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    黑柴胡黃酮純化及其與維生素C、蘆丁協(xié)同抗氧化作用

    2015-01-16 05:57:45劉軍軍安紅鋼吳冬青
    中成藥 2015年6期
    關(guān)鍵詞:提液大孔蘆丁

    李 帥, 劉軍軍, 安紅鋼, 吳冬青

    (河西學(xué)院化學(xué)化工學(xué)院,甘肅省高校河西走廊特色資源利用省級(jí)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,甘肅張掖734000)

    黑柴胡黃酮純化及其與維生素C、蘆丁協(xié)同抗氧化作用

    李 帥, 劉軍軍, 安紅鋼, 吳冬青*

    (河西學(xué)院化學(xué)化工學(xué)院,甘肅省高校河西走廊特色資源利用省級(jí)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,甘肅張掖734000)

    目的通過(guò)NKA-Ⅱ大孔吸附樹(shù)脂對(duì)黑柴胡黃酮進(jìn)行分離純化,并探究純化物與維生素C(VC)和蘆丁的復(fù)配抗氧化作用。方法以靜態(tài)吸附率和解吸率為指標(biāo),確定黑柴胡黃酮純化工藝,并應(yīng)用·DPPH清除實(shí)驗(yàn)和等輻射分析法(Isobologram)研究復(fù)配抗氧化作用。結(jié)果NKA-Ⅱ大孔吸附樹(shù)脂純化黑柴胡黃酮的最佳條件為pH 2,黃酮質(zhì)量濃度0.608 4 mg/m L,70 mL 60%乙醇溶液洗脫。在此條件下,樹(shù)脂富集倍數(shù)達(dá)5.05倍。清除·DPPH能力為VC>VC樣品復(fù)配組>蘆丁樣品復(fù)配組>蘆?。敬痔嵋海炯兓?。結(jié)論純化物與VC和蘆丁間存在協(xié)同抗氧化作用。

    黑柴胡;黃酮;純化;協(xié)同抗氧化作用

    黑柴胡Bupleurum smithii Wolff為傘形科柴胡屬多年生草本植物[1],味苦,性微寒,主要分布于河北、山西、陜西、河南、甘肅、青海、內(nèi)蒙古等地區(qū)。其化學(xué)成分主要為柴胡皂苷、甾醇、揮發(fā)油、多糖、黃酮等[2],可用于治療感冒發(fā)熱、胸部擴(kuò)張?zhí)弁?、月?jīng)不調(diào)等病癥,具有解熱、抗炎、抗病毒感染、免疫調(diào)節(jié)等功效[2-3]。目前,張如意等[4]從黑柴胡中鑒定出2種新的柴胡皂苷——柴胡皂苷m和柴胡皂苷n;楊瑤珺等[5]從黑柴胡中提取出揮發(fā)油成分,并通過(guò)GC-MS技術(shù)鑒定出36個(gè)化合物;陳喜奎等[6]從黑柴胡根中分得柴胡次皂苷A、D,柴胡皂苷b1、b2、g及柴胡皂苷元A;劉秀芳等[7]以·DPPH、·OH、O2-·清除為體系,研究小葉黑柴胡莖葉總黃酮的抗氧化性。但是目前對(duì)黑柴胡的研究主要集中于成分分析,而對(duì)其黃酮類化合物協(xié)同抗氧化作用的研究較少。有報(bào)道稱,復(fù)合抗氧化劑相比單一抗氧化劑,具有活性高、成本低等優(yōu)點(diǎn),同時(shí)可避免高劑量時(shí)帶來(lái)的食品安全問(wèn)題[8]。本實(shí)驗(yàn)采用NKA-Ⅱ大孔吸附樹(shù)脂對(duì)黑柴胡黃酮進(jìn)行純化,以·DPPH清除實(shí)驗(yàn)和等輻射分析法研究黑柴胡黃酮純化物與VC、蘆丁協(xié)同抗氧化作用,旨在為黑柴胡的開(kāi)發(fā)利用提供理論依據(jù)。

