吳 廣 符 平 周玉生 周潤(rùn)梅 (南華大學(xué)附屬第二醫(yī)院藥劑科,衡陽(yáng) 421001)
脂多糖(Lipopolysaccharide,LPS)是革蘭陰性細(xì)菌中的重要組成部分,也是導(dǎo)致炎癥反應(yīng)的重要毒力因子[1]。革蘭陰性細(xì)菌感染后,可誘發(fā)機(jī)體固有免疫反應(yīng)和獲得性免疫反應(yīng)。在該過(guò)程中,巨噬細(xì)胞發(fā)揮重要作用。目前已經(jīng)證實(shí),LPS 可迅速激活巨噬細(xì)胞,誘導(dǎo)其分泌多種促炎細(xì)胞因子如TNF-α、IL-1、IL-6 以及NO 和巨噬細(xì)胞趨化蛋白-1 等物質(zhì),從而促進(jìn)機(jī)體清除病原體[2]。但如果炎癥反應(yīng)持續(xù)存在,最終可導(dǎo)致嚴(yán)重的組織損傷以及多器官功能衰竭[3,4]。傳統(tǒng)治療急性炎癥反應(yīng)主要采用固醇類和非甾體類藥物治療,但由于這些藥物副作用嚴(yán)重而使其應(yīng)用受限[5],因此尋求新的抗炎輔助藥物對(duì)各類炎癥相關(guān)疾病的治療具有重要意義。
芹菜素(Apigenin,APG)是廣泛分布于水果、蔬菜(尤其是芹菜、大蒜和大白菜)中的一種黃酮類化合物,具有抗腫瘤、抗血小板聚集、抗氧化等多種生物學(xué)作用[6]。此外,體內(nèi)外實(shí)驗(yàn)也表明APG 具有一定的抗炎效應(yīng)。如Huang 等[7]發(fā)現(xiàn)APG 可誘導(dǎo)小鼠原代肝細(xì)胞表達(dá)血紅素氧合酶-1(Heme oxygenase-1,HO-1)和谷氨酸半胱氨酸連接酶,同時(shí)也能抑制尼古丁和LPS 誘導(dǎo)牙周韌帶細(xì)胞分泌炎癥細(xì)胞因子[7]。最近的研究也發(fā)現(xiàn),APG 可通過(guò)ERK 途徑抑制巨噬細(xì)胞分泌TNF-α 和IL-1β[8]。但APG是否還存在其他的作用機(jī)制目前仍不明了。本研究旨在觀察APG 對(duì)LPS 誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞分泌炎癥介質(zhì)的分子機(jī)制。
1.1 試劑 DMEM 培養(yǎng)基、胎牛血清購(gòu)自Invitrogen,APG、β-actin 多克隆抗體為Sigma-Aldrich 產(chǎn)品??寡t素氧合酶-1(Heme oxygenase-1,HO-1)、環(huán)氧化酶-2(Cyclooxygenase-2,COX-2),Nrf2 以及增殖細(xì)胞核抗原(Proliferating cell nuclear antigen,PCNA)多克隆抗體以及各類二抗購(gòu)自Santa Cruz。iNOS 多克隆抗體購(gòu)自BD Bioscience。HO-1 和Nrf2 siRNA 購(gòu)自Santa Cruz。PGE2 ELISA 試劑盒購(gòu)自R&D System。磷酸酶、蛋白酶抑制劑購(gòu)自Roche,siRNA 轉(zhuǎn)染試劑盒購(gòu)自Qiagen。
1.2 細(xì)胞培養(yǎng)與處理 RAW 264.7 細(xì)胞(ATCC)用含10%胎牛血清,100 U/ml 青霉素和100 mg/ml鏈霉素,4.5 mg/ml L-谷氨酰胺以及4.5 g/ml 的DMEM 培養(yǎng)基中,于37℃,5% CO2條件下培養(yǎng)。2~3 d 換液一次,待細(xì)胞生長(zhǎng)至密度為80%時(shí),根據(jù)不同的實(shí)驗(yàn)?zāi)康?,?xì)胞加入不同濃度的APG 作用0~16 h,或隨后加入1 μg/ml LPS 刺激8 h。
