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    腦蛋白水解物原料肽含量測(cè)定方法的改進(jìn)

    2015-09-14 09:12:20張?zhí)K閩湯曉樞周媛媛上海長(zhǎng)城藥業(yè)有限公司上海201707
    上海醫(yī)藥 2015年13期
    關(guān)鍵詞:緩沖液水解波長(zhǎng)

    張?zhí)K閩 湯曉樞 周媛媛(上海長(zhǎng)城藥業(yè)有限公司 上?!?01707)

    腦蛋白水解物原料肽含量測(cè)定方法的改進(jìn)

    張?zhí)K閩湯曉樞*周媛媛
    (上海長(zhǎng)城藥業(yè)有限公司上海201707)

    目的:優(yōu)化腦蛋白水解物原料肽含量測(cè)定方法。方法:采用Agilent Zorbax Eclipse-AAA色譜柱(4.6 mm×150 mm, 5 mm), 流動(dòng)相A:0.04 mol/L磷酸鹽緩沖液(pH 7.80), 流動(dòng)相B:乙腈-甲醇-水(45∶45∶10), 流速1.5 ml/min, 柱溫40 ℃, 檢測(cè)波長(zhǎng):338 nm, 262 nm, 梯度洗脫。結(jié)果:各種氨基酸的濃度在15.0~120.0 mg/ml范圍內(nèi)與峰面積呈良好的線(xiàn)性關(guān)系(r>0.999), 各種氨基酸的平均回收率為98.1%~103.6%。結(jié)論:該方法快速、簡(jiǎn)便、專(zhuān)屬性強(qiáng)、重復(fù)性好, 結(jié)果準(zhǔn)確可靠, 適用于腦蛋白水解物原料肽含量的測(cè)定。

    腦蛋白水解物原料肽含量測(cè)定氨基酸高效液相色譜

    腦蛋白水解物原料(國(guó)藥準(zhǔn)H31023028)為我們公司原料藥車(chē)間生產(chǎn)的原料藥,系健康豬的鮮大腦經(jīng)脫脂和水解而成。2013年6月28日國(guó)家藥典委員會(huì)發(fā)布了《關(guān)于腦蛋白水解物原料國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)的公示稿》,明確了需進(jìn)行腦蛋白水解物原料肽含量的測(cè)定,即需對(duì)腦蛋白水解物原料中游離及水解氨基酸含量進(jìn)行測(cè)定,并用于計(jì)算肽含量(肽含量=水解氨基酸含量-游離氨基酸含量)。

    大多數(shù)氨基酸不含有芳香環(huán)等生色團(tuán),無(wú)紫外吸收,需要先將氨基酸衍生為具有較強(qiáng)紫外或熒光吸收的衍生物[1]。氨基酸HPLC柱前衍生化的分析方法有多種,以Waters AccQ·Tag衍生法[2-4]、OPA-FMOC(鄰苯二甲醛—9-芴甲基氯甲酸酯)衍生法測(cè)定氨基酸最為常用[5-7]。本公司曾用OPA-FMOC衍生法測(cè)定腦蛋白水解物原料中游離及水解氨基酸含量(色譜柱Hypersil ODS-C18:4.6 mm×100 mm,5 mm,流動(dòng)相A:pH 7.20的醋酸鹽緩沖液,流動(dòng)相B:pH 7.20的醋酸鹽緩沖液-乙腈-甲醇,梯度洗脫)。但我們發(fā)現(xiàn)該種色譜條件在分析檢測(cè)氨基酸時(shí)存在以下問(wèn)題:①在同時(shí)分離16種氨基酸時(shí),部分氨基酸分離度差,系統(tǒng)適用性不佳;。②測(cè)定方法的重現(xiàn)性差;③進(jìn)行梯度洗脫的A、B相鹽濃度高,直接影響色譜柱的使用壽命;④該系統(tǒng)對(duì)pH較敏感,配制A、B相pH誤差會(huì)直接影響氨基酸的分離。本研究參考文獻(xiàn)優(yōu)化了腦蛋白水解物原料肽含量測(cè)定的方法[8]。

