晏現(xiàn)麗 張 穎 鄭立運(yùn) 任凌燕 周雅麗 權(quán)松霞 邢國(guó)蘭
(鄭州大學(xué)第一附屬醫(yī)院腎內(nèi)科,鄭州 450052)
IgA 腎病為亞太地區(qū)最常見(jiàn)的原發(fā)性腎小球疾?。?],對(duì)該病發(fā)病機(jī)制的探究雖歷經(jīng)了近半個(gè)世紀(jì),但目前發(fā)病機(jī)制仍不明確。既往研究多聚焦于IgA 分子的異常糖基化,然而IgA 分子的異常并非IgA 腎病唯一及主要發(fā)病機(jī)制[2]。有文獻(xiàn)報(bào)道補(bǔ)體可能是參與IgA 腎病發(fā)病的關(guān)鍵因素[3]。我課題組前期臨床研究中已發(fā)現(xiàn)C3a、C5a 在IgA 腎病病理?yè)p傷中發(fā)揮重要作用[4],本研究旨在進(jìn)一步探討C3a、C5a 在IgA 腎病發(fā)病中作用的潛在機(jī)制。
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物與材料 6~8 周齡BALB/c 雌性小鼠28 只,SPF 級(jí),體重18~23 g,7 只/組,其中野生型及陰性對(duì)照組購(gòu)自鄭州大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心,C3a受體敲除組及C5a 受體敲除組小鼠通過(guò)南京大學(xué)南京生物醫(yī)藥研究院代購(gòu)于美國(guó)Jackson 實(shí)驗(yàn)室。仙臺(tái)病毒由中國(guó)科學(xué)院武漢病毒研究所惠贈(zèng),9 日齡SPF 級(jí)活雞胚購(gòu)于北京梅里業(yè)維通實(shí)驗(yàn)技術(shù)有限公司。
1.2 仙臺(tái)病毒的擴(kuò)增及血凝價(jià)測(cè)定 0.2 ml 仙臺(tái)病毒濃縮液中加入1 ml 無(wú)菌生理鹽水稀釋后混勻,取0.15 ml 稀釋液接種于雞胚尿囊腔,接種后雞胚置于37℃恒溫箱中孵育,24 h 后觀察雞胚生長(zhǎng)情況,活雞胚繼續(xù)孵育28 h 后取出置于4℃冰箱中過(guò)夜,次日吸取尿囊液3 000 r/min,4℃離心25 min,吸取上清。所獲病毒液參照以往方法[5]測(cè)定血凝價(jià)。
1.3 小鼠IgA 腎病模型建立 小鼠置于河南省醫(yī)藥科學(xué)研究院動(dòng)物實(shí)驗(yàn)室IVC 系統(tǒng)中適應(yīng)性飼養(yǎng)3天,開(kāi)始給予有活性病毒滴鼻,1 次/周,持續(xù)14 周(病毒量:第1、2 次2.5 ×104,第3 次2.5 ×105,第4次2.4 ×106,第5 至14 次均為1.92 ×108),第6 及14 次同時(shí)給予含有6.25 ×108個(gè)病毒粒子混懸液尾靜脈注射;陰性對(duì)照組與實(shí)驗(yàn)組同時(shí)間給予等量PBS 液;實(shí)驗(yàn)期間所有小鼠自由采食、飲水。
1.4 生化指標(biāo)測(cè)定 分別于實(shí)驗(yàn)前及第15 周末于代謝籠中收集24 h 尿,采用CS400 自動(dòng)生化儀檢測(cè)24 h 尿蛋白量。實(shí)驗(yàn)前一天采用毛細(xì)管通過(guò)眼球后靜脈取血,0.2~0.3 ml/只;實(shí)驗(yàn)結(jié)束后10%水合氯醛腹腔麻醉小鼠(0.1 ml/25 g),摘取眼球取血,0.8~1.2 ml/只,所取血液于4℃冰箱靜置2 h,3 000 r/min,4℃離心10 min,取上清,采用CS400 自動(dòng)生化儀檢測(cè)血清尿素氮、肌酐值。
1.5 腎臟組織病理學(xué)檢查 10%水合氯醛腹腔麻醉小鼠(0.1 ml/25 g),沿腹中線剖開(kāi)腹腔,取出腎臟,剝離腎包膜,沿矢狀面剖開(kāi)腎臟,再沿橫斷面切開(kāi)腎臟,冰生理鹽水沖洗,取1/4 腎臟置于4%中性甲醛中固定,4℃過(guò)夜后石蠟包埋,制成3 μm 厚切片,經(jīng)蘇木素-伊紅(HE)染色、過(guò)碘酸-希夫(PAS)染色、馬松三色(Masson)染色,光學(xué)顯微鏡觀察腎小球病理改變即免疫復(fù)合物沉積情況。取部分腎皮質(zhì)包裹于濕生理鹽水紗布中,OCT 包埋后制成4 μm厚冰凍切片,室溫下涼片20 min,滴加異硫氰酸(FITC)標(biāo)記的IgA 抗體(STAR137F AbD Serotec)及C3 抗體(sc-58926 Santa Cruz),采用直接免疫熒光法檢測(cè)腎臟中IgA、C3 沉積情況。
