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    香菇多糖提取方法的研究

    2014-10-25 02:25:52石來寶
    藥學(xué)研究 2014年4期
    關(guān)鍵詞:氯乙酸靜置無水乙醇

    石來寶,陳 靜,殷 霞

    (瑞陽制藥有限公司,山東淄博256100)

    香菇(Lentinusedodes)為擔(dān)子菌亞門,擔(dān)子菌綱,傘菌目,側(cè)耳科。香菇屬真菌,因其口味鮮美,香味濃郁,營養(yǎng)豐富,有顯著的藥用及滋補作用而被譽為“蘑菇皇后”、“抗癌新兵”、“菌中之秀”[1]、“諸菌之冠蔬菜之魁”,它的學(xué)名很多,有冬菇、花菇、香草、香信等。香菇不僅是一種美味佳肴,也是一種著名的藥用菌。我國歷代的醫(yī)藥學(xué)家對香菇的藥性及功能均有著述,如《日用本草》認為香菇“益氣、不饑、治風(fēng)、破血”[2]。香菇多糖(Lentinan,LNT)是香菇中的重要藥用成分,是一種天然人體免疫調(diào)節(jié)劑,具有抗腫瘤、抗感染和調(diào)節(jié)免疫力等作用。1969年日本學(xué)者千原率先證實了香菇熱水提取物的抗腫瘤活性,并對其進行了分析測定,證實此類物質(zhì)主要是一些高分子多糖(LNT),它能提高巨噬細胞的吞噬能力,誘導(dǎo)白細胞介素-l(IL-1)和腫瘤壞死因子(TNF)的生成;促進T淋巴細胞增殖,誘導(dǎo)其分泌白細胞介素-2(IL-2);提高B淋巴細胞活性,增加多種抗體的分泌,增強機體的體液免疫調(diào)節(jié)功能,從而增強機體的抗病能力,并作為優(yōu)良的免疫調(diào)節(jié)劑進入臨床,國內(nèi)于1988年引進并實現(xiàn)國產(chǎn)化[3]。羽田、佐木進一步研究證實其有效成分是香菇多糖,CoroChi-h(huán)ara從香菇子實體中浸提出6種香菇多糖,并證明其中一種具有明顯的抗腫瘤作用,定名為Lentinan[4]。另一些香菇中的多糖物質(zhì)由D-葡萄糖、D-半乳糖、D-甘露糖、L-阿拉伯糖及D-木糖構(gòu)成。1980年恂二等確認香菇多糖為Th細胞激活劑,它使機體免疫功能得到恢復(fù)和提高而殺滅腫瘤細胞,可用于輔助癌癥治療[5]。自此,世界各地掀起了從大型真菌中尋找抗腫瘤藥物的熱潮,有關(guān)香菇多糖的研究尤其活躍。目前,我國已將槐耳制劑(一類新藥)、香菇多糖注射液(二類新藥)、云芝糖肽膠囊(二類新藥)、褐藻多糖硫酸酯、真菌多糖等多糖的研發(fā)列入高新技術(shù)產(chǎn)品開發(fā)的重點支持項目。

    香菇多糖是一種以β-D[1→3]葡聚糖殘基為主鏈,側(cè)鏈為(1→6)葡聚糖殘基的葡聚糖[6]。關(guān)于香菇多糖的提取研究很多,大致分為酶法提取、酸法提取、堿法提取和水浸提法提取以及微波提取、超聲提取。水提醇沉法為最經(jīng)典的提取香菇多糖的方法,以工藝簡單、易于推廣等優(yōu)點為人們所接受。

    本研究采用熱水浸提法、三氯乙酸浸提法、熱水浸提/超聲波處理后提取法、超聲波處理后/熱水浸提提取法從香菇子實體中提取香菇多糖,旨在比較這幾種方法的優(yōu)劣、提高得率、降低成本。