    1 儀器與試藥

    Agilent 1100液相色譜儀,DAD檢測(cè)器、自動(dòng)進(jìn)樣器(安捷倫科技中國(guó)有限公司)。Sartorius BP121S電子天平(賽多利斯科學(xué)儀器北京有限公司)。16種氨基酸對(duì)照品(批號(hào):140624-200805,中國(guó)藥品生物制品檢定所)。腦蛋白水解物原料(批號(hào):20101102)為本公司產(chǎn)品。甲醇、乙腈為色譜純,水為超純水,磷酸氫二鈉及其他試劑均為分析純。

    2 方法與結(jié)果

    2.1色譜條件

    Agilent Zorbax Eclipse-AAA色譜柱(4.6 mm×150 mm,5 mm),流動(dòng)相為A:0.04 mol/L磷酸鹽緩沖液(pH 7.8)(取磷酸二氫鈉(NaH2PO4·2H2O)6.24 g,加水1 000 ml溶解,用5 mol/L的氫氧化鈉溶液將pH調(diào)至7.80±0.05);流動(dòng)相B:乙腈-甲醇-水(45∶45∶10),按表1進(jìn)行梯度洗脫。柱溫:40 ℃。檢測(cè)波長(zhǎng):338 nm,262 nm。流速:1.5 ml/min.。

    表1 梯度洗脫

    2.216種氨基酸對(duì)照品溶液的配制

    對(duì)照品溶液的制備:稱(chēng)取16種氨基酸對(duì)照品各約30 mg,至100 ml容量瓶中,以0.04 mol/L鹽酸溶液溶解至刻度(對(duì)照品貯備液),再精密量取2 ml,至10 ml容量瓶中用水稀釋至刻度,搖勻,備用。

    2.3供試品溶液的配制

    游離氨基酸含量測(cè)定供試品溶液:精密稱(chēng)重腦蛋白水解物原料300 mg,置100 ml容量瓶中,加水溶解并超聲10 min,加水稀釋至刻度,濾過(guò),取續(xù)濾液作為游離氨基酸含量測(cè)定供試品溶液。

    水解氨基酸含量測(cè)定供試品溶液:精密稱(chēng)取腦蛋白水解物原料200 mg,置硬質(zhì)安瓿中,加鹽酸2 ml,搖勻,充氮封口,于110 ℃水解20 h,放冷,啟封后溶液置蒸發(fā)皿中,水浴蒸發(fā)至干,加水使殘留物溶解并稀釋至100 ml,作為水解氨基酸含量測(cè)定供試品溶液。

    2.4衍生化程序

    采用Agilent液相色譜儀自帶的柱前衍生的方法,設(shè)定進(jìn)樣程序,對(duì)所得的氨基酸樣品進(jìn)行衍生化反應(yīng),進(jìn)樣器程序設(shè)定見(jiàn)表2。

    表2 衍生進(jìn)樣程序設(shè)定

    氨基酸衍生試劑配制方法:

    小瓶 1:8 mg/ml鄰苯二甲醛(OPA)溶液:精密稱(chēng)取80 mg鄰苯二甲醛(OPA),依次加入7 ml硼酸緩沖液溶液、1 ml乙腈和125 ml 巰基丙酸,搖勻并溶解,即得。

    小瓶 2:5 mg/ml 9-芴甲基氯甲酸酯(FMOC)溶液:精密稱(chēng)取50 mg 9-芴甲基氯甲酸酯(FMOC),用乙腈溶解并稀釋至10 ml,搖勻并溶解,即得。

    小瓶 3:雙重蒸餾水。

    小瓶 4:硼酸緩沖液:精密稱(chēng)取1.236 g硼酸至50 ml容量瓶中,加水超聲至全部溶解,用40%氫氧化鈉溶液調(diào)節(jié)pH至10.2,即得。

    2.5方法學(xué)考察

    2.5.1系統(tǒng)適用性試驗(yàn)

    取需測(cè)定的16種氨基酸的對(duì)照品:門(mén)冬氨酸(Asp)、谷氨酸(Glu)、絲氨酸(Ser)、組氨酸(His)、甘氨酸(Gly)、蘇氨酸(Thr)、精氨酸(Arg)、丙氨酸(Ala)、纈氨酸(Val)、甲硫氨酸(Met)、色氨酸(Trp)、異亮氨酸(Ile)、苯丙氨酸(Phe)、亮氨酸(Leu)、鹽酸賴(lài)氨酸(Lys)、脯氨酸(Pro),依法配制對(duì)照品溶液,衍生后進(jìn)樣,進(jìn)行系統(tǒng)適用性試驗(yàn)(圖1)。