1.3 細(xì)胞漿與細(xì)胞核蛋白提取 處理結(jié)束后的細(xì)胞用冰冷PBS(pH7.4)漂洗1 次,隨后加入100 μl裂解緩沖液A (10 mmol/L HEPES pH7.9,1.5 mmol/L MgCl2,0.5 mmol/L DTT,5 μmol/L 亮抑蛋白酶肽,2 μmol/L 胃酶抑素A,1 μmol/L 抑肽酶,20 μmol/L PMSF 和1 ×磷酸酶抑制劑混合物),通過(guò)反復(fù)凍融以充分裂解細(xì)胞。隨后1 400 r/min 離心10 min,獲取上清再次離心15 min(1 400 r/min)后即為胞漿總蛋白。沉淀加入100 μl 緩沖液B(10 mmol/L Tris-HCl pH7.5,0.5% 脫氧膽酸鹽,1% NP-40,5 mmol/L EDTA,0.5 mmol/L DTT,5 μmol/L 亮抑蛋白酶肽,2 μmol/L 胃酶抑素A,1 μmol/L 抑肽酶,20 μmol/L PMSF)后,懸液于4℃震蕩30 min,1 400 r/min 離心20 min,上清即為核蛋白。
1.4 Western blot 采用含有蛋白酶抑制劑的RIPA緩沖液(25 mmol/L Tris-HCl pH7.4,150 mmol/L NaCl,1% NP-40,1% SDS)裂解細(xì)胞,并用Bradford法于595 nm 波長(zhǎng)處測(cè)定蛋白濃度。取等量蛋白經(jīng)8%~10% SDS-PAGE 后,轉(zhuǎn)印至PVDF 膜上,用5%脫脂奶粉封閉后,分別加入一抗和HRP 標(biāo)記二抗孵育,ECL 顯影。
1.5 NOx 測(cè)定 亞硝酸和硝酸鹽(Nitrite and nitrate,NOx)含量的測(cè)定根據(jù)參考文獻(xiàn)提供的方法進(jìn)行[9]。細(xì)胞培養(yǎng)上清(100 μl)加入等體積Griess 試劑后,酶標(biāo)儀下獲取545 nm 波長(zhǎng)處的吸光度以間接測(cè)定NOx 的含量。
1.6 PGE2 測(cè)定 當(dāng)生長(zhǎng)于6 孔板中的細(xì)胞長(zhǎng)滿80%~90%視野時(shí),棄培養(yǎng)基,并加入不同濃度的APG 作用1 h 后加入LPS 作用8 h。操作方法按照試劑盒提供的雙抗體夾心法進(jìn)行。通過(guò)測(cè)定450 nm 處的吸光度值,并根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算分泌至細(xì)胞外的PGE2 含量。
1.7 MTT 實(shí)驗(yàn) 采用MTT 法檢測(cè)細(xì)胞的增殖活性。即,100 μl 細(xì)胞接種于96 孔板中培養(yǎng)12 h 后換成含5%胎牛血清和1 mg/ml 青霉素、鏈霉素的培養(yǎng)基。加入不同濃度的APG 后繼續(xù)培養(yǎng)72 h。結(jié)束前4 h 各孔加入MTT 溶液20 μl(5 %),棄上清,并加入200 μl 二甲基亞砜,充分混勻,用酶標(biāo)儀測(cè)定各孔的吸光度值(A570),并計(jì)算抑制率。抑制率=(對(duì)照組A 值-實(shí)驗(yàn)室A 值)/對(duì)照組A 值×100%。
1.8 細(xì)胞轉(zhuǎn)染 約5 ×105細(xì)胞接種于60 mm 培養(yǎng)皿中18~24 h。隨后按照Qiagen 提供的操作步驟,將2 mg NF-κB 報(bào)告基因載體,100 nmol/L HO-1 siRNA 或?qū)φ誷iRNA 混合物孵育細(xì)胞。孵育4 h后,用PBS 漂洗細(xì)胞,換成完全培養(yǎng)基培養(yǎng)用于下一步研究。
1.9 NF-κB 螢光素酶實(shí)驗(yàn) 轉(zhuǎn)染有NF-κB 報(bào)告基因載體的細(xì)胞經(jīng)APG 和(或)LPS 處理完畢后,用冰冷PBS 漂洗2 遍,隨后用試劑盒提供的裂解液裂解細(xì)胞。NF-κB 螢光素酶活性按照Promega 公司試劑盒提供的方法進(jìn)行,采用TD-20/20 化學(xué)發(fā)光儀(Tumer Designs)測(cè)量其酶活性,所有數(shù)據(jù)設(shè)立3 個(gè)平行對(duì)照。
