劉勝洪 周玲艷 楊妙賢 劉文 趙鋼
摘要:為了探究60Co-γ射線對(duì)紫花苜蓿誘變產(chǎn)生的微衛(wèi)星變異及其輻射敏感性,用2 000 Gy劑量的 60Co-γ 射線輻射處理紫花苜蓿WL525HQ的種子。紫花苜蓿WL525HQ在人工溫室栽培后,比較了輻照組和對(duì)照組之間各20個(gè)不同單株的簡單重復(fù)序列(simple sequence repeat,SSR)的多態(tài)性變化。結(jié)果表明:7對(duì)引物均可擴(kuò)增出紫花苜蓿WL525HQ的多態(tài)性位點(diǎn),其中有5對(duì)引物的多態(tài)性位點(diǎn)百分比達(dá)到100%。經(jīng)過計(jì)算該品種的多態(tài)性位點(diǎn)百分率(percentage of polymorphic band,PPB)值和多態(tài)性信息量(polymorphism information content,PIC)值發(fā)現(xiàn),輻射組的PPB平均值達(dá)97.73%,略低于對(duì)照組的98.94%;而輻射組的PIC平均值為0.853 0,略高于對(duì)照組的0.849 2。說明 60Co-γ 射線使紫花苜蓿不同單株之間的SSR位點(diǎn)多態(tài)性產(chǎn)生了一定程度的變異,但也體現(xiàn)出WL525HQ品種對(duì)60Co-γ 射線具有較高的耐受力。
關(guān)鍵詞:紫花苜蓿;輻射;SSR;多態(tài)性;WL525HQ
中圖分類號(hào): S335.2+1 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A 文章編號(hào):1002-1302(2015)07-0238-03
紫花苜蓿(Medicago sativa L.)屬多年生優(yōu)良豆科牧草,是世界上種植最多、應(yīng)用較為廣泛、生產(chǎn)潛力大的重要牧草。由于紫花苜蓿具有適應(yīng)性強(qiáng)、品質(zhì)好、產(chǎn)量高等優(yōu)點(diǎn),素有“牧草之王”的美譽(yù),在現(xiàn)代草業(yè)和畜牧業(yè)的可持續(xù)發(fā)展中占有重要地位[1]。
研究表明,通過空間誘變、零磁空間誘變、輻射誘變均可引起苜蓿DNA水平上的變異[2-3],其中,60Co-γ輻射誘變是苜蓿育種的重要手段之一。60Co-γ射線具有能量高、穿透力強(qiáng)的特點(diǎn),可造成DNA分子堿基變化、脫氧核糖變化、單鏈斷裂、雙鏈斷裂以及DNA交聯(lián)等,致使染色體發(fā)生變異,從而對(duì)苜蓿的某些性狀進(jìn)行改良[4]。目前,苜蓿的誘變育種工作已經(jīng)在國內(nèi)外廣泛展開,苜蓿的輻射敏感性、育種的適宜劑量及其輻射誘變規(guī)律等工作成為各國學(xué)者普遍關(guān)注和研究的課題[5]。
與其他DNA分子標(biāo)記相比,簡單重復(fù)序列(simple sequence repeat,SSR)標(biāo)記具有數(shù)量豐富、信息含量高、重復(fù)性好等特點(diǎn),并且SSR標(biāo)記覆蓋整個(gè)基因組,呈現(xiàn)多基因特點(diǎn),表現(xiàn)為共顯性遺傳[6-7]。因此本研究利用SSR分子標(biāo)記技術(shù)可以在基因組范圍內(nèi)較廣泛地觀察紫花苜蓿的變異情況,對(duì)于苜蓿育種研究具有一定的指導(dǎo)意義。
1 材料與方法
1.1 輻照處理與種植
本試驗(yàn)所用的材料為WL525HQ紫花苜蓿,在華大生物科技有限公司輻照中心進(jìn)行60Co-γ輻射處理,輻射劑量為 2 000 Gy,對(duì)照組為未經(jīng)輻射處理。紫花苜蓿種子用0.1% HgCl2消毒5 min,然后用去離子水沖洗3次后播種于仲愷農(nóng)業(yè)工程學(xué)院鐘村教學(xué)農(nóng)場(chǎng)大棚內(nèi)。分別取20張輻照處理組、對(duì)照組植株的幼嫩葉片進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。
1.2 DNA的提取及PCR擴(kuò)增產(chǎn)物檢測(cè)
分別取輻照處理組、對(duì)照組苜蓿葉片0.1 g,放入研缽,加入約1 g石英砂、1.6 mL提取液[2%十二烷基硫酸鈉(sodium dodecyl sulfate,SDS)、15%聚乙烯吡咯烷酮-40、0.9% NaCl、 6.2% NaAc·3H2O、5% HAc],提取方法采用十二烷基硫酸鈉法[8],并通過1.2%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)DNA質(zhì)量。
