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    吡格列酮對腎小球系膜細胞ROS和p38MAPK的影響

    2014-12-07 03:43:14葉山東孫文佳胡圓圓
    中國藥理學通報 2014年1期
    關鍵詞:吡格系膜高糖

    汪 姍,葉山東,孫文佳,劉 皆,胡圓圓

    (安徽醫(yī)科大學附屬省立醫(yī)院內(nèi)分泌科,安徽合肥 230001)

    近來研究發(fā)現(xiàn)胰島素增敏劑吡格列酮(pioglitazone,PIO)除降糖外尚具有抗炎、抗氧化等的作用[1-2],其腎臟保護作用日益受到關注,確切機制尚未明確。p38絲裂原活化蛋白激酶(p38 mitogen-activated protein kinase,p38MAPK)是糖尿病多種致病因素的共同信號通路的交匯點,參與了糖尿病腎臟細胞外基質(zhì)重構和腎臟進行性纖維化[3]。有關吡格列酮是否通過p38MAPK發(fā)揮腎保護作用尚少見報道。本實驗通過體外培養(yǎng)大鼠腎小球系膜細胞,觀察PIO對高糖培養(yǎng)下的腎小球系膜細胞氧化應激及p38MAPK的影響,探討PIO的腎保護機制。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 細胞來源 大鼠腎小球系膜細胞(MCs)購自中國典型培養(yǎng)物保藏中心。

    1.1.2 主要藥物及試劑 DMEM培養(yǎng)液購自美國Hyclone公司,胎牛血清購自杭州四季青公司;吡格列酮由江蘇恒瑞醫(yī)藥公司惠贈;2',7'-二氯雙氫熒光素二乙酸酯(DCFH-DA)購自美國Sigma公司;TRIzol購自美國Invitrogen公司;逆轉(zhuǎn)錄試劑盒及PCR試劑購自大連寶生物公司;PCR所用引物由廣州瑞真生物技術有限公司設計。

    1.2 方法

    1.2.1 細胞培養(yǎng)及分組 MCs常規(guī)培養(yǎng)于含10%胎牛血清和1%青鏈霉素的DMEM液中(Glu 5.6 mol·L-1),置 37℃,5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。取對數(shù)生長期的細胞以2×105/孔的密度接種于6孔細胞培養(yǎng)板,培養(yǎng)24 h,待細胞達到亞融合狀態(tài),換用含1%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液(Glu 5.6 mol·L-1)繼續(xù)培養(yǎng)24 h,使細胞生長同步化,然后按下列分組進行處理:①正常對照組(NG組):DMEM細胞培養(yǎng)液(Glu 5.6 mol·L-1);②高糖組(HG組):DMEM細胞培養(yǎng)液(Glu 2 mol·L-1);③吡格列酮1組(PIO 1 組):HG+ 吡格列酮(10-7mol·L-1);④吡格列酮2組(PIO 2組):HG+吡格列酮(10-6mol·L-1);⑤吡格列酮3組(PIO 3組):HG+吡格列酮(10-5mol·L-1)。不同濃度吡格列酮預先干預24 h。以上各組標本培養(yǎng)48 h后,分別收集細胞和培養(yǎng)上清液,每個檢測指標均設6個重復組。

    1.2.2 RT-PCR檢測系膜細胞p38MAPK mRNA表達 TRIzol法提取細胞總RNA,紫外分光光度儀測定A260/A280值在1.8~2.0之間,計算 RNA含量。取2 μg總RNA按逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書合成cDNA,反應體積為10 μl。逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物分別進行p38MAPK及管家基因3-磷酸甘油醛脫氫酶(GAPDH)的擴增。所用引物由大連寶生物有限公司合成。p38MAPK引物序列上游5'-TGT TGA CCG GAA GAA CGT TGT-3',下 游 5'-CAA AGT AGG CAT GCG CAA GAG-3',反應條件為94℃預變性3 min,94℃變性30 s,55℃退火40 s,72℃延伸1 min的熱循環(huán),循環(huán)35次后,終末72℃延伸10 min。以GAPDH為內(nèi)參照,94℃預變性3 min后,進入94℃ 30 s變性、52℃ 60 s退火、72℃ 60 s延伸的熱循環(huán),循環(huán)35次,終末延伸72℃10 min。PCR產(chǎn)物在含溴化乙錠的1.5%瓊脂糖凝膠上電泳后拍照,進行吸光度掃描,以p38MAPK/GAPDH條帶光密度比值表示各因子mRNA的相對表達量。

    1.2.3 流式細胞術檢測系膜細胞內(nèi)活性氧(ROS)水平 DCFH-DA本身無熒光,可自由進出細胞膜,在細胞內(nèi)可被ROS氧化為熒光物質(zhì)DCF,其形成量與細胞內(nèi)ROS成正比。待細胞長滿培養(yǎng)板底面80%時,去除原培養(yǎng)液,每孔加入2 ml培養(yǎng)液濃度為 20 μmol·L-1的 DCFH-DA 工作液,37℃ 避光孵育30 min,PBS沖洗3遍,用含3%FBS的PBS懸浮細胞,立即上機檢測。產(chǎn)生熒光的細胞為陽性細胞,不產(chǎn)生熒光的細胞為陰性細胞,以陽性細胞占所有細胞百分比表示各組細胞的相對熒光強度。

