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      miR-155下調(diào)心肌細(xì)胞ATR1α表達(dá)改善心肌細(xì)胞肥大*

      2015-03-18 01:46:20吳瑞霞佟新竹謝華強(qiáng)
      重慶醫(yī)學(xué) 2015年21期
      關(guān)鍵詞:物組表面積心肌細(xì)胞

      楊 勇,周 勇,曹 政,吳瑞霞,佟新竹,謝華強(qiáng)

      (湖北醫(yī)藥學(xué)院附屬十堰市太和醫(yī)院:1.心血管內(nèi)科;2.腫瘤內(nèi)科 442000)

      心肌肥大是老年患者充血性心力衰竭的重要病理生理過程之一,心肌肥大的過程包括心肌細(xì)胞體積的增大和蛋白合成的增加。血管緊張素Ⅱ(AngⅡ)主要與AngⅡ1型受體(AT1R)結(jié)合后激活心肌肥大的過程,AT1R過表達(dá)也與心肌肥大關(guān)系密切[1]。微小RNA(microRNA,miR)是一類19~25個堿基內(nèi)源性、具有高度保守性的非編碼RNA序列[2]。研究證實,多個 miR(miR-let-7a、miR-21、miR-22、miR-208、miR-206等)均參與了心肌肥大的發(fā)生、發(fā)展過程的不同環(huán)節(jié)[3]。miR-155是一個多功能 miR,在肺、心臟及腎臟表達(dá)較豐富[4]。Blanco等[5]觀察到miR-155低表達(dá)與心肌肥大及心力衰竭的風(fēng)險顯著升高相關(guān);Zheng等[6]則發(fā)現(xiàn)miR-155能夠和細(xì)胞內(nèi)源性AT1RmRNA結(jié)合,抑制蛋白的翻譯,明顯降低AT1R的表達(dá)水平。心肌細(xì)胞有豐富的AT1R的表達(dá),且在嚙齒類動物的心臟組織主要分布和表達(dá)的為AT1R的α亞型(ATR1α)[7]。因此本研究推測 miR-155可能通過對心肌細(xì)胞ATR1α表達(dá)的調(diào)控進(jìn)而調(diào)節(jié)心肌肥大的發(fā)生。本研究擬觀察miR-155表達(dá)對大鼠心肌細(xì)胞肥大的影響以及對ATR1α表達(dá)的影響,以探討miR-155作為心肌細(xì)胞肥大的調(diào)控靶點的可能性。

      1 材料與方法

      1.1 材料 大鼠心肌細(xì)胞株H9C2(2-1)由武漢大學(xué)中國典型培養(yǎng)物保藏中心提供。LipofectamineTM2000(Invitrogen公司,美國)、mirVana PARISTM Kit(Ambion公司,美國)由王漢琴博士惠贈;Trizol試劑(Invitrogen公司,美國);Platinum SYBRGreen qPCR SuperMix-UDG(Invitrogen Biotechnology中國公司)。AngⅡ(Sigma,美國)、兔抗 ATR1α多克隆抗體(ABCAM公司,英國);兔抗CaN-β多克隆抗體、兔抗 NFATc-4抗體、兔抗β-actin多克隆抗體、HRP標(biāo)記的羊抗兔IgG抗體(Bioworld Technology公司,美國);miR-155RNA 模擬物(mimics)及抑制物(inhibitors)由上海市吉瑪生物科技有限公司根據(jù)sanger miRNA數(shù) 據(jù) 庫 的 miR-155序 列 5′-UUA AUG CUA AUU GUG AUA GGG GU-3′(編號:MIMAT 0030409)設(shè)計并合成miR-155mimics,上游序列為:5′-UUA AUG CUA AUU GUG AUA GGG GU-3′,下 游 序 列 為:5′-CCC UAU CAC AAU UAG CAU UAA UU-3′。miR-155inhibitors序列為5′-ACC CCU AUCA CAA UUA GCA UUA A-3′。