采用9對(duì)穩(wěn)定性好、多態(tài)性高的 SSR 引物[9-11](表1)進(jìn)行擴(kuò)增。擴(kuò)增反應(yīng)體系為:0.5 μL DNA樣品(30 ng),2 μL 10×buffer,1.2 μL MgCl2(25 mmol/L),0.5 μL dNTPs(10 mmol/L),04 μL上游引物(10 μmol/L),0.4 μL下游引物(10 μmol/L),1 μL Taq 酶(0.5 U/μL),15.6 μL雙蒸水。擴(kuò)增程序?yàn)椋?5 ℃預(yù)變性 5 min;94 ℃變性 50 s,55~57 ℃退火 45 s,72 ℃延伸 50 s,35個(gè)循環(huán);72 ℃延伸 10 min。擴(kuò)增產(chǎn)物采用含7 mol/L尿素的 6%變性聚丙烯酰胺凝膠電泳分離,銀染檢測(cè)。
1.3 數(shù)據(jù)分析與統(tǒng)計(jì)
根據(jù)條帶的有無,在Excel表格上構(gòu)建0,1矩陣圖,多態(tài)性位點(diǎn)百分率(percentage of polymorphic band,PPB)按照以下公式計(jì)算:
多態(tài)性百分率=多態(tài)性位點(diǎn)數(shù)量/總位點(diǎn)數(shù)量×100%。
等位位點(diǎn)頻率的計(jì)算方法參考等位基因的頻率計(jì)算方法[12]:等位位點(diǎn)頻率p=位點(diǎn)數(shù)量/總位點(diǎn)數(shù)量。計(jì)算出等位位點(diǎn)頻率后,用Picalc軟件計(jì)算位點(diǎn)的多態(tài)性信息量(polymorphism information content,PIC)。
2 結(jié)果與分析
2.1 DNA的提取
本研究采用高鹽低pH值的SDS核酸提取法[8]。瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果表明,點(diǎn)樣孔清晰無雜質(zhì),基因組DNA條帶清晰完整(圖1)。紫外分光光度結(jié)果分析表明,樣品D320 nm值接近 0,D260 nm/D280 nm值在 1.85~1.98之間,說明提取的DNA 純度較高,符合 PCR擴(kuò)增的要求。
2.2 PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的電泳檢測(cè)
用7對(duì)SSR引物對(duì)紫花苜蓿處理組、對(duì)照組的DNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增。結(jié)果表明, 7對(duì)引物的主要擴(kuò)增位點(diǎn)位于 100~200 bp之間,處理組和對(duì)照間的SSR位點(diǎn)發(fā)生了不同程度的變化,僅有少量片段未發(fā)生變化,如W6019引物擴(kuò)增的位點(diǎn)在110 bp 處變化不明顯(圖2中的D1、D2)。從圖2中的A1、A2、B1、B2來看,引物Afca1、Afca11在輻射處理后SSR擴(kuò)增帶數(shù)量未發(fā)生變化;從圖2中的D1、D2、F1、F2看,引物W6019、Alf2在輻射處理后SSR擴(kuò)增帶數(shù)量出現(xiàn)增加,條帶位置有所改變;其余的3對(duì)引物在輻射處理后SSR擴(kuò)增條帶數(shù)量均減少(圖2中的C1、C2、E1、E2、G1、G2)。
2.3 輻射處理苜蓿的多態(tài)性分析
通過PCR擴(kuò)增結(jié)果進(jìn)一步統(tǒng)計(jì)各個(gè)SSR位點(diǎn)的多態(tài)性,結(jié)果如表1所示。可見所使用的7對(duì)引物均可擴(kuò)增出多態(tài)性位點(diǎn),引物Afca1、Afca11在苜蓿輻射處理后的SSR擴(kuò)增總位點(diǎn)數(shù)未發(fā)生變化;引物W6019、Alf2在苜蓿輻射處理后SSR擴(kuò)增總位點(diǎn)數(shù)出現(xiàn)增加的現(xiàn)象,條帶位置有所改變;其余的3對(duì)引物在輻射處理后SSR擴(kuò)增總位點(diǎn)數(shù)均減少。7對(duì)引物中有5對(duì)引物的多態(tài)性位點(diǎn)百分率達(dá)到100%。經(jīng)過計(jì)算苜蓿的PPB值、PIC值后發(fā)現(xiàn),對(duì)照組的PPB平均值略高于輻射處理組,而對(duì)照組的PIC平均值略低于輻射處理組。說明 2 000 Gy 劑量的60Co-γ輻射對(duì)紫花苜蓿WL525HQ品種有一定的誘變作用,同時(shí)紫花WL525HQ對(duì)60Co-γ射線具有較高的耐受力。
