趙晴瀟,魏 群
(東北電力大學(xué)化學(xué)工程學(xué)院,吉林吉林132012)
α-半乳糖苷酶也稱蜜二糖酶,屬于外切糖苷酶類,加水可以分解蜜二糖[1]。α-半乳糖苷酶廣泛存在于動物、植物和微生物中,不同來源的α-半乳糖苷酶其理化特性相差明顯。以植物(咖啡、車前草、蠶豆、西瓜)取材的α-半乳糖苷酶研究得較多。在各種哺乳動物組織勻漿中也存在α-半乳糖苷酶,以人和鼠的甲狀腺、腎臟和脾臟的酶活最高。微生物來源的α-半乳糖苷酶研究的也比較深入。特別是絲狀真菌α-半乳糖苷酶由于其合適的pH、良好的穩(wěn)定性、細胞外分泌和表達量較高的特點而成為研究的熱點。但當前國內(nèi)外學(xué)者對于不同來源α-半乳糖苷酶的研究發(fā)現(xiàn),無論是從動植物、微生物或者采用其它技術(shù)手段獲得的α-半乳糖苷酶均存在著如下兩個問題:一是該酶的提取工藝復(fù)雜,耗費大量生產(chǎn)成本,為該酶在工業(yè)上大量應(yīng)用的一個弊端;二是普遍酶活性不高,固定化后活力進一步下降,導(dǎo)致重復(fù)使用的困難,不能滿足工業(yè)化生產(chǎn)中特殊要求[2-5]。本實驗試圖篩選一株具有高酶活的產(chǎn)α-半乳糖苷酶菌株并對其固定化研究,以求解決這一問題。
1.1.1 主要試劑
泡菜汁(市售)、對硝基苯α-D-半乳糖苷和對硝基酚、5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷(X-α-Gal)、棉子糖。
1.1.2 主要儀器
離心機、恒溫培養(yǎng)箱、搖床、數(shù)顯恒溫水浴鍋、滅菌鍋、紫外誘變箱、循環(huán)水多用真空泵。
1.1.3 培養(yǎng)基
初篩培養(yǎng)基:蛋白胨10 g、牛肉膏10 g、酵母提取物5 g、磷酸二氫鉀2 g、檸檬酸二胺2 g、乙酸鈉5 g、葡萄糖20 g、七水硫酸鎂0.58 g、四水硫酸錳0.25 g、吐溫800 mL,瓊脂15 g,蒸餾水1 000 mL。1 mL X-α-Gal/L溶液(每800毫升添加50毫克指示劑)。
發(fā)酵培養(yǎng)基:初篩培養(yǎng)基中2%的葡萄糖用棉子糖取代。
1.2.1 產(chǎn)α-半乳糖苷酶菌株的篩選
(1)初篩
在無菌條件下,用無菌雙蒸水對泡菜汁進行逐級梯度稀釋(10-1-10-7),吸取 10-5、10-6及 10-7三個梯度各100 μL溶液分別涂布在初篩固體培養(yǎng)基上,37℃下培養(yǎng)3-4 d,使菌落變成藍色的菌落,挑取單菌落進行液體發(fā)酵。
(2)發(fā)酵
將初篩的菌種接種于發(fā)酵培養(yǎng)基中,用對硝基酚法測定酶活,篩選出酶活力最大的菌株作為目標菌株[5]。
(3)紫外線誘變
將制備好的菌懸液放置在紫外誘變箱中,利用15W紫外燈,照射距離25 cm,設(shè)置照射時間分別為0.5 min、1.0 min、1.5 min、2.0 min、2.5 min、3 min 6 個梯度處理。
(4)亞硝酸鈉誘變
將制備好的菌懸液用亞硝酸鈉及醋酸分別處理2 min、4 min、6 min、8 min、10 min,加入 pH 8.6的Na2HPO4溶液終止反應(yīng)。以亞硝酸鈉處理6 min的菌株A為實驗菌種,在斜面上連續(xù)傳代5代。
1.2.2 對硝基酚法測α-半乳糖苷酶酶活力
利用對硝基酚法測α-半乳糖苷酶酶活力[6]。
1.2.3 酶學(xué)性質(zhì)研究
(1)α-半乳糖苷酶的最適pH
