乙酰甲喹及其主要代謝物在雞體內(nèi)的殘留消除規(guī)律研究

張亞平，張桂君，徐立蕭，張 怡，楊海翠，鄭建龍，方炳虎

（華南農(nóng)業(yè)大學獸醫(yī)學院，廣州510000）

乙酰甲喹（又名痢菌凈，MEQ），化學名3-甲基-2-乙酰基喹噁啉-1，4-二氧化物，屬于喹噁啉類衍生物。乙酰甲喹具有廣譜抗菌性，抗菌效果顯著，對密螺旋體有特效，又因其價格低廉使用方便，被廣泛用于畜禽業(yè)中腸道疾病的治療。我國尚未制定乙酰甲喹的休藥期和最高殘留限量（MRL），近年來由于乙酰甲喹的不合理應用，導致中毒事件時有發(fā)生［1-3］，給養(yǎng)殖業(yè)造成較大的經(jīng)濟損失，也給人類健康帶來潛在威脅。本文旨在應用HPLC-MS／MS法，對乙酰甲喹及其6種主要代謝物，脫二氧乙酰甲喹（M1）、N1-脫氧乙酰甲喹（M2）、N1-脫氧側鏈羰基還原乙酰甲喹（M4）、脫二氧側鏈羰基還原乙酰甲喹（M5）、側鏈羰基還原乙酰甲喹（M6）和羰基還原羥化乙酰甲喹（M7）在雞體內(nèi)的殘留消除規(guī)律進行研究，以期為乙酰甲喹的合理應用提供可靠依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 實驗動物 65只健康白羽雞（AV500），采購于增城市某養(yǎng)殖廠。

1.1.2 藥物與試劑 乙酰甲喹標準品（99.6%，HO111008），來源于中國獸醫(yī)藥品監(jiān)察所。M1（98%）、M2（95%）、M4（95%）、M5（97%）和 M6（97%）均由中國農(nóng)業(yè)大學動物醫(yī)學院提供。M7（97%）由華南農(nóng)業(yè)大學獸醫(yī)學院合成而來。色譜級甲醇、乙腈和甲酸，購自美國Thermo Fisher公司；分析純鹽酸，購自衡陽化學試劑廠；實驗用水為超純水（Millipore-Q系統(tǒng)）。

1.1.3 儀器設備 美國Agilent公司1200型液相色譜儀串聯(lián)美國ABI公司API 4000四極桿質(zhì)譜儀；5804（R）型高速臺式冷凍離心機，德國Eppendorf公司；T25型高速組織勻漿器，德國 IKA公司；HS501 digital型軌道式搖床，德國 IKA公司；Wat200609固相萃取裝置，美國Waters公司；HH-1數(shù)顯恒溫水浴鍋，金壇市富華儀器有限公司；OasisHLB固相萃取小柱（60 mg， 3cc），美國 Waters公司；0.22 μm有機相濾膜，天津津騰試驗儀器公司。

1.2 方法

1.2.1 動物試驗 65只雞分為試驗組（55只）和對照組（10只），給藥前適應一周后，試驗組以20 mg／kg體重灌服乙酰甲喹懸濁液，一天兩次，連續(xù)三天。給藥結束后宰殺空白組，并在 2、4、6、12、16、24、30、36、48、72和120 h分別宰殺5只試驗組雞（隨機選取）。宰殺前翅下靜脈采血，置于含肝素的離心管中，3000 r／min離心10 min后，取上清，-20℃冰箱儲存。宰殺后，每只雞均取肌肉、皮脂、肝臟和腎臟組織，均質(zhì)后-20℃冰箱儲存。

1.2.2 樣品前處理 血漿樣品處理：取0.5 mL血漿，加入0.5 mL乙腈，充分渦旋30～60 s，置于高速離心機中 15000 r／min，20 min，4 ℃。 離心后取上清，過0.22 μm有機相濾膜后裝進樣瓶，待測。