    1 材料和方法

    1.1 材料與試劑 黑柴胡于2013年采自甘肅隴西,粉碎備用。

    NKA-Ⅱ、XDA-1、NKA-9、LSA-21、LX-38、D4020、D4006大孔吸附樹(shù)脂 (南開(kāi)大學(xué)化工廠);蘆丁 (中國(guó)醫(yī)藥集團(tuán)上?;瘜W(xué)試劑公司,C27H30O16·3H2O≥95.0%);·DPPH(梯希愛(ài)化成工業(yè)發(fā)展有限公司)??箟难幔╒C)、亞硝酸鈉、硝酸鋁、氫氧化鈉、丙酮、無(wú)水乙醇等均為分析純 (國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司)。

    1.2 儀器 HH-4型數(shù)顯電子恒溫水浴鍋 (常州國(guó)華電器有限公司);RE-2000A型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 (上海亞榮生化儀器廠);WFJ-2100型可見(jiàn)分光光度計(jì) (尤尼柯儀器有限公司);SHA-B型恒溫振蕩器(國(guó)華電器有限公司);SHB-Ⅲ型循環(huán)水式多用真空泵 (鄭州長(zhǎng)城科工貿(mào)有限公司)。

    1.3 方法

    1.3.1 黑柴胡黃酮粗提液的制備 精密稱取黑柴胡粉末于250mL圓底燒瓶中,以料液比1∶30(g/mL)加入80%乙醇,70℃下回流提取1 h,過(guò)濾,濾液減壓濃縮至無(wú)醇味,冷藏備用。

    1.3.2 黃酮粗提液質(zhì)量濃度的測(cè)定 標(biāo)準(zhǔn)曲線采用NaNO2-Al(NO3)3-NaOH比色法[9],蘆?。?.235 0 mg/ mL)為對(duì)照品溶液,以蘆丁質(zhì)量濃度 (C)為橫坐標(biāo),吸光度值(A)為縱坐標(biāo)建立回歸方程A=11.079C-0.029,r=0.999 9,線性范圍0.009 4~0.056 4 mg/mL。

    精密移取1.00 mL黃酮粗提液于25 m L量瓶中,80%乙醇定容。再精密移取2.00 mL,按標(biāo)準(zhǔn)曲線的方法測(cè)定吸光度,根據(jù)回歸方程計(jì)算黃酮質(zhì)量濃度。

    1.3.3 樹(shù)脂的預(yù)處理[10]稱取大孔吸附樹(shù)脂適量,按1∶10(g/mL)比例加入丙酮,50℃下回流3 h后過(guò)濾,樹(shù)脂用95%乙醇浸泡24 h后再過(guò)濾,蒸餾水洗滌至無(wú)醇味,依次用5%HCl和5%NaOH浸泡3 h,蒸餾水洗滌至中性,備用。

    1.3.4 大孔吸附樹(shù)脂的篩選[11]

    1.3.4.1 靜態(tài)吸附試驗(yàn) 精密稱取預(yù)處理后的7種大孔吸附樹(shù)脂各1.000 g,置于100 mL具塞錐形瓶中,分別加入0.2 mg/mL,pH為2的黃酮溶液30.00 mL,恒溫振蕩器上振蕩 (30℃,轉(zhuǎn)速150 r/min)吸附24 h,精密吸取1.00 mL上清液,測(cè)定黃酮質(zhì)量濃度,按下式計(jì)算吸附率。

    注:C為吸附前溶液的總黃酮質(zhì)量濃度;C'為吸附后溶液的總黃酮質(zhì)量濃度。

    1.3.4.2 靜態(tài)解吸試驗(yàn) 將吸附飽和的7種樹(shù)脂用蒸餾水淋洗后,置于100 mL具塞錐形瓶中,加入95%的乙醇溶液50.00 mL,振蕩(50℃,轉(zhuǎn)速150 r/min)解吸24 h,精密吸取1.00mL解吸液,測(cè)定黃酮質(zhì)量濃度,按下式計(jì)算解吸率:

    注:C為吸附前溶液的總黃酮質(zhì)量濃度;C'為吸附后溶液的總黃酮質(zhì)量濃度;V為吸附液的體積;C″為解吸后溶液的總黃酮質(zhì)量濃度;V'為解吸液的體積。

