許國光, 熊 雯, 林炎群, 屠 美,2, 曾 戎,2, 容建華,2, 趙劍豪,2
(1.暨南大學(xué)理工學(xué)院材料科學(xué)與工程系,廣東廣州510632;2.人工器官及材料教育部工程研究中心,廣東廣州510632)
聚烯烴等不可降解塑料的廣泛應(yīng)用已引起日益嚴(yán)重的“白色污染”問題[1-2].填埋、焚燒和回收利用等傳統(tǒng)處理手段存在占用大量土地、釋放有毒氣體和高回收成本等缺點,使用可完全生物降解塑料才是解決“白色污染”的根本途徑.聚丁二酸丁二醇酯(poly butylene succinate,PBS)因其可生物降解性、低成本、力學(xué)性能好和易加工等優(yōu)點而成為最有發(fā)展前景的可生物降解塑料[3-4].PBS在堆肥條件下的降解研究表明,PBS可被微生物降解成二氧化碳、水和生物質(zhì),顯示出環(huán)境友好性[5-7].但是,微生物降解的過程復(fù)雜,一般認(rèn)為,PBS先在微生物酶的催化作用下水解成水溶性的低分子量中間產(chǎn)物,然后再被微生物同化吸收生成二氧化碳和水.研究這些水溶性中間產(chǎn)物的組成及其對周圍環(huán)境和微生物的影響,對從本質(zhì)上揭示PBS在環(huán)境中的生物降解行為和環(huán)境友好性有重要意義,但目前國內(nèi)外對相關(guān)研究鮮有報道.
本實驗研究了PBS薄膜在堆肥微生物作用下的生物降解行為,對薄膜表面形貌、水溶性降解產(chǎn)物的組成及其對降解介質(zhì)pH值和微生物的影響進(jìn)行了分析.
PBS(Mn=7.4×104Da):上海昭和高分子有限公司;堆肥菌種(含有多種環(huán)境微生物群):廣州農(nóng)冠生物科技有限公司;基礎(chǔ)培養(yǎng)液(pH=7.2)[8]:1 L 無菌水中含有 1.0 g(NH4)2SO4,0.2 g KH2PO4,1.6 g K2HPO4,0.2 g MgSO4·7H2O,0.1 g NaCl,0.02 g CaCl2·2H2O,0.01 g FeSO4·7H2O,0.5 mg Na2MoO4·2H2O,0.5 mg Na2WO4·2H2O,0.5 mg MnSO4.其他試劑均為分析純,天津大茂化學(xué)試劑廠.
場發(fā)射掃描電子顯微鏡(UltraTM55 FESEM,德國Zeiss公司);pH計(Mettler Toledo,中國);超高效液相色譜-質(zhì)譜儀(UPLC-MS)(Waters UPLC XEVO TQMS,美國).
PBS薄膜的制備:PBS薄膜由澆鑄成型法制備.用氯仿配制質(zhì)量濃度為0.03 g·mL-1的PBS溶液,澆鑄到培養(yǎng)皿中,室溫下使大部分溶劑緩慢揮發(fā)后,再真空干燥3 d以除盡殘余的氯仿,得到厚度約為200 μm的PBS薄膜,裁成1 cm×1 cm的小片待用.
PBS薄膜的生物降解:將一定量的堆肥微生物分散到10 mL的基礎(chǔ)培養(yǎng)液中得到2.8×107/mL的微生物懸浮液,然后加入30 mg經(jīng)體積分?jǐn)?shù)為75%酒精消毒的PBS薄膜,在搖床中(130 r,30℃)培養(yǎng)10 W.相同條件下,無微生物作用下的PBS薄膜降解作為對照組.
PBS薄膜在生物降解前后的表面形貌用SEM觀察.加速電壓為5 kV,觀察前PBS薄膜進(jìn)行噴金處理.
PBS薄膜在降解過程中水溶性降解中間產(chǎn)物對介質(zhì)pH值的影響用pH計測定.
微生物生長評價:通過菌落生長法評價水溶性降解中間產(chǎn)物對微生物生長的影響[4].將質(zhì)量為10 g蛋白胨,3 g濃縮牛肉汁,5 g NaCl和20 g瓊脂溶解于1 L去離子水中制成pH=7.0的營養(yǎng)瓊脂.經(jīng)高壓蒸汽滅菌(100 kPa,120℃,30 min)后,將營養(yǎng)瓊脂倒到培養(yǎng)皿中冷至室溫.然后,將100 μL經(jīng)過稀釋的含有微生物的降解液涂布到營養(yǎng)瓊脂表面,在30℃下培養(yǎng)72 h.最后計數(shù)營養(yǎng)瓊脂表面上的菌落數(shù).