1.6 腎組織中IL-1β、IL-6、MCP-1、TNF-α、TGF-β mRNA 的實(shí)時(shí)熒光定量PCR 檢測(cè) Trizol 法提取腎組織總RNA,測(cè)A(260nm)/A(280nm)值為1.8~2.0,凝膠電泳檢測(cè)所提取RNA 的完整性。按照反轉(zhuǎn)錄試劑盒(SK2425 上海生工)反轉(zhuǎn)錄為cDNA 后進(jìn)行熒光定量PCR 反應(yīng)。實(shí)時(shí)熒光定量PCR 引物見(jiàn)表1。反應(yīng)體系20 μl:SybrGreen qPCR Maste Mix 10 μl,PCR 上、下游引物各1.0 μl,滅菌蒸餾水6.0 μl,cDNA 模板2.0 μl。反應(yīng)條件:第1 階段,預(yù)變性95℃3 min;第2 階段,PCR 反應(yīng)(95℃15 s,60℃40 s)40 個(gè)循環(huán);第3 階段,95℃15 s,60℃1 min,95℃15 s;得到每個(gè)樣品的Ct 值。采用2-ΔCt計(jì)算目的基因相對(duì)表達(dá)量,采用GAPDH 作為內(nèi)參基因。
1.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS17.0 進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,計(jì)量資料用±s 表示,組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用Bonferroni 法,P<0.05 認(rèn)為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
表1 實(shí)時(shí)熒光定量PCR 引物Tab.1 Primers of RT-qPCR
2.1 一般情況 實(shí)驗(yàn)過(guò)程中四組小鼠均無(wú)死亡,實(shí)驗(yàn)組小鼠在第4 次給予病毒后出現(xiàn)活動(dòng)減少,體重下降,部分小鼠喜蜷縮,毛發(fā)無(wú)光澤,實(shí)驗(yàn)過(guò)程中所有小鼠無(wú)鼻腔膿性分泌物及肉眼血尿。
2.2 各組24 h 尿蛋白量及腎功能比較 建模后實(shí)驗(yàn)組與陰性對(duì)照組比較尿蛋白量差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;C3a 受體敲除組、C5a 受體敲除組與野生型組比較尿蛋白量差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;四組之間血清肌酐及尿素氮及血清肌酐差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,見(jiàn)表2。
2.3 各組小鼠腎組織免疫熒光沉積強(qiáng)度 實(shí)驗(yàn)組小鼠腎小球有較強(qiáng)IgA沿腎小球系膜區(qū)沉積,且野生型組熒光沉積強(qiáng)于其他兩組,陰性對(duì)照組則無(wú)IgA 沉積;C3 沉積情況同IgA,見(jiàn)圖1。
2.4 各組小鼠腎臟組織病理改變 實(shí)驗(yàn)組小鼠腎組織均有不同程度的系膜細(xì)胞增生及系膜基質(zhì)增多,部分伴有間質(zhì)灶狀炎性細(xì)胞浸潤(rùn)及小血管內(nèi)皮細(xì)胞腫脹;系膜區(qū)可見(jiàn)嗜復(fù)紅蛋白沉積;且野生型組病理改變較C3a 受體敲除組及C5a 受體敲除組明顯;陰性對(duì)照組未見(jiàn)上述病理改變,見(jiàn)圖2 。
圖1 各組小鼠腎臟組織熒光沉積(×400)Fig.1 Deposition of IgA and C3 in glomerulus of four groups(×400)
圖2 各組小鼠腎臟組織病理改變(PAS 染色,×400)Fig.2 Renal pathology of four groups (PAS,×400)