1.10 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 所有實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)重復(fù)3 次,應(yīng)用SPSS17.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,數(shù)據(jù)用±s 表示,并采用單因素方差分析數(shù)據(jù),P<0.05 為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 APG 毒性作用分析 APG 作用于細(xì)胞的最佳濃度與不同的細(xì)胞株和實(shí)驗(yàn)條件有關(guān)。為了獲取最佳的作用濃度,采用MTT 實(shí)驗(yàn)觀察不同濃度APG對(duì)RAW264.7 的毒性作用。圖1 結(jié)果顯示當(dāng)APG濃度超過(guò)30 μmol/L 時(shí),細(xì)胞的活性顯著降低,其IC50 值為(35.5 ±2.5)μmol/L,因此在隨后的研究過(guò)程中采用0~20 μmol/L 的APG 作為刺激濃度。
2.2 APG 對(duì)HO-1 表達(dá)的影響 0~20 μmol/LAPG作用RAW264.7 細(xì)胞16 h 后,可顯著誘導(dǎo)其表達(dá)HO-1,并且呈一定的劑量依賴性(圖2A)。隨后用20 μmol/L APG 作用細(xì)胞4 h 后即可誘導(dǎo)RAW264.7 細(xì)胞表達(dá)HO-1,隨APG 作用時(shí)間的延長(zhǎng),HO-1 表達(dá)水平逐漸遞增,持續(xù)到12~16 h(圖2B)。
2.3 APG 誘導(dǎo)HO-1 表達(dá)與p38 有關(guān) 采用20 μmol/L APG 作用RAW264.7 細(xì)胞0~6 h 后,Western blot 顯示2 h 后可明顯誘導(dǎo)RAW264.7 細(xì)胞中p38 磷酸化(圖3A)。而同時(shí)給予10~20 μmol/L p38 抑制劑SB203580 處理后,HO-1 的表達(dá)顯著降低(圖3B)。
2.4 APG 誘導(dǎo)HO-1 表達(dá)依賴Nrf2 激活 RAW264.7 細(xì)胞經(jīng)不同濃度APG 作用4 h 后,隨著濃度的增加,細(xì)胞漿內(nèi)Nrf2 含量逐漸降低。相應(yīng)的,細(xì)胞核內(nèi)Nrf2 的含量逐漸增高(圖4A)。而胞漿內(nèi)參β-actin 和胞核內(nèi)參PCNA 保持恒定。此外,采用siRNA 干擾沉默Nrf2 表達(dá)后,HO-1 蛋白表達(dá)量降低(圖4B)。
圖1 不同濃度APG 對(duì)RAW 264.7 細(xì)胞活性的影響Fig.1 Different concentration of APG on cell viability of RAW264.7 cells
圖2 APG 誘導(dǎo)RAW 264.7 細(xì)胞表達(dá)HO-1Fig.2 APG induces RAW 264.7 cells expression of HO-1
2.5 干擾HO-1 表達(dá)逆轉(zhuǎn)APG 抑制NOx、PGE2、COX-2 和iNOS 的表達(dá) LPS 作用RAW264.7 細(xì)胞后8 h 后,可誘導(dǎo)其分泌NOx 和PGE2(圖5A),并表達(dá)COX-2 和iNOS(圖5B)。而經(jīng)20 μmol/L APG 預(yù)處理4 h 后,可顯著抑制LPS 誘導(dǎo)的NOx 和PGE2產(chǎn)生以及COX-2 和iNOS 表達(dá)。RAW264.7 經(jīng)siRNA 沉默HO-1 表達(dá)后,與處理前相比,NOx、PGE2產(chǎn)生以及COX-2 和iNOS 表達(dá)明顯增高。