將α-半乳糖苷酶液在pH4.5-pH7.5下進行酶促反應(yīng)以測定其最適pH值。以pNPG為底物,37℃下反應(yīng)15 min測定酶活[7]。
(2)α-半乳糖苷酶的最適溫度
將α-半乳糖苷酶液在35℃-65℃下進行酶促反應(yīng)以測定其最適溫度,以pNPG為底物,pH5.5反應(yīng)15 min測定酶活。
(3)熱穩(wěn)定性
以pNPG為底物,pH5.5,溫度分別為30℃、40℃、50℃、60℃、70℃、80℃的條件下保溫1 h,測定保溫后的殘余酶活性[8]。
(4)金屬離子對α-半乳糖苷酶活力的影響
用濃度為0.01 mol/l的金屬離子Ca2+、K+、Fe3+、Cu2+、EDTA分別與酶液以1:1的比例進行混合,37℃保存1 h后,分別在最適條件下進行酶活的測定。以未處理的酶液的酶活為100%計。
1.2.4 α-半乳糖苷酶固定化
配制不同濃度(1%、2%、3%、4%、5%)的海藻酸鈉,各取5 mL放于不同的燒杯中,各加入5 mL菌懸液,混勻靜置30 min,用7號注射器吸取1 mL混合液逐滴滴入20 mL 2%的CaCl2溶液中,室溫固定0.5 h。
2.1.1 菌種的定向篩選
吸取10-5、10-6及10-7三個梯度稀釋的泡菜汁涂布于初篩固體培養(yǎng)基上,37℃下培養(yǎng)3-4 d后,菌落顯示藍色的有9株,進一步通過發(fā)酵培養(yǎng)后測定酶活。酶活力最強菌株酶活可達19.7 U/mL,本研究以此菌株作為出發(fā)菌株。此菌株在固體培養(yǎng)基上生長48 h后,形成乳白色圓形菌落,且表面光滑、邊緣整齊、無褶皺、呈短桿狀、直徑約1 mm、革蘭氏染色陽性。
2.1.2 紫外誘變選育
將制備好的菌懸液放置在紫外誘變箱中,誘變 0.5 min、1.0 min、1.5 min、2.0 min、2.5 min、3 min,紫外誘變對致死率的影響結(jié)果如表1所示。根據(jù)菌種誘變致死率與基因突變率的一般規(guī)律,致死率在80%時的正突變率較高,確定照射時間為2.0 min為最佳處理時間。將照射時間為2.0 min的菌株進行發(fā)酵培養(yǎng),取發(fā)酵培養(yǎng)液測酶活,結(jié)果顯示酶活達28.6 U/mL,酶活提高45%。
表1 紫外線誘變處理結(jié)果
2.1.3 亞硝酸鈉誘變
將制備好的菌懸液用亞硝酸鈉與醋酸的混合液分別處理2 min、4 min、6 min、8 min、10 min,加入pH 8.6的Na2HPO4溶液終止反應(yīng)。處理時間對致死率的影響結(jié)果如表2所示。根據(jù)菌種誘變致死率與基因突變的一般規(guī)律,致死率在80%時的正突變率較高,確定處理時間為6 min為最佳處理時間,酶活達36.9 U/mL酶活相比出發(fā)菌株提高87%。
表2 亞硝酸鈉誘變處理結(jié)果
2.1.4 傳代性能
傳代后測定酶活力結(jié)果如表3所示,經(jīng)多次傳代,該菌株產(chǎn)α-半乳糖苷酶活性沒有多大變化,均保持在95%左右。表明該突變菌株具有較好的遺傳穩(wěn)定性,可作為工業(yè)化大生產(chǎn)的種子使用。
表3 傳代穩(wěn)定性
2.2.1 α-半乳糖苷酶的最適pH和溫度
以pNPG為底物,反應(yīng)溫度37℃,pH為4.5-7.5,設(shè)pH間隔為0.5的不同pH緩沖液,反應(yīng)時間15 min,測定酶活。所測得的最高酶活為基準酶活100%,其余數(shù)據(jù)折算,以比較不同的pH緩沖液對相同酶液的酶活影響。結(jié)果如圖1所示,菌株液體發(fā)酵產(chǎn)生的α-半乳糖苷酶在pH5.5左右表現(xiàn)出較高的酶活力。說明該酶最適pH偏酸,適合應(yīng)用于酸性環(huán)境下的工業(yè)化生產(chǎn)。