表2 各組小鼠血清肌酐、尿素氮及24 h 尿蛋白量比較Tab.2 Serum blood urea nitrogen(BUN)and creatinine(Cr)and 24 hours urine total protein(UTP)of different groups at weeks 0 and 14
圖3 各組小鼠腎臟組織炎癥因子及細(xì)胞因子mRNA 相對(duì)表達(dá)量Fig.3 Relative mRNA expression of inflammatory factors and cytokines in renal tissue
2.5 各組小鼠腎臟組織中TNF-α、TGF-β、IL-1β、IL-6、MCP-1mRNA 相對(duì)表達(dá)量比較 實(shí)驗(yàn)組小鼠腎組織炎癥因子及細(xì)胞因子mRNA 相對(duì)表達(dá)量高于陰性對(duì)照組,同時(shí)野生型組高于C5a 受體敲除組及C3a 受體敲除組,另外IL-1β、IL-6、MCP-1 的mRNA相對(duì)表達(dá)量C5a 受體敲除組高于C3a 受體敲除組,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,見(jiàn)圖3。
IgA 腎病1968 年由學(xué)者Berger 等提出,雖已歷經(jīng)近半個(gè)世紀(jì),但其發(fā)病機(jī)制仍不明確。本研究參照學(xué)者Emancipator 等[6,7]所采用方法建立小鼠IgA腎病模型,在此基礎(chǔ)上探究C3a、C5a 及其受體在IgA 腎病發(fā)病中的作用及其潛在機(jī)制。
有文獻(xiàn)證實(shí)補(bǔ)體旁路途徑及甘露糖結(jié)合凝集素途徑參與IgA 腎病發(fā)病,而C3a、C5a 是補(bǔ)體活化過(guò)程中所產(chǎn)生的主要致炎產(chǎn)物,有文獻(xiàn)報(bào)道[8-10]C3a、C5a 參與了缺血再灌注腎損傷、過(guò)敏性哮喘、糖尿病腎病等疾病發(fā)病,然而其在IgA 腎病中作用報(bào)道較少。余學(xué)清等[11]發(fā)現(xiàn)編碼補(bǔ)體調(diào)節(jié)因子H 因子及其受體的基因異常與IgA 腎病發(fā)病相關(guān)。我課題組[4]在前期的臨床回顧分析中也發(fā)現(xiàn)腎臟局部C3a、C5a 沉積強(qiáng)度及C3a 受體、C5a 受體表達(dá)強(qiáng)度與腎臟病理改變嚴(yán)重程度正相關(guān)。本研究中也發(fā)現(xiàn)C3a 受體敲除及C5a 受體敲除組小鼠在蛋白尿量、腎臟組織病理改變上均輕于野生型組。
C3a 受體及C5a 受體缺失主要通過(guò)阻止C3a 及C5a 與其結(jié)合減少炎癥因子及趨化因子分泌減輕腎臟損傷,其中C3a 受體缺失在減輕腎損傷方面發(fā)揮更強(qiáng)作用。Bao 等[12]發(fā)現(xiàn)C3a、C5a 在補(bǔ)體介導(dǎo)的腎小管腎間質(zhì)損傷中發(fā)揮不同作用,C3a 受體缺失在減少腎小管間質(zhì)中T 淋巴細(xì)胞及單核巨噬細(xì)胞浸潤(rùn)的作用較C5a 受體缺失更顯著;Engelke 等[9]也發(fā)現(xiàn)C3a 受體缺失與C5a 受體缺失相比減少I(mǎi)L-1β 分泌的作用更強(qiáng)。我課題組[4]的前期研究中也發(fā)現(xiàn)腎臟局部C3a 受體表達(dá)陽(yáng)性率與IgA 腎病24 h尿蛋白量及腎臟病理級(jí)別的相關(guān)性比C5aR 顯著。本研究中也發(fā)現(xiàn)C3a 受體缺失組小鼠腎組織IL-1β、IL-6、MCP-1 mRNA 相對(duì)表達(dá)量低于C5a 受體缺失組,由于IL-1β、IL-6、MCP-1 主要由單核/巨噬細(xì)胞、T 淋巴細(xì)胞分泌[13],既往研究又表明C3a 在趨化T 細(xì)胞及單核/巨噬細(xì)胞方面作用強(qiáng)于C5a,有意思的是本研究中并未發(fā)現(xiàn)C3a 受體敲除組與C5a受體敲除組小鼠在24 h 蛋白尿及腎臟病理改變上存在差異,這可能與本研究中所采用模型IgA 腎病病理改變本身較輕微,未見(jiàn)明顯腎小球硬化及腎小管間質(zhì)病變等較重病理改變,再者,本研究所采用小鼠為C3a/C5a 受體單敲,敲除一種補(bǔ)體片段受體情況下不能完全排除另一種補(bǔ)體作用的干擾。