圖3 APG 經(jīng)p38 誘導(dǎo)RAW 264.7 細(xì)胞表達(dá)HO-1Fig.3 APG induces RAW 264.7 cells expression of HO-1 via p38
圖4 APG 誘導(dǎo)RAW264.7 細(xì)胞表達(dá)HO-1 與激活Nrf2 有關(guān)Fig.4 APG induces RAW264.7 cells expression of HO-1 was mediated by Nrf2 activation
圖5 干擾HO-1 表達(dá)逆轉(zhuǎn)APG 抑制NOx 和PGE2 產(chǎn)生以及COX-2 和iNOS 的表達(dá)Fig.5 Silencing of HO-1 reverses inhibitory effect of APG on NOx and PGE2 production,and COX-2 and iNOS expression
圖6 APG 抑制LPS 激活RAW264.7 細(xì)胞中NF-κBFig.6 APG inhibits LPS-activated NF-κB in RAW 264.7 cells
2.6 APG 抑制NF-κB 激活 螢光素酶報(bào)告基因結(jié)果顯示,LPS 可顯著上調(diào)NF-κB 的活性,而不同濃度APG 預(yù)處理4 h 可降低其活性,并呈一定的劑量依賴性(圖6A)。此外,LPS 也能促進(jìn)IκB 磷酸化,而APG 處理后,磷酸化IκB 含量顯著降低,見(jiàn)圖6B。
巨噬細(xì)胞在各種病原微生物引起的炎癥反應(yīng)中發(fā)揮重要作用。各種細(xì)菌和病毒均可活化巨噬細(xì)胞并誘導(dǎo)其分泌一系列炎癥細(xì)胞因子和介質(zhì)。盡管在急性期這些物質(zhì)對(duì)清除病原體感染、維持機(jī)體的穩(wěn)態(tài)方面具有積極作用,但巨噬細(xì)胞的持續(xù)活化也是引起各種病理性損傷的重要原因。因此采用藥物干預(yù)炎癥反應(yīng)發(fā)生的強(qiáng)度,是有效預(yù)防各類病理?yè)p傷的重要途徑。先前研究發(fā)現(xiàn),APG 可抑制LPS 誘導(dǎo)J774.2 細(xì)胞分泌TNF-α、IL-6 和IL-1β[10],但APG是否還具有其他的抗炎機(jī)制目前仍不清楚。在本研究當(dāng)中,我們對(duì)一些炎癥相關(guān)介質(zhì)進(jìn)行了觀察,結(jié)果發(fā)現(xiàn),APG 不僅能下調(diào)iNOS 的表達(dá)水平,也能降低NOx 的水平,同時(shí)也能抑制COX-2 的表達(dá)并下調(diào)PGE2 的分泌。通過(guò)采用抑制劑以及RNA 干擾和報(bào)告基因等方法,最終證實(shí)APG 對(duì)這些炎癥介質(zhì)的抑制效應(yīng)很大程度上是通過(guò)上調(diào)HO-1、抑制NF-κB的活性而實(shí)現(xiàn)的。
HO-1 是催化血紅素降解為膽紅素、Fe2+和CO的限速酶,又稱為熱休克蛋白32。HO-1 為誘導(dǎo)型,多種病理生理狀態(tài)可誘導(dǎo)其表達(dá),如LPS、磷壁酸、肽聚糖以及促炎細(xì)胞因子等[11]。Stuart 等[12]研究表明,LPS 通過(guò)上調(diào)HO-1 的表達(dá),從而抑制單核細(xì)胞系THP-1 過(guò)度分泌細(xì)胞因子。此外,在動(dòng)物模型中,誘導(dǎo)HO-1 表達(dá)可調(diào)節(jié)流感病毒引起的免疫反應(yīng)[13]。而HO-1 基因敲出動(dòng)物對(duì)氧化應(yīng)激以及多器官功能衰竭的敏感性增加[14],因此HO-1 的表達(dá)可能是宿主細(xì)胞免受氧化應(yīng)激與炎癥損傷的一種獲得性保護(hù)機(jī)制。