    1.3.5 黑柴胡黃酮分離純化

    1.3.5.1 pH對(duì)吸附率的影響[10]精密稱取最優(yōu)大孔吸附樹(shù)脂1.000 g,置于100 mL具塞錐形瓶中,加入0.2 mg/mL,不同pH的黃酮溶液30.00 mL,于恒溫振蕩器上振蕩 (30℃,轉(zhuǎn)速150 r/min)吸附24 h,準(zhǔn)確精密吸取1.00 mL上清液,測(cè)定黃酮質(zhì)量濃度,計(jì)算吸附率,確定最佳pH值。

    1.3.5.2 靜態(tài)等溫吸附曲線[12]精密稱取最優(yōu)大孔吸附樹(shù)脂1.000 g,置于100 mL具塞錐形瓶中,加入最佳pH,不同質(zhì)量濃度的黃酮液30.00 mL,恒溫振蕩器上振蕩(30℃,轉(zhuǎn)速150 r/min)吸附24 h,精密吸取1.00 mL上清液,測(cè)定黃酮質(zhì)量濃度,計(jì)算吸附率,繪制靜態(tài)等溫吸附曲線。

    1.3.5.3 解吸劑的選擇[13]取最佳靜態(tài)吸附條件下所得飽和吸附樹(shù)脂,蒸餾水淋洗后,置于100 mL具塞錐形瓶中,加入不同體積分?jǐn)?shù)的乙醇溶液50.00 mL,振蕩 (50℃,轉(zhuǎn)速150 r/m in)解吸24 h,精密吸取1.00 mL解吸液,測(cè)定黃酮質(zhì)量濃度,計(jì)算解吸率,確定最佳解吸劑。

    1.3.5.4 動(dòng)態(tài)吸附-解吸試驗(yàn)[12-13]精密稱取已處理好的最優(yōu)大孔吸附樹(shù)脂10 g,裝于層析柱中,徑高比為2∶8。將最佳pH和最優(yōu)質(zhì)量濃度的黃酮液以1 mL/min的體積流量過(guò)柱,使其充分透過(guò)樹(shù)脂柱 (當(dāng)流出液質(zhì)量濃度為上柱黃酮液濃度的2/3時(shí),可認(rèn)為已透過(guò))。再用8 BV蒸餾水沖洗樹(shù)脂柱,用靜態(tài)解吸實(shí)驗(yàn)所得的最佳乙醇體積分?jǐn)?shù)洗脫(體積流量1mL/min),每10.00mL為1份收集,測(cè)定吸光度,計(jì)算黃酮質(zhì)量濃度,繪制洗脫曲線。

    1.3.5.5 純化效果檢驗(yàn)[14]將黃酮粗提液及最佳條件下所得的純化液減壓濃縮,真空干燥。分別稱取各樣品0.1 g,60%乙醇溶解,定容至100 mL。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線方法測(cè)定黃酮質(zhì)量濃度,計(jì)算樣品純度。

    1.3.6 清除·DPPH實(shí)驗(yàn)[15]

    1.3.6.1 樣品液?jiǎn)我豢寡趸饔?精密吸取不同質(zhì)量濃度的樣品液1.00 m L于試管中,加入100μg/mL的·DPPH溶液1.00mL,加水補(bǔ)充至5 mL,避光放置30 min后,在517 nm下測(cè)定吸光度,按下式計(jì)算純化前后黃酮液、VC、蘆丁對(duì)·DPPH清除率。

    注:A0為未加樣品液的·DPPH溶液的吸光度;Ai為所測(cè)樣品液的吸光度;Aj為相應(yīng)質(zhì)量濃度樣品液的本底吸光值。

    1.3.6.2 純化物與VC、蘆丁復(fù)配抗氧化作用[16]以“1.3.6.1”項(xiàng)實(shí)驗(yàn)所得的VC和蘆丁清除·DPPH的IC50值為參考,選擇VC和蘆丁-純化物 (質(zhì)量濃度比)為指標(biāo)。按一定比例混合后,應(yīng)用 “1.3.6.1”項(xiàng)方法測(cè)定復(fù)合液的清除率并計(jì)算其IC50值,繪制Isobologram分析圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 黑柴胡黃酮粗提液的質(zhì)量濃度 根據(jù) “1.3.2”項(xiàng)方法進(jìn)行5次平行實(shí)驗(yàn),測(cè)得黃酮粗提液質(zhì)量濃度為2.538 mg/mL,RSD為0.7692%。