圖1 pH對α-半乳糖苷酶活力的影響
以pNPG為底物,反應(yīng)pH5.5,35℃-65℃,設(shè)間隔溫度5℃,反應(yīng)時間15 min,測定酶活。所測得的最高酶活為基準酶活100%,其余數(shù)據(jù)折算,以比較不同的溫度對相同酶液的酶活影響。結(jié)果如圖2所示,酶活力隨溫度升高而增大,測得最適反應(yīng)溫度,超過此溫度,酶活力便急劇下降。菌株所產(chǎn)α-半乳糖苷酶的最適作用溫度為50℃,當溫度超過50℃酶活力下降較快。
2.2.2 α-半乳糖苷酶的熱穩(wěn)定性
以pNPG為底物,pH5.5,溫度分別為30℃、40℃、50℃、60℃、70℃、80℃的條件下保溫1 h,測定保溫后的殘余酶活性,結(jié)果如圖3所示。酶活力在30℃、40℃和50℃時都比較穩(wěn)定,保持為90%以上;在60℃時酶活力保留在35%左右,70℃時酶活僅保留了約5%;而80℃保溫1.0 h酶活就已降到0%,完全失活。說明α-半乳糖苷酶在50度以下比較穩(wěn)定,50℃以上酶活逐漸喪失,實際應(yīng)用中應(yīng)盡量將其存放在50℃以下環(huán)境,保證其最大酶活力的發(fā)揮。
圖2 溫度對α-半乳糖苷酶活力的影響
將1%-6%海藻酸鈉溶液與酶液按1∶1比例混合,吸入注射器內(nèi),再逐滴滴入2%氯化鈣和卡拉膠混合溶液中,即成規(guī)則球形,0.5 h后,測定酶的活力。結(jié)果如圖4所示,海藻酸鈉固定化后,酶活有不同程度損失,海藻酸鈉濃度為4%時酶活力較高,可以保持在70%左右[9]。因此可用4%海藻酸鈉固定α-半乳糖苷酶。
圖3 α-半乳糖苷酶的熱穩(wěn)定性圖
圖4 海藻酸鈉濃度對固定化酶酶活的影響
本實驗以泡菜汁為原料篩選產(chǎn)α-半乳糖苷酶菌株,通過X-α-Gal平板顯色初篩,獲得9株產(chǎn)α-半乳糖苷酶的菌株。其中酶活力最強菌株酶活達19.7 U/mL。以該菌株為出發(fā)菌株,分別通過紫外線誘變和亞硝酸鈉誘變處理,使誘變菌株酶活達到36.9 U/mL。對高酶活菌株進行5次傳代培養(yǎng),誘變后的菌株的高酶活性能未發(fā)生很大變化,表明其具有良好的遺傳穩(wěn)定型。接著研究了復(fù)篩得到的α-半乳糖苷酶酶學(xué)性質(zhì),此酶的最適反應(yīng)溫度為50℃,最適pH為5.5。初步探索該酶的固定化結(jié)果表明海藻酸鈉固定化α-半乳糖苷酶的最佳濃度條件為:以4%的海藻酸鈉與稀釋酶液1∶1(V∶V)混合時固定化酶的酶活較高。一種固定化酶能否應(yīng)用于工業(yè)生產(chǎn),關(guān)鍵在于固定化方法要簡單易行、固定化后酶的活性要高、操作半衰期要長、固定化費用要低。本試驗用海藻酸鈉固定化α-半乳糖苷酶的方法雖然簡單易行、固定化費用較低、所得固定化酶的酶活較高,但機械強度較差。凝膠強度不夠而導(dǎo)致易破碎溶解且海藻酸鈣凝膠不耐熱,高溫下加速溶解,因此仍有待進一步研究。成品化的α-半乳糖苷酶有望于解決特殊人群對豆類食品的消化障礙,提高豆粕在飼料中的利用率,提高蔗糖的析出率,增加包埋藥物的穩(wěn)定性,延長藥效[10-13]。
[1]郝桂娟,張凱,王學(xué)智.α-半乳糖苷酶的研究進展[J].中國畜牧獸醫(yī),2013,23(3):223-225.
