進(jìn)行酶解反應(yīng)。由圖5可知,桂花殘?jiān)傸S酮提取率隨酶解溫度的升高先增大后減小,60℃時(shí)提取率最高。低溫不足以激發(fā)纖維素酶的活性,高溫又容易使纖維素酶失活而且能耗高,因此選擇60℃作為較佳的酶解溫度。

    2.3 正交試驗(yàn)結(jié)果及分析 以酶解時(shí)間、纖維素酶用量、料液比、pH、酶解溫度為正交試驗(yàn)的5個(gè)影響因子,桂花殘?jiān)傸S酮提取率為指標(biāo),通過L16(45)正交試驗(yàn)優(yōu)化酶法提取桂花殘?jiān)傸S酮的提取工藝。 結(jié)果如表1所示。

    表1 正交試驗(yàn)結(jié)果

    由表1可知,pH對酶法提取桂花殘?jiān)傸S酮影響最大,其余依次為酶解溫度、酶解時(shí)間、纖維素酶用量及料液比。pH和酶解溫度影響纖維素酶的活性,直接決定桂花殘?jiān)傸S酮的提取,因此在試驗(yàn)過程中要嚴(yán)格控制,合理調(diào)節(jié)。正交試驗(yàn)優(yōu)化的最佳工藝參數(shù)為:酶解70 min,纖維素酶用量8 mg,料液比 1∶30 g/mL,pH=6,酶解溫度 60 ℃。由于正交試驗(yàn)中無此組合,因此要對其進(jìn)行驗(yàn)證。在優(yōu)化的試驗(yàn)條件下進(jìn)行三次平行試驗(yàn),所得提取率分別為 26.416、26.183、26.274 mg/g, 效果優(yōu)于其他組合的提取率,故取其平均值26.291 mg/g為正交優(yōu)化條件下的最終提取率。

    2.4 桂花殘?jiān)傸S酮提取液性質(zhì)研究

    2.4.1 抗氧化活性研究

    2.4.1.1 清除羥自由基活性 由圖6可知,總黃酮和抗壞血酸對羥自由基的清除效果均與質(zhì)量濃度呈正比關(guān)系,總體來看,桂花殘?jiān)傸S酮提取液清除羥自由基能力不及抗壞血酸,高濃度時(shí)的桂花殘?jiān)傸S酮提取液對羥自由基的清除能力接近抗壞血酸,具有較好的抗氧化活性。桂花殘?jiān)傸S酮提取液質(zhì)量濃度為0.06 mg/mL時(shí)清除羥自由基能力大于抗壞血酸,低濃度的桂花殘?jiān)傸S酮提取液清除羥自由基能力與抗壞血酸相比沒有優(yōu)勢。

    圖6 羥自由基清除試驗(yàn)結(jié)果

    2.4.1.2 清除DPPH自由基活性 由圖7可知,濃度在0.04~0.06 mg/mL,桂花殘?jiān)傸S酮提取液清除DPPH自由基能力強(qiáng)于抗壞血酸。低濃度范圍內(nèi),隨著總黃酮提取液質(zhì)量濃度的增大,DPPH自由基的清除率增長較快,濃度大于0.14 mg/mL之后清除率基本不變,而大于此濃度的抗壞血酸的清除率依然繼續(xù)增大,最大清除率達(dá)到91.016%,桂花殘?jiān)傸S酮提取液對DPPH的最大清除率為77.472%。雖然桂花殘?jiān)傸S酮提取液清除DPPH自由基能力整體沒有抗壞血酸好,但還是具有一定的清除DPPH自由基能力。

    3 結(jié)論

    圖7 DPPH自由基清除試驗(yàn)結(jié)果

    3.1 微波預(yù)處理能縮短酶法提取桂花殘?jiān)傸S酮的提取時(shí)間,同時(shí)提取率也得到大幅度的提升。正交試驗(yàn)優(yōu)化的最佳工藝參數(shù)為:酶解時(shí)間70 min,纖維素酶用量 8 mg,料液比 1∶30 g/mL,pH=6,酶解溫度60℃,此條件下的提取率為26.291 mg/g。

    3.2 桂花殘?jiān)傸S酮提取液對DPPH自由基和羥自由基均有很強(qiáng)的清除能力,作為飼料抗氧化劑能減少因自由基引發(fā)疾病的發(fā)病率,提高禽畜機(jī)體免疫力.

    注:因版面所限參考文獻(xiàn)省略,如有需要,可來函索取。電子郵箱:iamliujunhai@126.com

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