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    24孔板法誘變選育高產(chǎn)紅曲黃色素菌株

    2015-04-24 02:44:47岳建明王成濤文雁君
    食品工業(yè)科技 2015年22期
    關鍵詞:氯化鋰色價紅曲

    楊 強,岳建明,王成濤,*,文雁君

    (1.北京工商大學,北京市食品添加劑工程技術研究中心,北京100048;2.北京工商大學,食品質量與安全北京實驗室,北京100048;3.河南中大生物工程有限公司,河南鄭州451162)

    生物工程

    24孔板法誘變選育高產(chǎn)紅曲黃色素菌株

    楊 強1,2,岳建明1,王成濤1,2,*,文雁君3

    (1.北京工商大學,北京市食品添加劑工程技術研究中心,北京100048;2.北京工商大學,食品質量與安全北京實驗室,北京100048;3.河南中大生物工程有限公司,河南鄭州451162)

    以紅曲霉F9-2為出發(fā)菌株,24孔板培養(yǎng)法結合紫外線-氯化鋰復合誘變處理選育高產(chǎn)紅曲黃色素菌株。實驗結果表明:在紫外照射130 s、氯化鋰添加濃度為0.1%的復合誘變條件下得到的菌株Y16,經(jīng)液態(tài)發(fā)酵后產(chǎn)黃色素高達488 U/mL,與出發(fā)菌相比,黃色素色價提高了37.1%。經(jīng)10次傳代培養(yǎng),色價穩(wěn)定,可作為生產(chǎn)紅曲黃色素的優(yōu)良菌株。

    紅曲霉,24孔板,復合誘變,紅曲黃色素

    紅曲作為我國傳統(tǒng)的藥食兩用產(chǎn)品,尤其是紅曲色素作為天然食品著色劑其應用歷史已達數(shù)千年之久。如今,食品安全問題日益受到人們的關注,對于紅曲色素的研究也更加具有意義和實際價值[1]。紅曲色素主要包括三類復合色素:紅曲紅色素、紅曲黃色素和紅曲橙色素[2-4]。目前的紅曲色素產(chǎn)品中以紅色素居多,黃色素在紅曲混合色素中的含量較低。黃色素作為一類主要的食用色素品種,其色澤鮮亮,容易引起人的食欲與購買欲,通常占市場需求量的50%以上,因此研究及開發(fā)紅曲黃色素具有很高的實際應用價值與商業(yè)推廣價值[5]。