      表1 miR-155和U6內(nèi)參的RT及PCR引物序列

      表2 RT-PCR各產(chǎn)物的引物序列

      1.2 方法

      1.2.1 心肌細(xì)胞培養(yǎng)及實驗分組 轉(zhuǎn)染 miR-155mimics及inhibitors的心肌細(xì)胞在轉(zhuǎn)染后24h加入1×10-7mol/L AngⅡ,繼續(xù)作用48h后用于后續(xù)檢測。實驗分對照組,不加任何藥物;AngⅡ組,加入 AngⅡ,終濃度為1×10-7mol/L,不進(jìn)行轉(zhuǎn)染;模擬物組,轉(zhuǎn)染入 miR-155mimics 80nmol/L,miR-155抑制物組,轉(zhuǎn)染入 miR-155inhibitor 80nmol/L;AngⅡ加模擬物組,轉(zhuǎn)染入 miR-155mimics 80nmol/L并加入 AngⅡ,終濃度為1×10-7mol/L;AngⅡ加抑制物組,轉(zhuǎn)染入 miR-155inhibitor 80nmol/L并加入 AngⅡ,終濃度為1×10-7mol/L。

      1.2.2 心肌細(xì)胞轉(zhuǎn)染、熒光檢測 心肌細(xì)胞用含10%胎牛血清DMEM培養(yǎng)生長至融合后進(jìn)行傳代,用含10% 胎牛血清的DMEM調(diào)節(jié)細(xì)胞密度至1×108/L種細(xì)胞于6孔板中。培養(yǎng)心肌細(xì)胞生長48h至細(xì)胞融合達(dá)30%~50%后,換無血清培養(yǎng)液并使用脂質(zhì)體2000轉(zhuǎn)染miR-155mimics及inhibitors進(jìn)入心肌細(xì)胞。激光共聚焦顯微鏡下使用藍(lán)色激光激發(fā)FAM熒光(激發(fā)波長480nm,發(fā)射波長520nm),拍攝熒光圖片和同一視野中明場細(xì)胞照片。

      1.2.3 實時熒光定量PCR法檢測心肌細(xì)胞 miR-155的表達(dá) 收集對照組、模擬物組、miR-155抑制物組細(xì)胞,按照mir-Vana PARISTM試劑盒說明書提取并分離小于100nt的小分子RNA。使用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,應(yīng)用ABI 7300Real Time PCR System在48孔PCR反應(yīng)模塊中進(jìn)行定量PCR檢測miR-155表達(dá)水平,反應(yīng)體系于50℃2min,95℃2min,95℃15s,然后60℃30s,共40次循環(huán),最后20℃2min。以U6基因為內(nèi)標(biāo)基因,使用2-ΔΔCT法計算 miR-155表達(dá)量。逆轉(zhuǎn)錄及熒光定量PCR引物序列見表1。

      1.2.4 細(xì)胞表面積檢測 轉(zhuǎn)染24h后,心肌細(xì)胞加AngⅡ繼續(xù)作用48h,取有心肌細(xì)胞生長的蓋玻片,用預(yù)冷的Hank′s液漂洗血清及雜質(zhì),再用4%多聚甲醛固定15min后晾干。在相差顯微鏡下拍照,采用Leica圖像分析系統(tǒng)對心肌細(xì)胞進(jìn)行計數(shù)并測量單個細(xì)胞直徑,每孔取10個視野,每個視野約20個細(xì)胞。測量細(xì)胞表面積,取平均值。每組重復(fù)3次。

      1.2.5 RT-PCR 法檢測心肌肥大標(biāo)記物 ANP、β-MHC 及ATR1αmRNA表達(dá) 細(xì)胞處理后,依據(jù)產(chǎn)品說明書用Trizol裂解;氯仿抽提;4℃,15 000r/min離心15min,上層無色液相用異丙醇沉淀,加入DEPC水溶解沉淀,紫外分光光度計測定A衡量純度(適當(dāng)比值在1.6~2.0)。逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)(RT)合成模板cDNA。聚合酶鏈反應(yīng)后取PCR產(chǎn)物5μL在1.2%瓊脂糖凝膠上電泳,用凝膠成像儀進(jìn)行分析,結(jié)果以吸光度比值表示。各產(chǎn)物的PCR引物序列、片段長度、退火溫度見表2。PCR 反應(yīng)條件為 94 ℃、3min,94 ℃、30s,72℃、1min,循環(huán)35次,最后72℃ 延伸10min。