    2.2 最優(yōu)大孔吸附樹(shù)脂的篩選 根據(jù) “1.3.4”項(xiàng)方法進(jìn)行3次平行實(shí)驗(yàn),結(jié)果見(jiàn)表1。

    表1 各種大孔樹(shù)脂的吸附率和解吸率

    由表1可知,各種大孔樹(shù)脂間吸附率相當(dāng),均在80%~90%之間,而解吸率則相差較大,其中以NKA-Ⅱ大孔樹(shù)脂為最佳,達(dá)86.75%,而其他各樹(shù)脂均在80%以下。綜合考慮,本實(shí)驗(yàn)選擇NKA-Ⅱ大孔樹(shù)脂為最優(yōu)樹(shù)脂。

    2.3 靜態(tài)吸附-解吸條件

    2.3.1 pH對(duì)吸附率的影響 根據(jù)“1.3.5.1”項(xiàng)的方法進(jìn)行實(shí)驗(yàn),結(jié)果見(jiàn)圖1。

    由圖1可知,pH 2時(shí),吸附率較高,但隨著pH增大,吸附率逐漸下降。推測(cè)可能是由于黃酮的多酚結(jié)構(gòu)使其具有一定酸性,在酸性條件下較易被樹(shù)脂吸附,而當(dāng)溶液偏堿性時(shí),黃酮分子的H+離子丟失,轉(zhuǎn)化為離子結(jié)構(gòu),故不易被吸附[17]。因此,本實(shí)驗(yàn)選擇最佳黃酮液pH為2。

    2.3.2 靜態(tài)等溫吸附曲線 根據(jù) “1.3.5.2”項(xiàng)方法進(jìn)行實(shí)驗(yàn),結(jié)果見(jiàn)圖2。

    由圖2可知,隨著黃酮質(zhì)量濃度的增加,吸附率隨之增大。質(zhì)量濃度為0.608 4 mg/mL時(shí),吸附率為91.81%;質(zhì)量濃度為0.811 2 mg/mL時(shí),吸附率最高,達(dá)到92.97%;質(zhì)量濃度進(jìn)一步增大時(shí),吸附率增加趨勢(shì)變緩,說(shuō)明樹(shù)脂吸附已經(jīng)達(dá)到飽和。另外,黃酮質(zhì)量濃度過(guò)大時(shí)會(huì)堵塞樹(shù)脂,也會(huì)造成其使用周期減少,再生次數(shù)增多[17-18]??紤]到圖 2所示的最大吸附率與質(zhì)量濃度為0.608 4 mg/mL時(shí)的吸附率相當(dāng),因此本實(shí)驗(yàn)選擇最佳上樣質(zhì)量濃度為0.608 4 mg/mL。

    圖1 pH對(duì)吸附率的影響

    圖2 黃酮的靜態(tài)等溫吸附曲線

    2.3.3 解吸劑的篩選 根據(jù) “1.3.5.3”項(xiàng)方法進(jìn)行實(shí)驗(yàn),結(jié)果見(jiàn)圖3。

    圖3 解吸劑的篩選

    由圖3可知,不同體積分?jǐn)?shù)的乙醇解吸能力有明顯差異。乙醇體積分?jǐn)?shù)為60%時(shí),解吸率可達(dá)95.26%;體積分?jǐn)?shù)進(jìn)一步增大時(shí),解吸率增加趨勢(shì)變緩。從節(jié)約成本方面考慮,本實(shí)驗(yàn)選擇60%乙醇作為解吸劑。

    2.4 動(dòng)態(tài)洗脫曲線 根據(jù) “1.3.5.4”項(xiàng)方法進(jìn)行實(shí)驗(yàn),結(jié)果見(jiàn)圖4。

    圖4 動(dòng)態(tài)洗脫曲線

    由圖4可知,NKA-Ⅱ大孔樹(shù)脂吸附的黃酮較易洗脫,當(dāng)洗脫液體積為20 mL時(shí),洗脫的黃酮質(zhì)量濃度最大;采用60%乙醇解吸時(shí),洗脫峰較集中,對(duì)稱性好,無(wú)明顯拖尾現(xiàn)象,而且,只需70 mL左右就基本能將黃酮都洗脫下來(lái)。