3 結(jié)論與討論
紫花苜蓿是多年生豆科植物,其葉、莖均含有較多的蛋白質(zhì)、酚類、單寧等次生代謝物。因此,在提取苜蓿基因組DNA的時(shí)候,應(yīng)該選取含有次生代謝產(chǎn)物較少的幼嫩葉片,比較有利于DNA的提取。高質(zhì)量DNA的提取是植物基因組研究的基礎(chǔ)[13]。本研究使用的高鹽低pH值的核酸提取方法能抑制或避免細(xì)胞內(nèi)各種物質(zhì)與核酸發(fā)生反應(yīng),有效去除核蛋白,抑制各種酶活性,適用多種植物中提取DNA和RNA[14]。本研究提取的DNA樣品中雖然存在少量RNA,但依然取得了較好的PCR擴(kuò)增效果。
苜蓿是異花授粉植物,品種內(nèi)個(gè)體間基因型雜合,在種子繁育時(shí)通常采用開放式授粉,品種內(nèi)個(gè)體間相互傳粉造成個(gè)體間基因型不同[9],有學(xué)者利用PL34HQ(南澳品系) 品種自交系進(jìn)行SSR研究,發(fā)現(xiàn)苜蓿品種內(nèi)不同單株間存在多態(tài)性差異[15]。另外,各地農(nóng)業(yè)品種主管部門在苜蓿品種的選育過程中亦未將分子標(biāo)記作為選育依據(jù)。因此,本研究對(duì)照組的不同單株間存在多態(tài)性差異。
目前,植物誘變育種主要利用化學(xué)誘變、紫外線誘變、輻射誘變、太空誘變等手段,對(duì)植物的種子、枝條、愈傷組織(離體培養(yǎng))等進(jìn)行誘變,均已證明可以引起植物微衛(wèi)星DNA發(fā)生變異[16]。利用誘發(fā)突變技術(shù)能夠誘發(fā)各種有用的基因突變,產(chǎn)生自然界稀有的或用常規(guī)方法較難獲得的新類型、新性狀、新基因。輻射誘變技術(shù)已成為我國科學(xué)工作者開創(chuàng)農(nóng)作物誘變遺傳改良的一種有效途徑[17]。
但是,不同作物或同種作物不同品種對(duì)誘變存在生理或遺傳的敏感差異。不同品種的一品紅的生理指標(biāo)因輻射敏感性不同而隨輻射呈現(xiàn)完全不同的變化趨勢(shì)[18];葉開玉等對(duì)4個(gè)獼猴桃品種輻照后的嫁接成活率、植株生長量的調(diào)查發(fā)現(xiàn),隨輻射劑量的變化,獼猴桃的嫁接成活率及生長量在品種間差異較大[19];章鐵等發(fā)現(xiàn),蘭花在輻射后,突變體與對(duì)照品種之間有穩(wěn)定的分子多態(tài)性差異[20];在對(duì)茄子[21]、甘藍(lán)型油菜[22]、大豆[23]、苜蓿[24]、茶樹[25]和芝麻[26]的誘變研究中發(fā)現(xiàn),作物對(duì)誘變的敏感性可分為極敏感型、敏感型、中間型、遲鈍型4個(gè)類型[27]。通過本研究發(fā)現(xiàn),紫花苜蓿WL525HQ品種在60Co-γ射線照射后,其微衛(wèi)星位點(diǎn)發(fā)生了一定程度的變異,但其具有較高的60Co-γ射線耐受力,屬輻照遲鈍型[24,27]。因此,在實(shí)際輻照育種過程中可選擇適當(dāng)?shù)妮椪談┝浚蕴岣咦魑锲贩N的成活率和變異率。
參考文獻(xiàn):
[1]尹 強(qiáng),武海霞,王志軍,等. 環(huán)境因子對(duì)苜蓿田間自然干燥的影響[J]. 草地學(xué)報(bào),2013,21(1):188-195.
[2]楊紅善,常根柱,包文生. 紫花苜蓿的航天誘變[J]. 草業(yè)科學(xué),2013,30(2):253-258.
[3]劉錄祥,鄭企成. 空間誘變與作物改良[M]. 北京:原子能出版社,1997.
[4]朱彩霞,古佳玉,邵 群,等. 植物DNA雙鏈斷裂損傷修復(fù)機(jī)制研究進(jìn)展[J]. 中國農(nóng)業(yè)科技導(dǎo)報(bào),2010,12(5):17-23.
[5]張?jiān)聦W(xué),楊茹冰,徐香玲,等. 60Co-γ射線輻射紫花苜蓿種子的細(xì)胞生物學(xué)效應(yīng)研究[J]. 湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2007,33(S1):142-146.
[6]劉衛(wèi)東. SSR標(biāo)記分離技術(shù)的研究概況[J]. 咸寧學(xué)院學(xué)報(bào),2007,27(6):80-84.