綜上所述,C3a、C5a 均參與IgA 腎病發(fā)病,C3a受體及C5a 受體缺失可減輕IgA 腎病腎損傷,同時(shí)C3a 在IgA 腎病發(fā)病中作用強(qiáng)于C5a。
[1]Woo KT,Chan CM,Chin YM,et al.The changing pattern of primary glomerulonephritis in Singapore and other countries over the past 3 decades[J].Clin Nephrol,2010,74(5):372-383.
[2]Satake K,Shimizu Y,Sasaki Y,et al.Serum under-O-glycosylated IgA1 level is not correlated with glomerular IgA deposition based upon heterogeneity in the composition of immune complexes in IgA nephropathy[J].BMC Nephrol,2014,Jun 13(15):89-102.
[3]Suzuki H,Kiryluk K,Novak J,et al.The pathophysiology of IgA nephropathy[J].J Am Soc Nephrol,2011,22(10):1795-1803.
[4]段喜梅,張 穎,劉 璐,等.C3a、C5a 及其受體在IgA 腎病發(fā)病中的作用[J].鄭州大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版),2013,48(3):313-319.
[5]索朗斯珠,吳慶俠.獸醫(yī)病毒學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)[M].北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué)出版社,2013:40-44.
[6]Emancipator SN.Curr Protoc Immunol[M].Wiley:New York,1999:1-18.
[7]Amore A,Coppo R,Nedrud JG,et al.The role of nasal tolerance in a model of IgA nephropathy induced in mice by Sendai virus[J].Clin Immunol,2004,113(1):101-108.
[8]Peng Q,Li K,Smyth LA,et al.C3a and C5a promote renal ischemia-reperfusion injury[J].J Am Soc Nephrol,2012,23(9):1474-1485.
[9]Engelke C,Wiese AV,Schmudde,et al.Distinct roles of the anaphylatoxins C3a and C5a in dendritic cell-mediated allergic asthma[J].J Immunol,2014,193(11):5387-5401.
[10]張朝甲,張 穎,劉 璐,等.補(bǔ)體C3a 及C5a 在糖尿病腎病發(fā)病中的作用[J].鄭州大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版),2014,49(2):162-165.
[11]Yu XQ,Li M,Zhang H,et al.A genome-wide association study in Han Chinese idenfies multiple susceceptibility loci for IgA nephropathy[J].Nat Genet,2011,44(2):178-182.
[12]Bao LH,Wang Y,Haas M,et al.Distinct roles for C3a and C5a in complement-induced tubulointerstitial injury[J].Kidney Int,2011,80(5):524-534.
[13]龔非力.醫(yī)學(xué)免疫學(xué)[M].第4 版.北京:科學(xué)出版社,2014:45-55.