    1 儀器與試藥

    1.1 儀器 FW177型中草藥粉碎機(天津市泰斯特儀器公司);紫外可見分光光度計(Spectrumlab 54上海棱光技術(shù)有限公司);電子調(diào)溫電熱套(HDM-500,江蘇金壇市榮華儀器制造有限公司);數(shù)控超聲波清洗器KQ-250DB型,昆山市超聲儀器有限公司);離心機(上海安亭科學(xué)儀器廠);電熱溫鼓風(fēng)干燥箱(山東濰坊集團股份有限公司醫(yī)療器械廠);電子分析天平(MP300D,上海恒平科學(xué)儀器有限公司);旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(RE-52A,上海亞榮生化儀器廠)。

    1.2 材料和試藥 香菇(市售,55~60℃烘干,粉碎,備用);三氯乙酸(分析純,天津市巴斯夫化工有限公司);乙酸(分析純,天津市巴斯夫化工有限公司);無水乙醇(分析純,天津市永大化學(xué)試劑開發(fā)中心);葡萄糖(分析純,天津市大茂化學(xué)試劑廠);苯酚(分析純,天津市永大化學(xué)試劑開發(fā)中心);硫酸(優(yōu)級純,天津市化學(xué)試劑三廠);乙醚(分析純,天津市巴斯夫化工有限公司);溴化十六烷基三甲銨(分析純,國醫(yī)藥集團上?;瘜W(xué)試劑公司);水為去離子水。

    2 實驗方法與結(jié)果

    2.1 香菇多糖的提?。?]取香菇子實體放入烘箱內(nèi),調(diào)溫98~100℃烘干、粉碎,過60目篩,備用。

    2.1.1 熱水浸提法提取 稱取香菇粉10 g,置于燒杯中,加200 mL蒸餾水,96℃水浴提取2 h,靜置12 h后過濾。收集沉淀再水浴提取兩次,過濾,合并3次濾液,濃縮至100 mL,加入200 mL無水乙醇,靜置1 d,4 000 rpm離心10 min,沉淀用無水乙醇、乙醚依次洗滌后,自然風(fēng)干得粗香菇多糖。

    2.1.2 三氯乙酸浸提法提取 稱取香菇粉10 g,置于燒杯中,加0.2 mol·L-1三氯乙酸(TCA)200 mL,室溫浸提12 h,過濾。收集沉淀再提取兩次,過濾,合并3次濾液,濃縮至100 mL,加入200 mL無水乙醇,靜置1 d,4 000 rpm離心10 min,沉淀用無水乙醇、乙醚依次洗滌后,自然風(fēng)干得粗香菇多糖。

    2.1.3 熱水浸提/超聲波處理后提取 稱取香菇粉10 g,置于燒杯中,加200 mL蒸餾水浸提2 h后,96℃水浴1 h,超聲波處理1 h,靜置20 h后過濾。收集沉淀再提取兩次,過濾,合并3次濾液,濃縮至100 mL,加入200 mL無水乙醇,靜置1 d,4 000 rpm離心10 min,沉淀用無水乙醇、乙醚依次洗滌后,自然風(fēng)干得粗香菇多糖。

    2.1.4 超聲波處理后/熱水浸提法提取 稱取香菇粉10 g,置于燒杯中,加200 mL蒸餾水浸提2 h后,超聲波處理1 h后96℃水浴1 h,靜置20 h,過濾。收集沉淀再提取兩次,過濾,合并3次濾液濃縮至100 mL,加入200 mL乙醇,靜置1 d,4 000 rpm離心10 min,沉淀用乙醇、乙醚洗滌后,自然風(fēng)干得粗香菇多糖。

    2.2 香菇粗多糖純化[8]取干燥粗香菇多糖稱量后加蒸餾水(W∶V=1∶50)溶解,再加等體積0.15 mol·L-1的溴化十六烷基三甲銨(CTAB)與硼酸-硼砂緩沖液充分混勻,靜置,離心,沉淀用2 mol·L-1乙酸溶解,離心,上清液加入等體積乙醇,靜置24 h,離心,沉淀用乙醇洗滌兩次,凍干即為純化香菇多糖。