    通過理化誘變選育高產(chǎn)紅曲黃色素菌株,是我國紅曲色素生產(chǎn)企業(yè)提升色素產(chǎn)量的重要途徑之一。理化誘變選育菌種操作簡便,且選育出的紅曲霉遺傳性狀穩(wěn)定[6]。目前理化誘變選育高產(chǎn)紅曲色素的方法很多,國內外選育高產(chǎn)紅曲色素菌株主要利用紫外、超聲、微波、60Co-γ、氯化鋰、雙氧水、亞硝基胍、硫酸二乙酯等方法,而我國采用上述誘變方法得到的紅曲霉液態(tài)發(fā)酵產(chǎn)紅曲黃色素色價均處于偏低水平[7-11]。泰國的Yongsmith等[12]一直致力于選育高產(chǎn)紅曲黃色素菌株,液態(tài)發(fā)酵色價不高,但固態(tài)發(fā)酵紅曲米中黃色素色價可達2224 U/g。雖然誘變育種存在許多優(yōu)勢,但是其隨機性、盲目性問題突出,且存在耗時、勞動強度大等缺點[13]。由于紅曲霉產(chǎn)黃色素色價普遍偏低,很難實現(xiàn)工業(yè)化,為提高紅曲黃色素的液態(tài)發(fā)酵色價,選育優(yōu)良菌株尤為重要。本文采用24孔板高通量法輔助誘變篩選紅曲黃色素高產(chǎn)菌株,與傳統(tǒng)搖瓶篩選方法比較,24孔板法減少了儀器的使用、降低了工作量且提升了篩選速度,對今后其他菌株的誘變選育具有重要參考意義。以實驗室篩得的紫紅紅曲霉菌株F9-2作為出發(fā)菌,利用紫外-氯化鋰復合誘變選育高產(chǎn)紅曲黃色素菌株,以期為紅曲黃色素的工業(yè)化生產(chǎn)提供優(yōu)良菌株。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    紫紅紅曲霉(Monacus purpureus) 編號F9-2,本實驗室篩得并保存;無水氯化鋰、乳酸、無水乙醇、麥芽浸粉、瓊脂、葡萄糖、蛋白胨、酵母提取物、磷酸二氫鉀、硝酸鈉、硫酸鎂、豆粕粉、玉米漿 國藥集團化學試劑有限公司,分析純;大米粉 中糧米業(yè)有限公司,食用級;基礎培養(yǎng)基 麥芽浸粉2%,瓊脂2%,葡萄糖0.5%,蛋白胨0.1%,pH自然(誘變培養(yǎng)基為在此配方基礎上添加LiCl),121℃下滅菌20 min;擴大培養(yǎng)基 葡萄糖2%,蛋白胨0.3%,酵母提取物0.4%,麥芽浸粉2%,瓊脂2%,KH2PO40.2%,NaNO30.2%,MgSO40.1%,pH自然,121℃下滅菌20 min;種子培養(yǎng)基 大米粉4%,蛋白胨0.8%,豆粕粉0.5%,KH2PO40.2%,NaNO30.2%,MgSO40.1%,乳酸調節(jié)pH4.0,裝液量50 mL/250 mL,121℃下滅菌20 min;發(fā)酵培養(yǎng)基 大米粉7.7%,葡萄糖7.5%,豆粕粉0.2%,KH2PO40.05%,NaNO30.18%,MgSO40.1%,玉米漿0.35%,乳酸調節(jié)pH4.0,裝液量50 mL/250 mL,121℃下滅菌20 min。

    DL-CJ-1NDII型單人單面潔凈工作臺 北京東聯(lián)哈爾儀器制造有限公司;BSA224S型電子天平 塞多利斯科學儀器(北京)有限公司;HZQ-F160型全溫振蕩培養(yǎng)箱 太倉市實驗設備廠;TGL-10C型高速臺式離心機 上海安亭科學儀器廠;PHS-3D型pH計 上海三信儀表廠;UV-2450型紫外可見分光光度計 日本島津公司;DHG-9145型電熱恒溫鼓風干燥箱 上海一恒科技有限公司;HJ-1型磁力加熱攪拌器 國華儀器廠;24方形深孔板 北京半夏科技發(fā)展有限公司;Synergy H1型全功能酶標儀 美國伯騰公司。

    1.2 實驗方法

    1.2.1 出發(fā)菌株的活化 將紅曲霉菌株F9-2接種于擴大培養(yǎng)基試管斜面,30℃培養(yǎng)7 d進行活化。

    1.2.2 孢子懸液的制備 菌株斜面30℃培養(yǎng)7 d后,用10 mL 0.85%的無菌生理鹽水沖洗斜面孢子,孢子液倒入含玻璃珠的三角瓶中200 r/min振蕩1 h,待孢子充分散開,用無菌擦鏡紙濾除菌絲,制成孢子懸液,最后將孢子濃度稀釋為1×106個/mL左右。

    1.2.3 紅曲色價的測定 取3 mL發(fā)酵液加入27 mL 70%乙醇溶液中,恒溫水浴鍋60℃浸提2 h,4000 r/min離心10 min后取上清液稀釋2000倍后,用分光光度計測定410 nm處吸光值[14]。

    紅曲色素的色價(U/mL)=吸光值×稀釋倍數(shù)

