鄭苗苗,焦戰(zhàn)戰(zhàn),張令昂,邵淑麗,翟 瑩
(齊齊哈爾大學(xué)生命科學(xué)與農(nóng)林學(xué)院,黑龍江 齊齊哈爾 161006)
漆酶(laccase)是一種含銅的多酚氧化酶,屬于氧化酶的藍銅家族。含有4個銅原子,分別位于3個不同結(jié)合位點,并且高度保守[1]。1883年由日本吉田在漆樹中發(fā)現(xiàn)漆酶,1893年Laborde在真菌中發(fā)現(xiàn)了漆酶。現(xiàn)在已證實漆酶普遍存在于細菌、真菌、植物、昆蟲中[2],其中真菌中白腐菌是最重要的漆酶生產(chǎn)菌[3]。漆酶能夠催化許多芳香族化合物并有廣泛的作用底物,具有很大的實際應(yīng)用價值。近年來,漆酶在造紙工業(yè)[4]、食品工業(yè)[5]等領(lǐng)域得到了深入的研究和廣泛應(yīng)用,尤其是在環(huán)境保護方面更是研究的熱點,如環(huán)境中有毒有害物質(zhì)的降解[6]、染料脫色[7]及土壤中雜酚油類物質(zhì)的去除[8]等,對于環(huán)境污染物的消除起著很大作用。本文選用白腐真菌紅平菇Pleurotus djamor為材料,對該菌株產(chǎn)漆酶的培養(yǎng)基進行優(yōu)化,從而獲得最佳產(chǎn)漆酶條件,優(yōu)化后的粗酶液應(yīng)用于合成染料的脫色,進而對環(huán)境污染防治具有理論指導(dǎo)意義和廣泛的應(yīng)用價值。
1.1.1 菌株 紅平菇Pleurotus djamor購自福建三明真菌研究所,由齊齊哈爾大學(xué)微生物實驗室保存。
1.1.2 主要試劑 DMP(2,6-Dimethoxyphenol)、ABTS(2,2'-Azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic))購自Sigma公司,其余有機及無機試劑為國產(chǎn)分析純試劑。供試染料由齊齊哈爾大學(xué)微生物實驗室提供。
1.1.3 培養(yǎng)基 固體培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖20,馬玲薯200,瓊脂 20,KH2PO43.0,MgSO41.5,pH值自然;產(chǎn)酶初始培養(yǎng)基:低氮天冬酰胺-琥珀酸培養(yǎng)基(Low Nitrogen Asparagine Succinicacid,LNAS)[9-10],是一種營養(yǎng)成分有限的初始產(chǎn)酶培養(yǎng)基。以上培養(yǎng)基均在1×105Pa滅菌30 min。
1.2.1 產(chǎn)酶培養(yǎng)方式 在錐形瓶中加入70 mL LNAS基礎(chǔ)培養(yǎng)基,然后各加入4種不同底物進行菌絲培養(yǎng):A、LNAS培養(yǎng)基不含Cu2+,即礦物元素溶液中不添加CuSO4·H2O;B、LNAS培養(yǎng)基含Cu2+(2.5 ×10-3mmol/L),即礦物元素溶液中添加 CuSO4·H2O;C、LNAS 培養(yǎng)基含 Cu2+(2.5 ×10-3mmol/L),并加入 10 mmol/L 2,6-二甲氧基苯酚(2,6-DMP)0.1 mL 為產(chǎn)酶底物;D、LNAS 培養(yǎng)基含 Cu2+(2.5 ×10-3mmol/L),并加入 2 g青楊木屑為產(chǎn)酶底物。接菌前向每個錐形瓶中加入5 mL的15%葡萄糖溶液。將保藏在PDA培養(yǎng)基上的紅平菇菌種,用打孔器在菌絲邊緣進行打孔,將菌餅轉(zhuǎn)接至錐形瓶中,26℃靜止培養(yǎng),每項試驗設(shè)3個重復(fù)。培養(yǎng)3 d后,每隔1 d提取胞外酶液,一直測到第21天,將提取的粗酶液離心后取上清進行酶活測定。
1.2.2 漆酶活力的測定 分光光度計檢測漆酶在420、470、310 nm下與底物在25℃反應(yīng)1 min的吸光度,計算漆酶活性。酶活單位(U/L):1 min催化1 μmol ABTS所消耗的酶量。計算中的ε420=36000 mol·L-1·m-1、ε470=49600 mol·L-1·cm-1、ε310=9300000 mol·L-1·cm-1。計算酶活值后繪制出產(chǎn)酶活時間曲線圖,測定吸光度體系為:空白對照管中加2.95 mL檸檬酸-磷酸鹽緩沖液(pH 3.4)和50 μL稀釋后的酶液;檢測管中加1.95 mL檸檬酸-磷酸鹽緩沖液(pH 3.4),50 μL 稀釋后的酶液,1 mL 1 mmol/L ABTS。所有測量均重復(fù)3次取平均值。