一般認(rèn)為,HO-1 的表達(dá)受Nrf2 的調(diào)控,此外,PKC、PI3K/Akt 和MAPKs 也參與了HO-1的表達(dá)[15]。在本研究中,我們發(fā)現(xiàn)p38 抑制劑SB203580 可顯著抑制APG 誘導(dǎo)RAW264.7 細(xì)胞表達(dá)HO-1,而JNK 抑制劑SP600125,ERK1/2 抑制劑PD98059 均不能有效抑制APG 誘導(dǎo)HO-1 的表達(dá)(結(jié)果未顯示),這表明p38 參與了HO-1 的表達(dá),與Biederbick 等的結(jié)果類似[16]。此外,也有研究發(fā)現(xiàn)p38 磷酸化后可下調(diào)HO-1 的表達(dá),這表明p38 在調(diào)控HO-1 表達(dá)過(guò)程中發(fā)揮雙重作用[17]。還有研究顯示p38 和Nrf2 參與了內(nèi)皮細(xì)胞中HO-1 的表達(dá)[18],這表明p38 和Nrf2 參與調(diào)控HO-1 并不局限于巨噬細(xì)胞。先前雖然有大量的研究表明APG 對(duì)炎癥介質(zhì)的分泌具有抑制作用,但尚未有HO-1 參與APG調(diào)控炎癥的相關(guān)報(bào)道。如Zhang[19]發(fā)現(xiàn)APG 能下調(diào)LPS 誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞表達(dá)COX-2 和iNOS,并抑制其凋亡。Jeong[20]的研究發(fā)現(xiàn)APG 可抑制LPS 誘導(dǎo)牙周膜細(xì)胞表達(dá)iNOS、COX-2 以及分泌PGE2,其機(jī)制與抑制PI3K 信號(hào)通路以及蛋白激酶C 的活性有關(guān)。此外,Li 等[21]研究也發(fā)現(xiàn)APG 不僅能抑制內(nèi)毒素肺損傷大鼠中炎癥反應(yīng)的強(qiáng)度,同時(shí)也能抑制MAPKs 和NF-κB 的激活。為了進(jìn)一步明確HO-1 是否參與APG 調(diào)控炎癥介質(zhì)的表達(dá)與分泌,本研究隨后通過(guò)采用特異性siRNA 干擾HO-1的表達(dá)后顯示,APG 對(duì)NOx、PGE2 以及iNOS 和COX-2 表達(dá)的抑制作用隨之降低,這表明APG 對(duì)這些炎癥介質(zhì)的調(diào)控是通過(guò)上調(diào)HO-1 而實(shí)現(xiàn)的。HO-1 發(fā)揮對(duì)炎癥的保護(hù)作用仍未完全明了。主要可能與其催化產(chǎn)物CO、膽紅素和Fe2+有關(guān)。CO 是重要的氣體信號(hào)分子,能通過(guò)自分泌或旁分泌方式誘導(dǎo)靶細(xì)胞產(chǎn)生第二信使cGMP 而發(fā)揮生理功能。膽紅素在體內(nèi)是重要的抗氧化劑,不但可以直接清除氧自由基,而且還可以減輕炎癥性細(xì)胞的聚集。Fe2+可以誘導(dǎo)鐵蛋白的合成,后者可減少細(xì)胞內(nèi)游離鐵的蓄積而發(fā)揮保護(hù)作用,還可以拮抗ROS 對(duì)細(xì)胞的毒性作用[22]。
本研究的另一重要發(fā)現(xiàn)是APG 可抑制NF-κB的活性。NF-κB 是參與眾多炎癥因子和炎癥介質(zhì)的主要核轉(zhuǎn)錄因子。生理?xiàng)l件下,NF-κB 中的p65 亞基和抑制因子IκB 結(jié)合而位于細(xì)胞漿中。當(dāng)細(xì)胞受到各種外源性因素作用后,可誘導(dǎo)IκB 磷酸化而降解,p65 亞基隨后轉(zhuǎn)位至細(xì)胞核中,與靶基因啟動(dòng)子上的結(jié)合原件結(jié)合而促進(jìn)其轉(zhuǎn)錄。研究發(fā)現(xiàn),APG可在小鼠模型中抑制NF-κB p65 亞基中第536 位絲氨酸磷酸化而抑制其激活[23]。