水溶性產(chǎn)物分析:用超高效液相色譜-質(zhì)譜儀(UPLC-MS)(Waters UPLC XEVO TQMS,美國)分析水溶性降解中間產(chǎn)物的組成.色譜柱為Waters Spheisorb C18 column(250 mm ×4.6 mm,5 μm),流動相為體積分?jǐn)?shù) 0.1%乙酸/乙腈(v乙酸∶v乙腈=70∶30),流速為0.2 mL/min.使用電噴霧離子化源(ESI)和正離子(+H+)模式進(jìn)行質(zhì)譜分析:毛細(xì)管電壓2.5 kV,錐孔電壓20 kV,離子源溫度150℃,去溶劑化溫度350℃,N2流速650 L/h.采用選擇離子檢測技術(shù)(SIM)對質(zhì)荷比(m/z)為0~600的各種水溶性降解產(chǎn)物進(jìn)行分析.
PBS薄膜在降解前后的表面形貌如圖1所示.降解前,PBS薄膜表面光滑,但非生物降解10 W后,膜表面明顯變粗糙,這是由于PBS薄膜表面發(fā)生水解,生成的降解產(chǎn)物從表面剝離后形成的[9].而在生物降解組,可看到許多桿狀微生物在PBS薄膜上黏附,并長出偽足;同時還可看到在微生物所在的位置下面出現(xiàn)孔洞.這可能是兩方面因素引起的:①降解產(chǎn)生的水溶性產(chǎn)物分散到了介質(zhì)中;②降解產(chǎn)生的水溶性產(chǎn)物被微生物同化吸收.根據(jù)形貌特征,這些桿狀微生物很可能是桿狀細(xì)菌[7].
圖1 PBS薄膜在非生物降解與生物降解條件下的SEM圖(a)before degradation,(b)after abiotic degradation for 10 weeks,(c,d)after biotic degradation for 10 weeks.Fig.1 SEM images of PBS films for abiotic and biotic degradations
降解產(chǎn)生的水溶性中間產(chǎn)物對介質(zhì)pH值的影響如圖2所示.在整個非微生物降解過程中,pH值都在7.0左右浮動,這說明此條件下降解產(chǎn)物對介質(zhì)pH值影響不大.相反,在微生物作用下,pH值在前兩周從7.2下迅速降至3.8,然后慢慢地回升至7.2左右.pH值的顯著下降應(yīng)該與降解產(chǎn)生大量酸性水溶性產(chǎn)物有關(guān)[10].而隨后 pH值回彈,這可能是生成的酸性產(chǎn)物逐漸被微生物消化,導(dǎo)致酸性產(chǎn)物濃度下降的原因.因為在這個體系中,PBS是微生物的唯一碳源,微生物依靠對降解產(chǎn)物的同化吸收來獲得營養(yǎng)而生長.這說明在PBS膜發(fā)生降解的過程中也同時存在微生物對降解產(chǎn)物同化吸收的過程.圖3a是微生物隨降解時間的生長曲線,與pH值的變化趨勢相似,正好說明pH值的變化與微生物以酸性產(chǎn)物為碳源的生長有關(guān).另外,從圖3b還可看出,在pH值最低的第2周(pH=3.8),有許多微生物死亡,這說明微生物的生長受到酸性環(huán)境的抑制.此后,pH值逐漸回升,微生物快速生長,這可能是隨著降解時間的延長,微生物的數(shù)量越來越多,對降解產(chǎn)物的消耗也越來越快,所以介質(zhì)的pH不斷回升,從而酸化的影響也逐漸消失了.可見,介質(zhì)pH值的變化和微生物的生長取決于酸性產(chǎn)物的生成速率和微生物對產(chǎn)物的同化速率的相對快慢.
圖2 在非生物降解與生物降解條件下介質(zhì)pH值隨降解時間的變化曲線圖Fig.2 Change in medium pH as a function of time during abiotic and biotic degradations
圖3 微生物活性隨降解時間的變化和PBS薄膜在生物降解2周后的SEM照片(a)Microorganism viability as a function of time in biotic degradation,(b)SEM image of PBS film surface after biotic degradation for 2 weeksFig.3 Microorganism viability as a function of time in biotic degradation and SEM image of PBS film surface after biotic degradation for 2 weeks
圖4是PBS薄膜在降解2周時生成的水溶性降解產(chǎn)物的UPLC譜圖.在4.5 min處是溶劑峰,其他峰為各種降解產(chǎn)物的吸收峰.由圖可見,在微生物降解條件下,所有產(chǎn)物組分的峰強(qiáng)度都要高于非微生物降解,這說明微生物的作用會使PBS薄膜降解產(chǎn)生更多的水溶性產(chǎn)物.其實,微生物對PBS的降解除了生成水溶性的小分子產(chǎn)物外,也會生成非水溶性的大分子產(chǎn)物.但是只有當(dāng)分子量小于600的小分子產(chǎn)物才能夠被微生物吞噬吸收,分子量大的降解產(chǎn)物必須先降解成小分子產(chǎn)物,才能被微生物同化代謝.所以,本實驗只研究分子量在600以下的水溶性小分子產(chǎn)物.但是,由于水溶性產(chǎn)物多種多樣,因而缺少相應(yīng)的內(nèi)標(biāo)物便無法用UPLC來定性分析.為此,本實驗采用選擇離子檢測技術(shù)和正離子模式(+H+)來對m/z為0~600的這些水溶性降解產(chǎn)物進(jìn)行定性分析.圖5是各種水溶性降解產(chǎn)物的SIM質(zhì)譜圖,圖中 m/z為91,119,209,327,417,507和535的質(zhì)譜峰,依次歸屬于1,4丁二醇(B)、丁二酸(S)及其低聚物 BS,BSB,SBS,BSBS,BSBSB和SBSBS.很明顯,在微生物降解的條件下,各個離子碎片的峰強(qiáng)要高于非微生物降解,說明PBS薄膜在微生物作用下產(chǎn)生的水溶性降解產(chǎn)物要比沒有微生物時要多,盡管同時存在微生物對水溶性產(chǎn)物的同化作用.這進(jìn)一步說明微生物的存在可以加快PBS薄膜的降解速率.但是,隨著降解時間的延長,不同產(chǎn)物相應(yīng)的峰強(qiáng)卻呈現(xiàn)不規(guī)則的變化,這可能與產(chǎn)物生成和產(chǎn)物被微生物同化吸收的協(xié)同作用有關(guān).值得注意的是,微生物降解第2周時m/z=119(來自于丁二酸碎片)的峰強(qiáng)比非微生物降解高很多,這是導(dǎo)致圖2中介質(zhì)pH值在第2周迅速下降的原因.