1.2.3 染料及脫色率 染料:SN4R:杭州方順化工有限公司;甲基橙:沈陽市新光化工廠公司;孔雀綠:上海撫生實業(yè)有限公司;中性紅:天津市大茂化學(xué)試劑廠。利用紫外可見分光光度計在300~800 nm區(qū)間掃描,得到在此區(qū)間4種染料的最大吸收峰值:孔雀綠558 nm,Abs=3.511;中性紅527 nm,Abs=3.514;甲基橙486 nm,Abs=1.876;SN4R 432 nm,Abs=0.659。重組酶液、4 種染料(40 mg/L)和50 mmol/L的檸檬酸-磷酸鹽緩沖液總體積為3 mL,間隔一定時間檢測4種染料的吸光度值,得到吸光度為A1;對照中加入等量的含空質(zhì)粒酶液,測得其吸光度為A0。染料脫色率計算:
在21 d的培養(yǎng)過程中,不同培養(yǎng)液中漆酶酶活性大小不同,結(jié)果見圖1。A、不含Cu2+培養(yǎng)液:在不含Cu2+的LNAS培養(yǎng)基不加底物條件下,提取的酶液可以檢測到的漆酶的活性,活性很低,在第9天達到最大酶活力僅為66.5 U/L。B、含Cu2+培養(yǎng)液:在含Cu2+的LNAS培養(yǎng)基中不加底物條件下,提取的酶液可以檢測到漆酶的活性,也在第9天時達最大分泌量,酶活力達235.4 U/L。C、含 Cu2+加入 2,6-DMP培養(yǎng)液:在含 Cu2+的LNAS培養(yǎng)基中加入2,6-DMP為底物的條件下,提取的酶液也檢測到漆酶的活性變化,在第9天達到最大分泌量,酶活力為253.4 U/L。D、含Cu2+加入木屑培養(yǎng)液:在含Cu2+的LNAS培養(yǎng)基中加入木屑為底物條件下,提取的酶液檢測到漆酶的活性變化,漆酶在第9天達到最大分泌量,酶活力為458.8 U/L。以木屑為底物漆酶的分泌量要高于以2,6-DMP為底物的漆酶產(chǎn)生量,其吸收峰在420 nm處有明顯的峰值變化。
圖1 紅平菇在不同培養(yǎng)液中漆酶酶活變化Fig.1 Pleurotus djamor laccase enzyme activity changes in different cultures
于含有CuSO4培養(yǎng)液中加入木屑,培養(yǎng)到第9天,將發(fā)酵液于8000 r/min離心6 min,取上清液,分別對SN4R、甲基橙、孔雀綠和中性紅4種染料的脫色能力進行測定,見圖2。
圖2 粗酶液對4種染料脫色率比較Fig.2 Crude enzyme solution of four kinds of dye r D/%
結(jié)果表明,紅平菇漆酶對4種染料具有脫色能力,并且脫色效果均不相同。對偶氮類孔雀綠在6 h時脫色率為87.5%,蒽醌類SN4R在24 h時脫色率為49.4%,偶氮類甲基橙在24 h時脫色率為45%,雜環(huán)類中性紅在24 h時脫色率為23.6%。因此,顯示出紅平菇漆酶對孔雀綠染料脫色具有較大的應(yīng)用潛力,進而對廢水處理具有更好的應(yīng)用前景。
在4種不同培養(yǎng)基中,紅平菇漆酶在第3天開始分泌,隨后迅速升高,在第9~11天分泌量達到最高,之后迅速下降,到第15天趨向消失。通過A、B兩種培養(yǎng)液的檢測表明,漆酶的分泌量受Cu2+影響較大,Cu2+是紅平菇產(chǎn)漆酶的必要因子,在含Cu2+的LNAS培養(yǎng)基中漆酶的活性明顯提高。肖楚等[11]也證明Cu2+對漆酶活性有明顯的促進作用,但漆酶活性大小低于本試驗菌種,可以應(yīng)用到漆酶工業(yè)化生產(chǎn)領(lǐng)域。通過C、D兩種培養(yǎng)液的檢測表明,在培養(yǎng)過程中添加2,6-DMP和木屑為底物均可提高漆酶的分泌量,證明不同底物對紅平菇產(chǎn)漆酶起到誘導(dǎo)作用。Pseudotrametes gibbosa和Grifola frondosa在培養(yǎng)過程中添加2,6-DMP和木屑為底物,漆酶活性提高[12-13],但與本實驗相比漆酶活性較低,可能與Cu2+誘導(dǎo)有關(guān),而其他3種培養(yǎng)方式的漆酶吸光度和吸收峰表現(xiàn)為不明顯的變化。
紅平菇漆酶對SN4R、甲基橙、孔雀綠和中性紅4種染料都具有脫色能力,在5 U/mL的酶活力下,6 h時對孔雀綠脫色效果就達到87.5%。Myrothecium verrucaria來源的漆酶對孔雀綠脫色效果為66.9%[14]。Chaetomium sp.R01 來源的漆酶對孔雀綠脫色效果為26%[15]。顯示了紅平菇漆酶對孔雀綠脫色效果要好于已發(fā)表的其他白腐真菌來源的漆酶,期望在工業(yè)生產(chǎn)中發(fā)揮重要作用[16]。