    圖1 色譜條件改進(jìn)前后16種氨基酸系統(tǒng)適用性試驗(yàn)色譜圖

    從圖1A可見(jiàn),在該色譜條件下,需測(cè)定的16種氨基酸均能完全分離,峰形佳,較圖1B中原色譜分離條件有了明顯的改善。分離度數(shù)據(jù)顯示(表3),改進(jìn)前16種氨基酸的分離度未完全達(dá)到藥典規(guī)定的分離度要求,纈氨酸與甲硫氨酸、亮氨酸與賴(lài)氨酸的分離度僅大于1.0,且甘氨酸與蘇氨酸未完全分離。經(jīng)色譜條件改進(jìn)優(yōu)化后各氨基酸的分離度均大于1.5,分離效果明顯改善,實(shí)現(xiàn)了16種氨基酸在同一色譜條件下的完全基線(xiàn)分離。

    表3 16種氨基酸峰分離度

    2.5.2線(xiàn)性范圍

    分別取16種氨基酸對(duì)照品配制成一系列濃度的混合對(duì)照品溶液,分別取上述對(duì)照品溶液衍生后進(jìn)樣,并計(jì)算16種氨基酸的線(xiàn)性回歸方程(表4)。

    表4 16種氨基酸線(xiàn)性試驗(yàn)

    結(jié)果顯示,16種氨基酸的濃度在約15.0~120.0 mg/ml范圍內(nèi)與峰面積呈良好的線(xiàn)性關(guān)系(r>0.999)。

    2.5.3精密度試驗(yàn)

    分別取16種氨基酸對(duì)照品溶液衍生后連續(xù)進(jìn)樣6次,結(jié)果見(jiàn)表5。

    連續(xù)進(jìn)樣6次16種氨基酸峰面積偏差的RSD均<2.0%。可知該色譜條件下氨基酸測(cè)定方法的精密度較好。

    2.5.4重復(fù)性試驗(yàn)

    取同一批供試品,依法制備游離氨基酸和水解氨基酸供試品溶液各6份,衍生后分別測(cè)定游離、水解氨基酸的含量,并分別計(jì)算腦蛋白水解物原料肽含量(表6)。

    由表6結(jié)果可知:肽含量均值為419.5 mg/g,RSD小于2.0%,表明采用該方法測(cè)定腦蛋白水解物原料肽含量重復(fù)性較好,測(cè)定結(jié)果可靠。

    2.5.5溶液穩(wěn)定性試驗(yàn)

    取制備的游離氨基酸和水解氨基酸供試品溶液,分別于0、2、4、8、12、18、24 h衍生并進(jìn)樣檢測(cè),以0 h進(jìn)樣樣品的含量為100%,比較供試品溶液中各氨基酸的日內(nèi)穩(wěn)定性(表7)。

    表5 腦蛋白水解物原料肽含量測(cè)定精密度試驗(yàn)

    表6 腦蛋白水解物原料肽含量測(cè)定重復(fù)性試驗(yàn)(mg/g)

    表7 腦蛋白水解物原料供試品溶液穩(wěn)定性試驗(yàn)(%)

    結(jié)果顯示,游離和水解供試品溶液中所含16種氨基酸在24 h內(nèi)的含量變化的RSD均小于2.0%,表明供試品溶液在24 h內(nèi)穩(wěn)定,含量測(cè)定結(jié)果可靠。

    2.5.6加樣回收試驗(yàn)

    取供試品適量,按照高(120%)、中(100%)、低(80%)三個(gè)濃度加入含16種氨基酸的對(duì)照品儲(chǔ)備液,依法制備加樣回收的供試品溶液,每個(gè)濃度各3份。取上述加樣溶液衍生后進(jìn)樣,并計(jì)算加樣回收率(表8)。

    結(jié)果表明,游離、水解氨基酸含量測(cè)定中16種氨基酸的回收率均在98.1%~103.6%范圍內(nèi),RSD均小于2.0%,證明本方法回收率結(jié)果良好。