本研究通過(guò)報(bào)告基因結(jié)果也顯示APG 可抑制NF-κB 的轉(zhuǎn)錄活性,同時(shí)也發(fā)現(xiàn)APG 能以劑量依賴性方式抑制抑制IκB 磷酸化,最終抑制NF-κB 的活性??傊?,本研究證實(shí)APG 的抗炎作用與其誘導(dǎo)HO-1 表達(dá)有關(guān),其機(jī)制可能是通過(guò)激活p38 和Nrf2 而實(shí)現(xiàn)的。除了HO-1直接對(duì)iNOS 和COX-2 的負(fù)調(diào)控作用外,APG 抑制NF-κB 的激活也可能是其重要的抗炎機(jī)制。
[1]Park BS,Lee JO.Recognition of lipopolysaccharide pattern by TLR4 complexes[J].Exp Mol Med,2013,45:e66.
[2]Roger T,Delaloye J,Chanson AL,et al.Macrophage migration inhibitory factor deficiency is associated with impaired killing of gram-negative bacteria by macrophages and increased susceptibility to Klebsiella pneumoniae sepsis[J].J Infect Dis,2013,207(2):331-339.
[3]Hotamisligil GS.Inflammation and metabolic disorders[J].Nature,2006,444(7121):860-867.
[4]Rosenblat JD,Cha DS,Mansur RB,et al.Inflamed moods:a review of the interactions between inflammation and mood disorders[J].Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry,2014,53:23-34.
[5]Walker JS,Nguyen TV,Day RO.Clinical response to non-steroidal anti-inflammatory drugs in urate-crystal induced inflammation:a simultaneous study of intersubject and intrasubject variability[J].Br J Clin Pharmacol,1994,38(4):341-347.
[6]Lefort EC,Blay J.Apigenin and its impact on gastrointestinal cancers[J].Mol Nutr Food Res,2013,57(1):126-144.
[7]Huang CS,Lii CK,Lin AH,et al.Protection by chrysin,apigenin,and luteolin against oxidative stress is mediated by the Nrf2-dependent up-regulation of heme oxygenase 1 and glutamate cysteine ligase in rat primary hepatocytes[J].Arch Toxicol,2013,87(1):167-178.
[8]Wang J,Liao Y,F(xiàn)an J,et al.Apigenin inhibits the expression of IL-6,IL-8,and ICAM-1 in DEHP-stimulated human umbilical vein endothelial cells and in vivo[J].Inflammation,2012,35(4):1466-1476.