[1]BALDRIAN P.Fungal laccases-occurrence and properties[J].FEMS Microbiology Reviews,2006,30(2):215-242.
[2]FARACO V,GIARDINA P,SANNIA G.Metal-responsive elements in Pleurotus ostreatus laccase gene promoters[J].Microbiology,2006,149(6):2155-2162.
[3]Thurston CF.The structure and function of fungal laccase[J].Microbiology,1994,140(8):19-26.
[4]Sealey J,Ragauskas AJ.Residual lignin studies of laccase-del-ignified kraft pulps[J].Enzyme and Microbial Technology,1998,23(7-8):422-426.
[5]Labat E,Morel MH,Rouau X.Effects of laccase and ferulic acid on wheat flour doughs[J].Cereal Chemistry,2000,77(6):823-828.
[7]Couto SR.Decolouration of industrial azo dyes by crude laccase from Trametes hirsuta[J].Journal of Hazardous Materials,2007,148(3):768-770.
[8]Eggen T.Application of fungal substrate from commercial mushroom production-Pleuorotus ostreatus-for bioremediation of creosote contaminated soil[J].International Biodeterioration and Biodegradation,1999,44(2):117-126.
[9]Kirk TK,Schultz E,Conors WJ,et al.Influence of culture parameters on lignin metabolism by Phanerochaete chrysosporium[J].Arch Microbiol,2000,117(6):277-285.
[10]Hatakka A,Uus-ir AK.Black liquor decolorization by selected white-rot fungi[J].Eur J Appl Microbiol Biotechno,2011,165(2):406-415.
[11]肖楚,劉佳,許修宏.黑木耳漆酶酶學(xué)性質(zhì)的研究[J].中國農(nóng)學(xué)通報,2011,27(25):158-161.
[12]閆洪波.偏腫擬栓菌錳過氧化物酶cDNA基因克隆及在畢赤酵母中的表達[D].博士論文,東北林業(yè)大學(xué),哈爾濱,2009.
[13]尹立偉,池玉杰,王雪童.灰樹花的系統(tǒng)發(fā)育分析和主要木質(zhì)素降解酶的測定[J].林業(yè)科學(xué)研究,2010,23(4):574-580.
[14]王海東.漆酶高產(chǎn)菌株疣孢漆斑菌的分離、優(yōu)化及對染料降解的研究[D].碩士論文,東北林業(yè)大學(xué),哈爾濱,2012.
[15]王婧人.Trametes sp.SQ01和Chaetomium sp.R01混合培養(yǎng)對染料的脫色研究[D].碩士論文,山西大學(xué),太原,2011.
[16]Bumpus J A,Brock B A.Effects of different wavelengths of light on lignin peroxidase production by the white-rot fungi Phanerochaete chrysosporium grown in submerged cultures[J].Bioresource Technology,2010,23(10):9213-9220.