    2.5 NKA-Ⅱ樹(shù)脂純化效果 取黑柴胡粗提液適量,在優(yōu)選的工藝條件下分離純化黃酮,根據(jù) “1.3.5.5”項(xiàng)方法進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。結(jié)果表明,粗提物黃酮的純度為11.40% (RSD為7.200%),經(jīng)樹(shù)脂純化后其純度可達(dá)57.58% (RSD為2.081%),即樹(shù)脂的富集倍數(shù)達(dá)5.05倍。由此可知,該工藝穩(wěn)定可靠,而且NKA-Ⅱ大孔吸附樹(shù)脂純化黑柴胡黃酮效果良好。

    2.6 樣品抗氧化作用

    2.6.1 黑柴胡黃酮抗氧化能力 根據(jù) “1.3.6.1”項(xiàng)方法進(jìn)行實(shí)驗(yàn),結(jié)果見(jiàn)圖5。

    圖5 樣品液清除·DPPH的能力

    ·DPPH是一種人工合成的以氮為中心的自由基,其分子中的3個(gè)苯環(huán)共振,從而形成穩(wěn)定結(jié)構(gòu),而且它的醇溶液于517 nm處有強(qiáng)吸收。當(dāng)往·DPPH溶液中加入樣品液時(shí),若后者含有抗氧化成分,則·DPPH溶液將接收一個(gè)電子而紫色變淺,其褪色程度與抗氧化劑濃度呈正相關(guān)[19]。由圖5可知,在一定質(zhì)量濃度范圍內(nèi),其清除率隨樣品質(zhì)量濃度的增大而上升,當(dāng)粗提液和純化液的質(zhì)量濃度分別達(dá)到75和125μg/mL時(shí),清除率基本不變,說(shuō)明·DPPH基本上已完全清除。純化液、粗提液、VC、蘆丁清除·DPPH的IC50值依次為50.46、40.18、8.609、33.10μg/mL,即清除能力為VC>蘆?。敬痔嵋海炯兓?。粗提液清除·DPPH能力比純化液高,原因可能是粗提液成分復(fù)雜,除黃酮外,還有多糖等具有抗氧化性物質(zhì),而經(jīng)樹(shù)脂富集后,除去了部分抗氧化物質(zhì),造成其清除能力下降。

    2.6.2 純化物與VC、蘆丁復(fù)合抗氧化作用的相互關(guān)系

    2.6.2.1 純化物與VC、蘆丁復(fù)配清除·DPPH的能力 根據(jù)“1.3.6.2”項(xiàng)方法,計(jì)算得出VC與純化物的IC50比值為1∶5.86;蘆丁與純化物的IC50比值為1∶1.52。選擇3組固定比例,VC與純化物的固定比例為1∶1、1∶6、1∶36,蘆丁與純化物的固定比例為1∶1、1∶2、1∶4。按固定該比例混合后,以 “1.3.6.1”項(xiàng)方法測(cè)定復(fù)配組清除·DPPH的能力,結(jié)果見(jiàn)表2。

    表2 純化物與VC、蘆丁復(fù)配清除·DPPH的能力(n=3)

    由表2可知,在測(cè)定范圍內(nèi),VC與純化物各比例復(fù)配組的清除率均隨樣品質(zhì)量濃度的增大而先上升,然后趨于平緩。而蘆丁與純化物各比例中的清除率隨樣品質(zhì)量濃度的增大而上升,在測(cè)定范圍內(nèi)未出現(xiàn)平衡效應(yīng)點(diǎn)。

    根據(jù)表2計(jì)算純化物與VC和蘆丁復(fù)配清除·DPPH的IC50值,結(jié)果見(jiàn)表3。

    表3 純化物與VC、蘆丁復(fù)配清除·DPPH的IC50值

    由表3可知,VC與樣品復(fù)配后的抗氧化能力均強(qiáng)于單一樣品,但弱于VC;蘆丁與樣品復(fù)配后的抗氧化能力均強(qiáng)于單一樣品,與蘆丁相當(dāng)。以上結(jié)果說(shuō)明,樣品與VC和蘆丁均具有協(xié)同抗氧化作用。