[9]Kang YJ,Koo EB,Lee YS,et al.Prevention of the expression of inducible nitric oxide synthase by a novel positive inotropic agent,YS 49,in rat vascular smooth muscle and RAW 264.7 macrophages[J].Br J Pharmacol,1999,128(2):357-364.
[10]Kowalski J,Samojedny A,Paul M,et al.Effect of apigenin,kaempferol and resveratrol on the expression of interleukin-1beta and tumor necrosis factor-alpha genes in J774.2 macrophages[J].Pharmacol Rep,2005,57(3):390-394.
[11]游曉星,馬小華,劉良專,等.支原體脂肽經(jīng)TLR2,6/c-Src/PI3K 通路誘導(dǎo)單核細(xì)胞表達(dá)血紅素氧合酶-1[J].中國(guó)免疫學(xué)雜志,2014,30(5):587-590.
[12]Rushworth SA,MacEwan DJ,O'Connell MA.Lipopolysaccharideinduced expression of NAD(P)H:quinone oxidoreductase 1 and heme oxygenase-1 protects against excessive inflammatory responses in human monocytes[J].J Immunol,2008,181 (10):6730-6737.
[13]Cummins NW,Weaver EA,May SM,et al.Heme oxygenase-1 regulates the immune response to influenza virus infection and vaccination in aged mice[J].FASEB J,2012,26(7):2911-2918.
[14]Gozzelino R,Jeney V,Soares MP.Mechanisms of cell protection by heme oxygenase-1[J].Annu Rev Pharmacol Toxicol,2010,50:323-354.
[15]Zou W,Chen C,Zhong Y,et al.PI3K/Akt pathway mediates Nrf2/ARE activation in human L02 hepatocytes exposed to lowconcentration HBCDs[J].Environ Sci Technol,2013,47(21):12434-12440.
[16]Biederbick A,Kern HF,Elsasser HP.Monodansylcadaverine(MDC)is a specific in vivo marker for autophagic vacuoles[J].Eur J Cell Biol,1995,66(1):3-14.
[17]Naidu S,Vijayan V,Santoso S,et al.Inhibition and genetic deficiency of p38 MAPK up-regulates heme oxygenase-1 gene expression via Nrf2[J].J Immunol,2009,182(11):7048-7057.
[18]Pullikotil P,Chen H,Muniyappa R,et al.Epigallocatechin gallate induces expression of heme oxygenase-1 in endothelial cells via p38 MAPK and Nrf-2 that suppresses proinflammatory actions of TNF-alpha[J].J Nutr Biochem,2012,23(9):1134-1145.
[19]Zhang HT,Zha ZG,Cao JH,et al.Apigenin accelerates lipopolysaccharide induced apoptosis in mesenchymal stem cells through suppressing vitamin D receptor expression[J].Chin Med J (Engl),2011,124(21):3537-3545.
[20]Jeong GS,Lee SH,Jeong SN,et al.Anti-inflammatory effects of apigenin on nicotine-and lipopolysaccharide-stimulated human periodontal ligament cells via heme oxygenase-1[J].Int Immunopharmacol,2009,9(12):1374-1380.
[21]Li KC,Ho YL,Hsieh WT,et al.Apigenin-7-Glycoside Prevents LPS-Induced Acute Lung Injury via Downregulation of Oxidative Enzyme Expression and Protein Activation through Inhibition of MAPK Phosphorylation[J].Int J Mol Sci,2014,16 (1):1736-1754.
[22]Soares MP,Bach FH.Heme oxygenase-1:from biology to therapeutic potential[J].Trends Mol Med,2009,15(2):50-58.
[23]Nicholas C,Batra S,Vargo MA,et al.Apigenin blocks lipopolysaccharide-induced lethality in vivo and proinflammatory cytokines expression by inactivating NF-kappaB through the suppression of p65 phosphorylation[J].J Immunol,2007,179(10):7121-7127.