    2 結(jié)果

    2.1 PIO對高糖培養(yǎng)的系膜細胞內(nèi)ROS水平的影響 流式細胞術結(jié)果顯示,未加入DCFH-DA的陰性對照組有極微量自發(fā)熒光。與NG組相比,HG組細胞內(nèi)ROS生成量明顯增多(4.28±0.50vs17.3±0.49,P<0.05)。不同濃度PIO預先干預后,細胞內(nèi)ROS生成量較HG組明顯減少,分別為PIO 1組(7.34±0.89)、PIO 2組(9.25±0.65)、PIO 3組(10.9±0.97),差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),且組間差異有統(tǒng)計學意義。見Fig 1。

    2.2 PIO對高糖培養(yǎng)的腎小球系膜細胞內(nèi)p38MAPK mRNA的表達 NG組系膜細胞可低水平表達 p38MAPK(0.73±0.06),高糖刺激后,p38MAPK mRNA表達明顯增加(1.09±0.13vs0.73±0.06,P<0.01)。與HG組比較,不同濃度PIO預先干預后,p38MAPK mRNA表達量較HG組明顯降低,分別為PIO 1組(0.98±0.09,P<0.05)、PIO 2組(0.87±0.12,P<0.01)、PIO 3組(0.81±0.08,P<0.01)。PIO 1組與 PIO 2組(P<0.05)、PIO 3組(P<0.01)之間差異有統(tǒng)計學意義,但PIO 2、3兩組間差異無統(tǒng)計學意義。見Fig 2。

    2.3 相關性分析 根據(jù)Pearson相關分析,MCs內(nèi)p38MAPK表達與ROS水平呈正相關(r=0.62,P<0.01),見 Fig 3。

    3 討論

    糖尿病腎病(DN)是以腎小球系膜細胞增殖、肥大以及細胞外基質(zhì)過度積聚為特點的腎臟病變。不少研究表明ROS和p38MAPK參與了糖尿病腎小球硬化的發(fā)生和發(fā)展,且兩者之間密切相關[3-4]。高糖狀態(tài)下ROS產(chǎn)生過度,增強p38MAPK活化程度,后者通過上調(diào)轉(zhuǎn)化生長因子β1(TGF-β1)、核因子-κB(NF-κB)、纖維黏連蛋白(FN)的表達,加劇腎臟進行性纖維化。Fang等[5]報道高糖刺激下細胞內(nèi)p38MAPK磷酸化水平明顯增強,且能被抗氧化劑NAC阻斷,提示氧化應激與p38MAPK信號通路的活化有著密切的關系。因此減輕氧化應激,阻斷p38MAPK通路,對DN的防治具有重要意義。

    Fig 1 Levels of ROS in mesangial cells of all groups evaluated by flow cytometry

    Fig 2 Expressions of p38MAPK mRNA in MCs in different groups evaluated by RT-PCR

    Fig 3 Correlation between p38MAPK mRNA expression and levels of ROS in MCs

    研究表明[1-2],PIO 除降糖外,還可對抗高糖引起的氧化應激,抑制體內(nèi)炎癥因子表達。Ji等[6]在對小神經(jīng)膠質(zhì)細胞的研究中發(fā)現(xiàn),PIO可抑制p38MAPK活化,降低脂多糖誘導的iNOS的表達和NO的生成,調(diào)節(jié)炎癥過程而發(fā)揮對神經(jīng)細胞的保護作用。本實驗研究顯示,高糖刺激后,MCs ROS生成明顯增多,p38MAPK mRNA表達上調(diào),細胞處于明顯的氧化應激狀態(tài)。PIO預先干預后,高糖誘導的ROS和p38MAPK mRNA高表達均有所緩解,提示PIO可減輕高糖誘導的MCs p38MAPK表達和氧化應激程度,并具有一定的濃度依賴性,與文獻報道一致[5]。有關PIO抑制MCs p38MAPK表達確切機制尚未明確,可能與其上調(diào)PPAR-γ表達,拮抗p38MAPK 有關[7]。

    總之,本研究結(jié)果提示PIO可降低高糖誘導的MCs p38MAPK mRNA表達和氧化應激水平,且呈濃度依賴性,該作用可能與其腎臟保護部分有關。

    [1]王月芬,葉山東,邢 燕.吡格列酮對STZ糖尿病大鼠腎組織氧化應激的影響[J].中國藥理學通報,2013,29(1):85 -8.

    [1]Wang Y F,Ye S D,Xing Y.Effect of different dosages of piogitazone on the oxidative stress in the kidney in STZ-induced diabetic rats[J].Chin Pharmacol Bull,2013,29(1):85 -8.

    [2]Hu Y Y,Ye S D,Zhao L L,et al.Hydrochloride pioglitazone decreases urinary cytokines excretion in type 2 diabetes[J].Clin Endocrinol,2010,73(6):739 - 43.

    [3]Li X,Liu W,Wang Q,et al.Emodin suppresses cell proliferation and fibronectin expression via p38MAPK pathway in rat mesangial cells cultured under high glucose[J].Mol Cell Endocrinol,2009,307(1-2):157-62.

    [4]Wagener F A,Dekker D,Berden J H,et al.The role of reactive oxygen species in apoptosis of diabetic kidney[J].Apoptosis,2009,14(12):1451-8.

    [5]Fang S,Jin Y,Zheng H,et al.High glucose condition upregulated Txnip expression level in rat mesangial cells through ROS/MEK/MAPK pathway[J].Mol Cell Biochem,2011,347(1 - 2):175 -82.

    [6]Ji H,Wang H,Zhang F,et al.PPARγ agonist pioglitazone inhibits microglia inflammation by blocking p38 mitogen-activated protein kinase signaling pathways[J].Inflamm Res,2010,59(11):921 -9.

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