    2.6樣品測(cè)定

    取不同批次的腦蛋白水解物原料,依法制備游離、水解供試品溶液,并衍生化進(jìn)樣。測(cè)定并計(jì)算肽含量(表9)。

    表8 腦蛋白水解物原料肽含量測(cè)定加樣回收試驗(yàn)(%)

    表9 腦蛋白水解物肽含量測(cè)定(mg/g)

    3 討論

    3.1檢測(cè)器的選擇

    OPA-FMOC衍生法測(cè)定氨基酸,其中一級(jí)氨基酸(Asp、Glu、Ser、His、Gly、Thr、Arg、Ala、Val、Met、Trp、Ile、Phe、Leu、Lys共15種)首先與OPA反應(yīng),形成OPA-氨基酸,在338 nm下有最大吸收。二級(jí)氨基酸(Pro)則與FMOC衍生生成FMOC-氨基酸,在262 nm下有最大吸收。因加入吲哚與3-巰基丙酸相結(jié)合降低了氨基酸的疏水性,所以O(shè)PA衍生化產(chǎn)物較FMOC衍生化產(chǎn)物色譜出峰時(shí)間較早。

    在原有方法中,我們選用VWD檢測(cè)器進(jìn)行檢測(cè),并在一級(jí)氨基酸中最后出峰的鹽酸賴(lài)氨酸(Lys)出峰后設(shè)置一個(gè)波長(zhǎng)切換,檢測(cè)波長(zhǎng)由338 nm切換至262 nm,用于檢測(cè)二級(jí)氨基酸的脯氨酸(Pro)。該方法對(duì)使用的紫外檢測(cè)器要求不高,但因波長(zhǎng)切換導(dǎo)致檢測(cè)器的急速光柵變化,脯氨酸(Pro)出峰時(shí)檢測(cè)器未必達(dá)到穩(wěn)定的狀態(tài),且在波長(zhǎng)切換時(shí)如基線(xiàn)發(fā)生抖動(dòng),會(huì)在圖譜上形成一個(gè)較大的上升、下降平臺(tái),使得262 nm下脯氨酸檢測(cè)數(shù)據(jù)不穩(wěn)定。故我們建議采用DAD檢測(cè)器進(jìn)行兩級(jí)氨基酸的檢測(cè),即分別連續(xù)收集338 nm和262 nm兩個(gè)波長(zhǎng)的信號(hào),這樣保證了一級(jí)、二級(jí)氨基酸同時(shí)檢測(cè)的準(zhǔn)確性。

    3.2參比波長(zhǎng)的設(shè)定

    在A(yíng)gilent Zorbax Eclipse-AAA色譜柱說(shuō)明書(shū)中,明確規(guī)定了氨基酸檢測(cè)參比波長(zhǎng)的設(shè)定,參比波長(zhǎng)的設(shè)定參數(shù)如下:338 nm:10 nm帶寬(bw),參比波長(zhǎng):390 nm,20 nm帶寬(bw)(適用于OPA-氨基酸);262 nm:16 nm帶寬(bw),參比波長(zhǎng):324 nm,8 nm帶寬(bw)(適用于FMOC-氨基酸)。峰寬:>0.03 min(0.5 s)。狹縫間距:4 nm。

    在方法優(yōu)化過(guò)程中我們進(jìn)行了相關(guān)比對(duì)試驗(yàn),對(duì)比了其與工作站默認(rèn)參比波長(zhǎng)設(shè)置的區(qū)別,結(jié)果顯示采用這種參比波長(zhǎng)的設(shè)定,對(duì)于氨基酸檢測(cè)的圖譜起到了明顯的優(yōu)化作用,設(shè)定后梯度洗脫條件下色譜圖的基線(xiàn)較未設(shè)定前更平穩(wěn),不再有明顯漂移。各氨基酸峰的對(duì)稱(chēng)性也有改善,峰型更佳。從而提高了多種氨基酸含量測(cè)定的準(zhǔn)確性(圖2)。

    圖2 參比波長(zhǎng)優(yōu)化前后16種氨基酸的分析圖譜

    3.3流動(dòng)相的改進(jìn)