[2]邊連全,白東偉,劉顯軍.α-半乳糖苷酶和木聚糖酶在斷奶仔豬日糧中的應(yīng)用效果評價[J].動物營養(yǎng)學(xué)報,2010,21(2):66-69.
[3]辛永平,孔文濤,陸文偉,等.K1α-半乳糖苷酶酶學(xué)性質(zhì)[J].山東大學(xué)學(xué)報:理學(xué)版,2015,50(1):50-55.
[4]朱振元,劉曉翠,郭蓉,等.蛹蟲草多糖對α-葡萄糖苷酶活性的抑制研究[J].現(xiàn)代食品科技,2014,30(12):55-60.
[5]許堯興,許少春,姚曉紅,等.α-半乳糖苷酶產(chǎn)酶菌種的定向篩選及誘變選育[J].浙江農(nóng)業(yè)學(xué)報,2006,18(5):362-264.
[6]許堯興,李艷麗.黑曲霉變種α-半乳糖苷酶的分離純化及其酶學(xué)性質(zhì)研究[J].浙江大學(xué)學(xué)報:農(nóng)業(yè)與生命科學(xué)版,2009,352:147-152.
[7]崔愛萍,遲乃玉,張慶芳.海洋低溫β-半乳糖苷酶菌株篩選、鑒定及酶的分離純化[J].食品與發(fā)酵工業(yè).2013,39(2):92-96.
[8]董巖巖,張燕婕,黃遵錫.產(chǎn)α-半乳糖苷酶菌株的篩選、鑒定及其酶學(xué)特性的研究[J].飼料工業(yè),2011,32(14):22-25.
[9]喬楠,郭威,于大禹.固定化基因工程菌應(yīng)用于水環(huán)境污染治理的研究進展[J].東北電力大學(xué)學(xué)報,2010,30(2):18-21.
[10]Patil A,Praveen K,Mulimani V,et al.alpha-galactosidase from bacillus megaterium VHM1 and its application in removal of flatulence-causing factors from soymilk[J].Microbiol Biotechnol.2010,20(5):1546-1554.
[11]Yafeng Z,Gang S,Xiao-Tong Z,et al.Identification of an intestine-specific promoter and inducible expression of bacterial alpha-galactosidase in mammalian cells by a lac operon system[J].J Anim Sci Biotechnol,2012,3(1)32:245-248.
[12]張?zhí)m河,韓猛,鄭梅花,等.Cu2+對SBR運行效果的影響[J].東北電力大學(xué)學(xué)報,2014,34(6):30-33.
[13]楊日光,張?zhí)m河,劉強,等.廢水生物處理工藝短程硝化影響因素探討[J].東北電力大學(xué)學(xué)報,2012,32(1):62-64.