    1.2.4 紫外線誘變 將帶有轉子的玻璃平皿置于磁力攪拌器上,調整玻璃平皿距離紫外燈20 cm左右,倒入10 mL濃度為1×106個/mL左右的孢子懸液。于黑暗環(huán)境下照射10、30、50、70、90、110、130、150 s后,分別吸取0.1 mL孢子懸液涂布于平板培養(yǎng)基中,每一個梯度處理3個重復,30℃恒溫培養(yǎng)箱倒置培養(yǎng)5 d,以未經(jīng)紫外線照射的原始孢子液為空白對照,讀取菌落個數(shù),計算致死率,確定最優(yōu)紫外照射時間。

    致死率(%)=(空白平板上的菌落數(shù)-誘變培養(yǎng)基上的菌落數(shù))/空白平板上的菌落數(shù)×100

    1.2.5 氯化鋰誘變 分別配制氯化鋰濃度為0.05%、0.075%、0.1%、0.125%、0.15%、0.175%、0.2%的基礎培養(yǎng)基,孢子懸液經(jīng)紫外照射130 s后接種于不同濃度氯化鋰的培養(yǎng)基中,每一個梯度處理做3個重復,30℃恒溫培養(yǎng)箱倒置培養(yǎng)5 d,以紫外照射孢子為空白對照,讀取菌落個數(shù),計算致死率,確定最優(yōu)氯化鋰誘變濃度。

    致死率(%)=(空白平板上的菌落數(shù)-誘變培養(yǎng)基上的菌落數(shù))/空白平板上的菌落數(shù)×100

    1.2.6 紫外-氯化鋰復合誘變 首先按1.2.4實驗中得到的紫外線誘變最佳照射時間誘變照射孢子懸液,然后在1.2.5實驗結果確定的最佳氯化鋰濃度培養(yǎng)基平板上涂布培養(yǎng)。

    1.2.7 初篩 經(jīng)過紫外-氯化鋰復合誘變后的菌種于30℃恒溫培養(yǎng)箱中倒置培養(yǎng)5 d,選取菌落直徑大且顏色較深的單菌落,挑取菌絲后接入裝有1 mL/孔種子培養(yǎng)基的24孔板中(每孔放一個滅菌的玻璃珠),33℃、220 r/min培養(yǎng)42 h。將培養(yǎng)好的種子按9%接種量接入裝有1 mL/孔發(fā)酵培養(yǎng)基的24孔板中(每孔放一個滅菌的玻璃珠),33℃、220 r/min培養(yǎng)60 h。

    培養(yǎng)完成后,用移液槍從24孔板中吸取0.1 mL發(fā)酵液,加入裝有0.9 mL 70%乙醇溶液的離心管中,混勻,靜置15~20 min后,于3000 r/min離心5 min;取上清液,加到96孔板中,每孔200 μL。用酶標儀測定全波長下的吸光度,計算色價值后,選取色價高的菌株進行液體搖瓶復篩。

    1.2.8 復篩 從擴培后的初篩菌種平板培養(yǎng)基中挑取2~3環(huán),接種于種子培養(yǎng)基中(裝液量50 mL/250 mL),于33℃、200 r/min條件下振蕩培養(yǎng)2 d。再按照6%的接種量接種于發(fā)酵培養(yǎng)基中(裝液量50 mL/250 mL),于33℃、200 r/min條件下振蕩培養(yǎng)7 d。發(fā)酵完成后按照1.2.3的方法測定410 nm吸光值,換算成色價值。與出發(fā)菌株的產(chǎn)黃色價值進行比較,選取色價高于出發(fā)菌株的誘變菌斜面低溫保存。

    1.2.9 誘變株的穩(wěn)定性實驗 將經(jīng)1.2.8復篩所得的紅曲霉菌株在平板基礎培養(yǎng)基上傳代10次,分別測定每代發(fā)酵產(chǎn)紅曲黃色素色價值,觀察其產(chǎn)色素能力是否穩(wěn)定。