      1.2.6 Westen bolt法檢測心肌細(xì)胞的ATR1α表達(dá) 提取心肌細(xì)胞總蛋白,4,4-二羧基酸-2,2-二喹啉(BCA)法測定蛋白濃度,完畢后將其加入5%十二烷基環(huán)酸鈉(SDS)加樣緩沖液中煮沸5min,以使蛋白質(zhì)樣品變性,置于-80℃凍存?zhèn)溆?。按每孔上樣?0μg進(jìn)行SDS-PAGE電泳,穩(wěn)壓冰浴電轉(zhuǎn)至醋酸纖維素膜上,5%脫脂牛奶封閉1h,一抗孵育4℃過夜(ATR1α1∶500),TBST 洗滌后加入熒光的山羊抗兔IgG(1∶15 000)室溫孵育1h,采用化學(xué)發(fā)光法于暗匣中曝光。最后用顯影、定影試劑進(jìn)行顯影和定影。將膠片進(jìn)行掃描存檔,Bio-Bad公司Quantity-One軟件處理系統(tǒng)分析目標(biāo)帶的光密度值。蛋白表達(dá)量用目的蛋白/GAPDH的吸光度比值表示。

      1.3 統(tǒng)計學(xué)處理 每組進(jìn)行獨立重復(fù)3次試驗,用SPSS13.0統(tǒng)計軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行分析。數(shù)據(jù)采用±s表示,兩組之間比較使用t檢驗;多組間比較采用單因素方差分析,后以Tukey′s post-test進(jìn)行檢驗,檢驗水準(zhǔn)α=0.05,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

      2 結(jié) 果

      2.1 心肌細(xì)胞miR-155模擬物轉(zhuǎn)染與miR-155表達(dá)水平 轉(zhuǎn)染24h后,在激光共聚焦顯微鏡的藍(lán)光激發(fā)狀態(tài)下,可見綠色熒光在視野下成簇分布(圖1B)。與同一視野下明場細(xì)胞照片(圖1A)進(jìn)行融合后發(fā)現(xiàn)綠色熒光主要分布在細(xì)胞質(zhì)中(圖1C)。證實miR-155模擬物通過脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染方法成功轉(zhuǎn)染入細(xì)胞內(nèi)。實時熒光定量PCR顯示,與AngⅡ組對比,AngⅡ加模擬物組心肌細(xì)胞miR-155水平明顯升高達(dá)3~4倍[(3.58±0.06)vs.(1.00±0.02),P<0.05];AngⅡ加抑制物組心肌細(xì)胞 miR-155水平下降[(0.46±0.01)vs.(1.00±0.02),P<0.05]。

      圖1 轉(zhuǎn)染后心肌細(xì)胞熒光分布(熒光顯微鏡×400)

      圖2 各組心肌細(xì)胞圖片(×200)

      2.2 心肌細(xì)胞表面積改變與對照組相比,在AngⅡ作用下,AngⅡ組心肌細(xì)胞表面積出現(xiàn)擴(kuò)大(P<0.05);而模擬物組與抑制物組,心肌細(xì)胞表面積僅有增加趨勢,但無明顯統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);與AngⅡ組比較,轉(zhuǎn)染 miR-155模擬物及 miR-155抑制物入心肌細(xì)胞后再給予刺激,AngⅡ加模擬物組心肌細(xì)胞表面積明顯縮?。≒<0.05),見圖2和圖3。

      圖3 各組心肌細(xì)胞表面積比較

      2.3 ATR1αmRNA和蛋白表達(dá)與對照組相比,模擬物組和miR-155抑制物組的ATR1αmRNA和蛋白表達(dá)水平差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。與AngⅡ組對比,AngⅡ加模擬物組心肌細(xì)胞ATR1αmRNA和蛋白表達(dá)水平均下降(P<0.05),見圖4。

      圖4 各組細(xì)胞ATR1αmRNA和蛋白表達(dá)比較

      2.4 心肌肥大標(biāo)記物β-MHC及ANP mRNA表達(dá)與對照組相比,模擬物組和miR-155抑制物組的β-MHC mRNA表達(dá)水平無明顯增加(P>0.05);與AngⅡ組相比,AngⅡ加模擬物組的β-MHC表達(dá)明顯減少(P<0.05)見圖5、6。與對照組相比,模擬物組和miR-155抑制物組的ANP mRNA表達(dá)水平無明顯增加(P>0.05);與AngⅡ組相比,AngⅡ加模擬物組的 ANP mRNA表達(dá)明顯減少(P<0.05)見圖7、8。