[7]Akkaya M S,Bhagwat A A,Cregan P B. Length polymorphism of simple sequence repeat DNA markers in soybean[J]. Genetics,1992(132):1131-1139.
[8]劉 文,柯輝鵬,梁 紅. 動(dòng)植物總核酸提取試驗(yàn)[J]. 仲愷農(nóng)業(yè)技術(shù)學(xué)院學(xué)報(bào),2008,21(3):17-21.
[9]王小山,陳志宏,韓建國,等. 采用微衛(wèi)星(SSR)標(biāo)記研究苜蓿品種鑒定初報(bào)[J]. 草地學(xué)報(bào),2007,15(4):344-347.
[10]魏臻武,符 昕,耿小麗,等. 苜蓿遺傳多樣性和親緣關(guān)系的SSR和ISSR分析[J]. 草地學(xué)報(bào),2007,15(2):118-123.
[11]魏臻武. 利用SSR、ISSR和RAPD技術(shù)構(gòu)建苜?;蚪MDNA指紋圖譜[J]. 草業(yè)學(xué)報(bào),2004,13(3):62-67.
[12]Frankham R,Ballou J D,Briscoe D A.保育遺傳學(xué)[M]. 黃宏文,康明,譯. 北京:科學(xué)出版社,2005:48.
[13]樸政玉,曲柏宏,孫祎龍. 苜?;蚪M總DNA提取及RAPD反應(yīng)條件優(yōu)化[J]. 湖北農(nóng)業(yè)科學(xué),2006,45(4):403-405.
[14]劉 文,梁 紅,楊碧忍,等. 一種高等植物小片段RNA分子標(biāo)記方法[J]. 生物多樣性,2012,20(1):86-93.
[15]武自念,魏臻武,趙 艷,等. 多葉苜蓿自交一代遺傳關(guān)系的SSR分析[J]. 中國草地學(xué)報(bào),2010,32(6):27-33.
[16]潘偉明,劉 文,楊妙賢,等. 武植3號(hào)中華獼猴桃微衛(wèi)星DNA變異的研究[J]. 湖北農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,49(10):2344-2347,2352.
[17]劉錄祥,郭會(huì)君,趙林姝,等. 我國作物航天育種20年的基本成就與展望[J]. 核農(nóng)學(xué)報(bào),2007,21(6):589-592,601.
[18]李 暢,蘇家樂,劉曉青,等. 不同敏感型一品紅品種對(duì)60Co γ線輻照誘變的生理響應(yīng)[J]. 揚(yáng)州大學(xué)學(xué)報(bào):農(nóng)業(yè)與生命科學(xué)版,2010,31(4):95-98.
[19]葉開玉,李潔維,蔣橋生,等. 獼猴桃60Co-γ射線輻射誘變育種適宜劑量的研究[J]. 廣西植物,2012,32(5):694-697.
[20]章 鐵,劉秀清,孫曉莉,等. 60Co-γ射線輻射誘變蝴蝶蘭M1代花型突變體的RAPD分析[J]. 激光生物學(xué)報(bào),2011,20(1):27-31.
[21]何娟娟,劉富中,陳鈺輝,等. 茄子航天誘變后代變異及其SSR標(biāo)記多態(tài)性研究[J]. 核農(nóng)學(xué)報(bào),2010,24(3):460-465,489.
[22]謝 琳,牛應(yīng)澤,羅 誼. 航天誘變對(duì)甘藍(lán)型油菜根尖的細(xì)胞學(xué)效應(yīng)[J]. 核農(nóng)學(xué)報(bào),2008,22(2):179-182.
[23]鄭 偉,郭 泰,王志新,等. 航天搭載大豆SP2農(nóng)藝性狀誘變效應(yīng)初報(bào)[J]. 核農(nóng)學(xué)報(bào),2008,22(5):563-565,606.
[24]尚 晨,張?jiān)聦W(xué),李集臨,等. γ射線和高能混合粒子場(chǎng)輻照紫花苜蓿品質(zhì)變異的比較分析[J]. 核農(nóng)學(xué)報(bào),2008,22(2):175-178.
[25]楊躍華 林樹祺. 茶樹人工誘變技術(shù)的研究Ⅲ.不同品種茶樹的輻照敏感性[J]. 茶葉科學(xué),1990,10(2):53-58.
[26]張秀榮,李培武,李英德,等. 芝麻不同品種對(duì)空間誘變的敏感性及生物效應(yīng)研究初報(bào)[J]. 中國油料作物學(xué)報(bào),1998,6(2):26-27.
[27]康玉凡,申慶宏,喬玉梅. 我國苜蓿品種的適宜輻射劑量[J]. 內(nèi)蒙古農(nóng)牧學(xué)院學(xué)報(bào),1998,19(2):71-77.