圖4 PBS薄膜在非生物降解與生物降解兩周后生成水溶性中間產(chǎn)物的UPLC曲線圖Fig.4 UPLC patterns of water soluble products from PBS films after abiotic and biotic degradations for 2 weeks respectively
圖5 各種水溶性中間產(chǎn)物的SIM質(zhì)譜圖(m/z<600,加H+)Fig.5 SIM mass spectra of water soluble products(m/z<600,plus H+)
本實驗研究了PBS薄膜在堆肥微生物作用下的生物降解行為,發(fā)現(xiàn)微生物的作用可以明顯加快PBS薄膜的降解,初期生成的水溶性酸性產(chǎn)物會使介質(zhì)酸化并對微生物的生長有一定的抑制作用,但隨著微生物對水溶性產(chǎn)物的不斷同化吸收,pH值逐漸回升,同時微生物的生長速率也不斷加快.這些水溶性降解產(chǎn)物主要是1,4-丁二醇、丁二酸單體和它們的低聚物.pH值和降解產(chǎn)物量的變化與產(chǎn)物生成和產(chǎn)物被微生物同化吸收的協(xié)同作用有關(guān).下一步工作主要是研究水溶性降解產(chǎn)物對生態(tài)系統(tǒng)(如植物生長)的影響.
[1]ZAHRA S,ABBAS S S,MAHSA M T,et al.Biodegra-dation of low-density polyethylene(LDPE)by isolated fungi in solid waste medium[J].Waste Management,2010,30(3):396-401.
[2]LUCKACHAN G E,PILLAI C K S.Biodegradable polymers-a review on recent trends and emerging perspectives[J].J.Polym.Environ.,2011,19(3):637 -676.
[3]ISHIOKA D R,KITAKUNI E,ICHIKAWA Y.Liphatic polyesters:‘bionolle’,biopolymers,polyesters III[M].Application and Commercial Products.Wiley-VCH Verlag Gmbh,Weinheim.2002.
[4]KIM H S,KIM H J,LEE J W,et al.Biodegradability of bio-flour filled biodegradable poly(butylene succinate)bio-composites in natural and compost soil[J].Polym.Degrad.Stabil.,2006,91(5):1117 -1127.
[5]CHANDRA R,RUSTGI R.Biodegradable polymers[J].Prog.Polym.Sci.,1998,23(7):1273 -1335.
[6]LUCAS N,BIENAIME C,BELLOY C,et al.Polymer biodegradation:Mechanisms and estimation techniques-a review[J].Chemosphere,2008,73(4):429 -442.
[7]ZHAO J H,WANG X Q,ZENG J,et al.Biodegradation of poly(butylene succinate-co-butylene adipate)by Aspergillus versicolor[J].Polym.Degrad.Stabil.,2005,90(1):173-179.
[8]SHIRAHAMA H,KAWAGUCHI Y,ALUDIN M S,et al.Synthesis and enzymatic degradation of high molecular weight aliphatic polyesters[J].J.Appl.Polym.Sci.,2001,80(3):340-347.
[9]ZHAO J H,WANG X Q,ZENG J,et al.Biodegradation of poly(butylene succinate)in compost[J].J.Appl.Polym.Sci.,2005,97(6):2273-2278.
[10]LINDSTR?M A,ALBERTSSON A C,HAKKARAINEN M.Development of a solid-phase extraction method for simultaneous extraction of adipic acid,succinic acid and 1,4-butanediol formed during hydrolysis of poly(butylene adipate)and poly(butylene succinate)[J].J.Chromatogr.A.,2004,1022(1/2):171-177.