    1.2.10 數(shù)據(jù)處理 采用軟件SPSS 17.0對復篩數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析。

    2 結果與討論

    2.1 紫外線誘變劑量的確定

    出發(fā)菌紅曲霉F9-2的孢子懸液經(jīng)紫外燈照射不同時間的致死率曲線如圖1所示。通常紫外燈照射誘變的致死率在20%~90%之間的正突變幾率較高,且突變后菌種遺傳物質穩(wěn)定[15]。由圖1可知隨著紫外照射時間的延長,致死率逐漸增加。當紫外照射時間為130 s時,致死率達到80.4%。照射150 s,致死率已達到95.4%。因此本實驗選用致死率為80%左右的130 s為紫外最佳誘變劑量。

    圖1 紫外致死曲線Fig.1 The lethality curve of UV

    2.2 氯化鋰誘變劑量的確定

    出發(fā)菌紅曲霉F9-2的孢子懸液經(jīng)最佳紫外照射劑量處理后,于不同濃度氯化鋰培養(yǎng)基中涂布后黑暗倒置培養(yǎng),得到氯化鋰濃度誘變致死率曲線如圖2所示。隨著氯化鋰濃度的增加,致死率逐漸增加。當氯化鋰濃度為0.1%時,致死率為80.6%;當氯化鋰濃度為0.125%~0.175%時,致死率為87.8%~97.6%;當氯化鋰濃度為0.2%時,致死率已達到100%。因此本實驗采用致死率為80%左右的氯化鋰濃度0.1%為最佳誘變劑量。

    圖2 氯化鋰致死曲線Fig.2 Lethality curve of LiCl

    2.3 紫外、氯化鋰復合誘變處理

    孢子懸液經(jīng)紫外線照射130 s后涂布于含0.1%氯化鋰的平板培養(yǎng)基上復合誘變培養(yǎng),共誘變處理20批次,得到突變子419株。選取直徑大且顏色較深的菌株,按照1.2.8的方法培養(yǎng)后測定誘變株的色價。其中148孔無生長,199孔吸光值過低,其余72株與出發(fā)菌株F9-2的產(chǎn)黃色素能力進行比較,結果如圖3所示。

    由圖3可知,72個突變株中有12株的黃色素色價高于出發(fā)菌株F9-2(橫向直線所示),其中Y16的孔板發(fā)酵液色價值最高,達到了44.8 U/mL,比出發(fā)菌高出了27.1%。這12株產(chǎn)黃色素高的菌株進行液體搖瓶復篩,按照1.2.3的紅曲色素色價測定方法計算,最終所得結果如圖4所示。

    圖3 復合誘變突變菌產(chǎn)色素情況Fig.3 Monascus pigment production of compound mutagenesis mutant

    圖4 復合誘變結果Fig.4 Results of combined mutagenesis

    由圖4可知,紫外誘變和氯化鋰誘變復合使用,其誘變效果非常明顯。與圖4中出發(fā)菌株紅曲霉F9-2的產(chǎn)黃色價相比,復合誘變得到的12株突變菌株有8株菌的產(chǎn)黃色能力高于原始菌株。其中突變株Y1、Y16、Y31的產(chǎn)紅曲黃色素能力經(jīng)t檢驗顯著性分析結果均為極顯著(p<0.01),Y1、Y31較出發(fā)菌的產(chǎn)黃色素能力分別提高了30.6%和29.5%。Y16的產(chǎn)黃色素能力提高最多,與出發(fā)菌紅曲霉F9-2相比,其所產(chǎn)黃色素色價提高了37.1%。周波等[16]利用物理化學法誘變選育的高產(chǎn)紅曲黃色素菌株雖然黃色素色調高達3.5左右,但紅曲黃色素的最高色價僅為140 U/mL左右。