組織樣品處理：該方法優(yōu)化自Zeng等［4］，稱?。?.00 ± 0.02）g組織，加入12 mL濃度為2 mol／L的鹽酸溶液，充分渦旋后，置于60℃水浴鍋中，水浴1 h。 水浴后，326 mot／min 震蕩 15 min，10000 r／min離心10 min，取上清再次離心10000 r／min，10 min 后取6 mL上清。開始過HLB柱，3 mL甲醇活化，3 mL水平衡，然后上樣液，再 3 mL甲醇水（5：95 V／V）淋洗，最后3 mL甲醇洗脫。取1 mL洗脫液過0.22 μm有機相濾膜后裝進樣瓶，待測。

1.2.3 色譜條件 色譜柱為CNW C18（4.6 mm×150 mm，5μm）；流動相A為0.1%甲酸水，流動相B為色譜乙腈，梯度洗脫條件見表1，進樣量為5 μL。

表1 梯度洗脫條件表

1.2.4 質(zhì)譜條件 電噴霧離子源（ESI+）；離子噴霧電壓（IS），4500 V；離子源溫度（TEM），維持在650 ℃；碰撞氣 （CAD），5 psi；離子源 GS1，55 psi；離子源 GS2，50 psi；氣簾氣（CUR），20 psi；多重反應監(jiān)測模式（MRM），離子參數(shù)見表2。

表2 質(zhì)譜分析中的離子參數(shù)

1.2.5 基質(zhì)校準 稱取適量的乙酰甲喹及其6種代謝物溶于甲醇，配制成20、10、1、0.1 mg／mL 的儲備液，并用儲備液配成兩個系列濃度的混合標準液：系列1為0.05、0.1、0.5、1、2、5、10 和 20 mg／mL；系列 2 為0.01、0.02、0.04、0.1、0.5、1、2、5、10 和20 mg／mL。 檢測時采用基質(zhì)添加標準曲線，取980 μL空白基質(zhì)添加20 μL混和標準溶液配制而成。血漿標準曲線為2、4、20、40、80、200、400 和800 ng／mL 系列濃度，組織標準曲線為0.6、1.2、2.4、6、30、60、120、300、600 和 1200 ng／g 系列濃度。

1.2.6 方法驗證 在 5、20 和 200 ng／g（ng／mL）三個添加濃度下，每個濃度5個平行，測3批，考察乙酰甲喹及其主要代謝物在雞肌肉、皮脂、肝臟、腎臟和血漿中的回收率和精密度。

1.2.7 樣品測定 對于預試驗中濃度比較高的相應時間點樣品，在正式試驗中樣品稀釋后上機檢測。

1.2.8 數(shù)據(jù)分析 運用Analyst1.5軟件測算藥物濃度，WinNonlin5.2.1軟件中的非房室模型計算血漿和各組織中乙酰甲喹及其6種代謝物的消除參數(shù)。

2 結果

2.1 方法考察結果 建立的HPLC-MS／MS方法，靈敏度高，乙酰甲喹及其6種代謝物在雞可食性組織和血漿中的檢測限（LOD）不超過2 ng／g，定量限（LOQ）不超過5 ng／g，詳見表3。基質(zhì)添加標準曲線相關系數(shù)均大于0.99，線性關系良好（表4）。在三個批次三個添加濃度下，回收率為67.4%～106.1%（表5），批內(nèi)變異系數(shù)為4.6%～13.7%，批間變異系數(shù)低于15%（表6），說明該方法符合殘留檢測要求。

表3 乙酰甲喹及其6種代謝物的檢測限（LOD）和定量限（LOQ）

表4 基質(zhì)標準曲線的回歸方程和相關系數(shù)