    原方法中使用的流動(dòng)相存在以下問(wèn)題:①流動(dòng)相A為pH 7.20的醋酸鹽緩沖液,流動(dòng)相B為pH 7.20的醋酸鹽緩沖液-乙腈-甲醇,兩相均為較高濃度的鹽溶液,對(duì)色譜柱、液相泵的使用壽命影響較大;②流動(dòng)相B為鹽溶液與有機(jī)溶劑的混合溶液,該混合溶液為不穩(wěn)定體系,在分析過(guò)程中可能會(huì)有鹽析出,影響氨基酸的分離;③該系統(tǒng)對(duì)流動(dòng)相pH非常敏感,要求我們配制A、B相的pH誤差范圍應(yīng)為7.20±0.05,如有誤差則會(huì)影響各氨基酸的分離度。

    改進(jìn)后的色譜條件A相為一定濃度的磷酸鹽溶液,B相則為不含鹽的乙腈、甲醇、水的混合液,降低了對(duì)色譜柱、液相泵的損耗。且該系統(tǒng)對(duì)流動(dòng)相的pH敏感性較低,pH的誤差對(duì)氨基酸分離的影響不大,也大大提高了流動(dòng)相配制的便捷性。

    3.4鹽酸對(duì)于色譜柱的損耗

    色氨酸、丙氨酸、纈氨酸、甲硫氨酸、異亮氨酸、苯丙氨酸、亮氨酸和脯氨酸為疏水氨基酸,均難溶于水,在原有操作規(guī)程中我們采用0.04 mol/L鹽酸溶液作為溶劑配制對(duì)照品溶液。在大量的試驗(yàn)過(guò)程中,我們發(fā)現(xiàn)鹽酸對(duì)于色譜柱存在損耗,使得色譜柱柱效下降,壽命縮短。故我們改進(jìn)了對(duì)照品溶液的配制方式。先將以上氨基酸配制為高濃度的對(duì)照品貯備液(配制濃度為測(cè)試濃度的5倍,溶劑為0.04 mol/L鹽酸溶液),使其完全溶解,再使用雙蒸水稀釋至合適濃度,這種配制方式大大降低了對(duì)照品溶液中鹽酸的濃度,更好的保護(hù)了色譜柱。

    在水解氨基酸樣品前處理時(shí),我們需將腦蛋白水解物原料用濃鹽酸水解后制備供試樣品溶液。在處理過(guò)程中我們將酸水解后的樣品水浴蒸干,再使用雙蒸水溶解并稀釋。這一過(guò)程的目的同樣是將供試品中的鹽酸盡可能去除,起到保護(hù)色譜柱的作用。

    4 結(jié)論

    經(jīng)方法學(xué)驗(yàn)證,本研究所建立的肽含量測(cè)定方法操作簡(jiǎn)便、專(zhuān)屬性強(qiáng),能準(zhǔn)確測(cè)定腦蛋白水解物原料中肽的含量。

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    Optimization of a method for the determination of peptide content in cerebroprotein hydrolysate

    ZHANG Sumin, TANG Xiaoshu*, ZHOU Yuanyuan
    (Shanghai Greatwall Pharmaceutical CO. LTD., Shanghai 201206, China)

    Objective: To optimize a method for the determination of peptide content in cerebroprotein hydrolysate. Methods: HPLC was performed on an Agilent Zorbax Eclipse-AAA column(4.6 mm×150 mm, 5 mm)with mobile phase A: 0.04 mol/L phosphate buffer (pH 7.8) and mobile phase B: acetonitrile-methanol-water (45:45:10) at UV detection wavelength of 338 nm and 262 nm, flow rate of 1.5 ml/min (gradient elution) and column temperature of 40 ℃. Results: The standard curve of every amino acid was linear over the range of 15.0~120.0 mg/ml (r>0.999)with average recovery 98.1%~103.6%. Conclusion: This method is simple, accurate, sensitive and reproducible, and can be applied in the determination of peptide content in cerebroprotein hydrolysate.

    cerebroprotein hydrolysate; determination of peptide content; amino acids; HPLC

    R927.2; O657.72

    A

    1006-1533(2015)13-0074-06

    湯曉樞(1979-), 男, 工程師, 從事化學(xué)與生化藥品研發(fā)工作。E-mail: tangxiaoshu_1979@126. com

    2015-03-03)

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