    表1 突變株遺傳穩(wěn)定性實驗Table 1 Genetic stability of mutants

    2.4 突變株的遺傳穩(wěn)定性

    對本實驗獲得的產(chǎn)黃色素較高的3株突變株Y1、Y16、Y31進行傳代穩(wěn)定性考察。將突變菌株分別在基礎培養(yǎng)基平板上連續(xù)傳10代后,搖瓶發(fā)酵考察產(chǎn)紅曲黃色素的穩(wěn)定性,結果見表1。

    由表1結果可知,突變菌株Y31產(chǎn)黃色素的能力在傳代過程中出現(xiàn)比較明顯的衰退,菌株Y1和Y16在傳代過程中,產(chǎn)黃色素能力則基本穩(wěn)定,這表明復合誘變得到的突變菌株Y1和Y16菌株具有較好的遺傳穩(wěn)定性。比較Y1和Y16可知,Y16的產(chǎn)紅曲黃色素能力最強且最為穩(wěn)定,經(jīng)過10代的傳代培養(yǎng),其產(chǎn)黃色素色價值基本穩(wěn)定在486 U/mL左右。相較于傳代3次~6次的穩(wěn)定性實驗,本實驗所得突變菌經(jīng)過10次傳代培養(yǎng),其產(chǎn)紅曲黃色素色價穩(wěn)定性得到很好的驗證。

    3 結論

    本文采用24孔板法輔助紫外-氯化鋰復合誘變篩選高產(chǎn)紅曲黃色素菌株。確定了最佳紫外照射時間為130 s,最佳氯化鋰添加濃度為0.1%。紫外-氯化鋰復合誘變得到的誘變效果非常明顯,證明復合誘變對于紅曲霉產(chǎn)黃色素的提高有顯著的作用。復合誘變篩選出一株高產(chǎn)紅曲黃色素菌株Y16,產(chǎn)紅曲黃色素色價高達488 U/mL,較原始菌株提高了37.1%。經(jīng)10次傳代培養(yǎng),證明其傳代穩(wěn)定性良好,屬于高產(chǎn)菌。本實驗得到高產(chǎn)紅曲黃色素為理化誘變突變菌,還需對該菌進行培養(yǎng)基及發(fā)酵工藝的進一步優(yōu)化研究,以便為今后的工業(yè)化生產(chǎn)所用。

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    Breeding of Monascus with high-yield yellow pigment by 24 well-plate assay combining with mutation

    YANG Qiang1,2,YUE Jian-ming1,WANG Cheng-tao1,2,*,WEN Yan-jun3
    (1.Beijing Engineering and Technology Research Center of Food Additives,Beijing Technology and Business University,Beijing 100048,China;2.Beijing Laboratory for Food Quality and Safety,Beijing Technology and Business University,Beijing 100048,China;3.Henan Zhongda Biological Engineering Co.,Ltd.,Zhengzhou 451162,China)

    Monascus F9-2 was used as the original strain;then the high-yield yellow pigment of Monascus Y16 strain was obtained by UV(130 s)and LiCl(0.1%)complex mutation combining with the 24 well-plate assay. The results showed that the yellow pigment value of Monascus Y16 could reach 488 U/mL and the value was 37.1%higher than the starting strain.The stable genotype was verified through ten times of transferring of culture and was hence a fine strain for producing high-yield yellow pigment.

    Monascus;24 well-plate;complex mutation;Monascus yellow pigment

    TS201.3

    A

    1002-0306(2015)22-0156-04

    10.13386/j.issn1002-0306.2015.22.024

    2015-03-19

    楊強(1990-),女,碩士,助理實驗師,研究方向:食品微生物與發(fā)酵技術,E-mail:yq_0314@126.com。

    *通訊作者:王成濤(1969-),男,博士,教授,研究方向:食品生物技術,E-mail:wct5566@163.com。

    國家自然科學基金青年基金項目(31401669,31301411);北京市科技計劃項目(Z151100001215008);北京市科技計劃項目和北京市屬高等學校食品科學創(chuàng)新團隊項目(IDHT20130506)。

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