      圖5 各組細(xì)胞β-MHC與GAPDH PCR條帶密度比較

      圖6 各組細(xì)胞β-MHC相對表達(dá)量分析圖

      圖7 各組細(xì)胞ANP與GAPDH PCR條帶密度比較

      圖8 各組細(xì)胞ANP相對表達(dá)量分析圖

      3 討 論

      miR是一類內(nèi)源性非蛋白編碼的單鏈小分子RNA,能在轉(zhuǎn)錄后水平抑制靶基因的表達(dá)或翻譯,可在不同生理和病理狀態(tài)下調(diào)節(jié)心肌細(xì)胞的增殖、分化及凋亡,對機(jī)械重塑、心電重塑均有重要影響[8]。本研究使用實時熒光定量PCR方法成功檢測出體外培養(yǎng)心肌細(xì)胞株的 miR-155表達(dá);而在 miR-155 mimics轉(zhuǎn)入心肌細(xì)胞后可明顯觀察到miR-155表達(dá)增加到基礎(chǔ)水平的3~4倍,而miR-155inhibitors可有效抑制miR-155表達(dá);提示使用miR-155合成物可成功調(diào)節(jié)細(xì)胞內(nèi)miR-155的表達(dá)水平,為進(jìn)一步研究miR-155對細(xì)胞的影響提供了條件。

      miR-155過表達(dá)能夠有效抑制AngⅡ誘導(dǎo)的肥大心肌細(xì)胞表面的ATR1α基因和蛋白的表達(dá),心肌肥厚的相關(guān)基因ANP、β-MHC的表達(dá)明顯減少,心肌細(xì)胞表面積也明顯減少,提示miR-155過表達(dá)可能通過下調(diào)ATR1α表達(dá)進(jìn)而達(dá)到改善心肌肥大的作用。Cheng等[9]通過miR-155過表達(dá)干預(yù)嚴(yán)重子癇患者的體外培養(yǎng)臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞,觀察到miR-155過表達(dá)可明顯下調(diào)AT1R基因和蛋白水平的表達(dá);這與本研究觀察結(jié)果是相似的。研究還發(fā)現(xiàn),對于未給以AngⅡ刺激誘導(dǎo)的肥厚心肌細(xì)胞,miR-155過表達(dá)或者抑制表達(dá)均未表現(xiàn)出對ATR1α顯著的調(diào)節(jié)作用,也未表現(xiàn)出顯著的改變心肌細(xì)胞肥大標(biāo)記物β-MHC、ANP表達(dá)及改變心肌細(xì)胞表面積的作用,提示miR-155對正常心肌細(xì)胞和肥大心肌細(xì)胞ATR1α、β-MHC、ANP基因的調(diào)控具有時間分布的差異。Lunde等[10]使用miR基因芯片方法檢測主動脈縮窄心肌肥厚大鼠模型心肌中miR表達(dá)時發(fā)現(xiàn)在主動脈縮窄造模后的1~14d均不能檢測出miR-155表達(dá),在14d后心肌肥厚程度較明顯時才能檢測到miR-155表達(dá),與本研究的推測一致;提示miR-155主要在心肌肥大的晚期調(diào)控中發(fā)揮作用。

      Heymans等[11]、Seok等[12]發(fā)現(xiàn) miR-155過表達(dá)可通過多種途徑促進(jìn)心肌肥大和心力衰竭發(fā)生,沉默miR-155則改善心肌肥大,與本研究的結(jié)果不一致。分析可能與miR對細(xì)胞功能的調(diào)節(jié)過程往往涉及多個信號通路,且多個miR參與其中,miR之間也存在調(diào)節(jié)網(wǎng)絡(luò),其調(diào)節(jié)受到多因素的調(diào)控[13];而動物模型的差異導(dǎo)致不同信號通路的激活不同,得到不一致的結(jié)果,本研究組擬進(jìn)一步在不同心肌肥厚的動物模型中驗證miR-155對心肌肥厚的具體作用及探討其涉及的調(diào)節(jié)通路。因此,通過本研究可證實miR-155能夠有效抑制ATR1α基因和蛋白水平的表達(dá),抑制由AngⅡ介導(dǎo)的心肌肥大。因此miR-155可作為高血壓心肌肥大的調(diào)控靶點進(jìn)一步進(jìn)行深入的研究。

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