表5 在5、20、200 ng／g（ng／mL）三個添加水平下乙酰甲喹及其6種代謝物在雞可食性組織和血漿中的回收率 %

表6 在5、20、200 ng／g（ng／mL）三個添加水平下乙酰甲喹及其6種代謝物在雞可食性組織和血漿中的變異系數(shù) %

2.2 樣品檢測結果 乙酰甲喹在雞組織和血漿中消除迅速，僅在皮脂和血漿中檢測到少量，其代謝物廣泛分布，代謝物的的主要殘留消除參數(shù)見表7?？傮w而言，代謝物在肌肉和肝臟中殘留量較多，肝臟中M4的曲線下面積（AUC）最大，達70524.62 h·ng／g。 數(shù)據(jù)表明M6和M7在皮脂中的殘留時間最長，平均滯留時間（MRT）分別為16.3595 h和41.3446 h。給藥后120 h，已基本檢測不到代謝物。

3 討論

試驗所建立的乙酰甲喹及其6種代謝物在雞可食性組織和血漿中的殘留檢測方法簡單、靈敏度高、準確度和精密度好，符合殘留檢測要求。已發(fā)表的研究表明［4-6］，乙酰甲喹在雞、綿羊和豬血漿中的消除半衰期（t1／2）較短，消除迅速，與本試驗結果相符。Zeng等在研究乙酰甲喹及其5種代謝物（M1，M2，M4， M5和 M6）在豬體內(nèi)的殘留時發(fā)現(xiàn)，肝臟中殘留量最高的代謝物為M1，與本文結果（肝臟中殘留最多的為M4）存在差異，主要原因可能是由于種屬差異。在同屬喹噁啉類藥物的喹賽多和喹烯酮的殘留研究中表明［7-9］，肝臟是殘留時間最長的組織，本研究數(shù)據(jù)顯示皮脂是乙酰甲喹代謝物滯留時間最長的組織，推測乙酰甲喹的殘留消除有其特異性。

表7 乙酰甲喹及其6種代謝物在雞可食性組織和血漿中的主要殘留消除參數(shù)

乙酰甲喹的代謝物較原藥在雞體內(nèi)殘留時間長和殘留量高，殘留消除過程也較為復雜，表明代謝物在殘留研究中的重要價值，然而目前的相關研究主要集中在乙酰甲喹原藥，代謝物的研究有待深入。

［1］蘇志強.淺談肉雞乙酰甲喹中毒［J］.今日畜牧獸醫(yī)，2007，（6）：42-42.

［2］郭 萍，楊 強，章厲劼，等.乙酰甲喹標準修訂商榷［Z］.中國天津：2008：530-531.

［3］劉迎春，高懷濤.乙酰甲喹的合理應用［J］.養(yǎng)禽與禽病防治，2009，（3）：42～43.

［4］Zeng Dongping， Shen Xiangguang， He Limin， et al.Liquid chromatography tandem mass spectrometry for the simultaneous determination of mequindox and its metabolites in porcine tissues［J］.Journal of separation science， 2012，35（10／11）：1327-1335.

［5］Liu Yimin， Liu Yingchun， Ding Huanzhong， et al.Pharmacokinetics of Mequindox and Its Metabolites in Swine［J］.Agricultural Sciences in China， 2011，（12）：1968-1976.

［6］Ding Huanzhong， Liu Yingchun， Zeng Zhenling， et al.Pharmacokinetics of mequindox and one of its major metabolites in chickens after intravenous， intramuscular and oral administration［J］.Res Vet Sci， 2012，93（1）：374-377.

［7］黃玲利.喹賽多在肉雞的有效性與安全性研究［D］.武漢：華中農(nóng)業(yè)大學，2006.

［8］邱銀生.喹賽多在豬體內(nèi)的藥動學和殘留研究［D］.武漢：華中農(nóng)業(yè)大學，2003.

［9］Yong Yan， Liu Yahong， He Limin，et al.Simultaneous determination of quinocetone and its major metabolites in chicken tissues by high-performance liquid chromatographytandem mass spectrometry［J］.J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci， 2013，919／920：30-37.