    2.6.2.2 純化物與VC、蘆丁復(fù)配的Isobologram分析圖

    將表3所得純化物的IC50值及95%可信線標(biāo)繪制在Isobologram分析圖的縱坐標(biāo)上,VC和蘆丁的IC50值及95%可信線標(biāo)繪在橫坐標(biāo)上,再將兩者IC50值相連,構(gòu)成相加線,并作出95%置信區(qū),再將復(fù)配組IC50值標(biāo)在圖中。若復(fù)配組IC50值落在相加線上或95%置信區(qū)內(nèi),則表示兩藥之間有相加作用;落在相加線左側(cè),有協(xié)同作用;落在右側(cè),有拮抗作用[16-20]。結(jié)果見(jiàn)圖6。

    圖6 純化物與VC、蘆丁復(fù)配的Isobologram分析圖

    由圖6可知,各復(fù)配組IC50的效應(yīng)點(diǎn)均落在相加線左側(cè),說(shuō)明純化物與VC和蘆丁之間均有協(xié)同抗氧化作用。表2發(fā)現(xiàn),VC(或蘆?。┡c純化物復(fù)配比例不同,所得復(fù)配液IC50值也不同,即清除·DPPH能力不同。VC與純化物復(fù)配的協(xié)同抗氧化能力依次為1∶1>1∶6>1∶36;蘆丁與純化物復(fù)配的協(xié)同抗氧化能力依次為1∶2>1∶4>1∶1。當(dāng)VC和蘆丁與純化物復(fù)配比例為1∶1,清除率為50%時(shí),與VC復(fù)配所需純化物質(zhì)量濃度為6.605μg/mL,而與蘆丁復(fù)配時(shí)該質(zhì)量濃度為16.55μg/mL,兩者相差較大,其原因可能是次抗氧化劑可以再生具有強(qiáng)抗氧化性能的主抗氧化劑[21]。由于VC的抗氧化作用比純化物強(qiáng),故VC為主抗氧化劑,純化物為次抗氧化劑,VC清除·DPPH后轉(zhuǎn)化為氧化態(tài)的VC·,然后又與純化物作用產(chǎn)生VC,繼續(xù)清除·DPPH,直至完全清除。而且VC清除·DPPH能力較強(qiáng),所需濃度低,因而使其再生所需純化物的濃度也低,其原理如下。

    ·DPPH + VC → DPPH + VC·

    VC· +黃酮(還原態(tài))→VC + 黃酮(氧化態(tài))

    3 結(jié)論

    用NKA-Ⅱ大孔吸附樹(shù)脂對(duì)黑柴胡黃酮進(jìn)行純化,最佳條件為pH 2,質(zhì)量濃度為0.608 4 mg/m L的黃酮液上柱,60%乙醇70 m L可將黃酮完全洗脫。該樹(shù)脂的富集倍數(shù)達(dá)5.05倍,說(shuō)明它是純化黑柴胡黃酮的較理想樹(shù)脂。

    ·DPPH清除實(shí)驗(yàn)比較了黑柴胡黃酮純化前后的抗氧化活性,并通過(guò)Isobologram分析圖對(duì)純化物與VC和蘆丁復(fù)配清除·DPPH的相互關(guān)系進(jìn)行評(píng)價(jià)。結(jié)果表明,純化物對(duì)·DPPH清除能力弱于VC、蘆丁和粗提液,它與VC和蘆丁復(fù)配后具有協(xié)同抗氧化作用。不同比例的復(fù)配液,協(xié)同抗氧化能力有所差異,在本實(shí)驗(yàn)中,VC與樣品黃酮最佳配比為1∶1,而蘆丁與樣品黃酮最佳配比為1∶2。

    [1]姚入宇,陳興福,張寶林,等.我國(guó)柴胡的種質(zhì)資源現(xiàn)狀與育種研究展望[J].中草藥,2013,44(10):1349-1353.

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    R284.2

    :B

    :1001-1528(2015)06-1370-06

    10.3969/j.issn.1001-1528.2015.06.050

    2014-03-28

    甘肅省高校河西走廊特色資源利用省級(jí)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室面上項(xiàng)目 (XZ1008)

    李 帥(1992—),男,助教,研究方向?yàn)樘烊划a(chǎn)物活性成分純化及分析。Email:JasonandJarry@163.com

    *通信作者:吳冬青 (1961—),女,教授,研究方向?yàn)樘烊划a(chǎn)物活性成分提取、純化及分析。Tel:13830691604,E-mail:hxuwdq@ 163.com

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