    2.3 香菇多糖含量測定

    2.3.1 對照品溶液的配制 取葡萄糖約10 mg,精密稱定,置100 mL量瓶中,用水溶解稀釋至刻度,即得葡萄糖對照品溶液(100 mg·L-1)。

    2.3.2 最大吸收波長的選擇[9]采用苯酚-硫酸法測定多糖含量。精密吸取0.6 mL對照品溶液,加蒸餾水至1.0 mL,加入5%苯酚溶液1 mL,混勻,迅速加入5 mL濃硫酸,振搖5 min,置沸水浴中15 min,然后置水中冷卻30 min。同時做空白,在200~800 nm范圍內(nèi)測定吸收度,結(jié)果在490 nm處有最大吸收。

    2.3.3 線性關(guān)系考察 精密吸取0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL 葡萄糖對照品溶液(100 mg·L-1),加蒸餾水至1.0 mL,加入5%苯酚液1.0 mL搖勻,迅速滴加濃硫酸5 mL,振搖5 min,置沸水浴中15 min,再置水中冷卻30 min,在490 nm處測定吸收度。以吸收度(A)為縱坐標(biāo),對照品量(C)為橫坐標(biāo),得回歸方程如下:A=0.010 8 C+0.007,r=0.998 7,在(18 ~106 mg·L-1)呈良好的線性關(guān)系。

    2.3.4 精密度試驗 精密吸取對照品溶液0.6 mL,按“2.3.3”項下分別測定吸光度,RSD為1.95%(n=5),表明儀器精密度良好。

    2.3.5 穩(wěn)定性試驗 精密吸取0.6 mL對照品溶液,按“2.3.3”項下每隔30 min測一次吸光度,結(jié)果RSD=1.91%(n=5),表明在3 h內(nèi)樣品穩(wěn)定。

    2.4 不同溶劑和方法提取香菇多糖的結(jié)果如表1所示。

    表1 不同溶劑與方法提取香菇多糖的結(jié)果

    實驗顯示:三氯乙酸浸提干香菇所得粗多糖質(zhì)量較低,但多糖含量高,究其原因可能為TCA法脫蛋白效果較好,但糖保留率低和存在多糖水解的問題;另外TCA的濃度也對結(jié)果產(chǎn)生重要的影響,多糖溶液中蛋白質(zhì)的脫除率受TCA濃度的影響,同時多糖損失率也受TCA濃度的影響,且蛋白質(zhì)的脫除率大小與多糖損失率大小呈現(xiàn)對應(yīng)關(guān)系。由于TCA法脫蛋白時反應(yīng)較為劇烈,當(dāng)TCA濃度過高時可能會引起多糖結(jié)構(gòu)的破壞,產(chǎn)生不期望的結(jié)果。綜合考慮蛋白質(zhì)脫除率、多糖損失率以及TCA可能對多糖造成的影響,這里TCA選擇0.1%的用量為佳[10]。干香菇TCA浸提所得粗多糖經(jīng)純化處理多糖含量達93.10%,綜合分析TCA浸提香菇多糖得率最高。

    熱水浸提所得粗多糖質(zhì)量較高,經(jīng)純化處理多糖損失較多,純化處理后多糖含量最高,達93.12%,但純化多糖的得率較低。

    超聲波處理/熱水浸提及熱水浸提/超聲波處理所得粗多糖質(zhì)量均較高,但多糖含量較低,經(jīng)純化處理中多糖損失較多,且純化多糖含量和得率較低。

    3 討論

    3.1 香菇原藥材的粉碎情況對其多糖的溶出有比較大的影響。如果顆粒過大,則多糖不容易被提取出來,如果粉碎的過細,則比表面積反而減小,也不利于多糖的溶出。香菇顆粒的粒徑為2~3 mm時可以得到較多的多糖粗品[11]。

    3.2 香菇多糖提取時,加水量要合適,原料/無離子水(W/W)=1∶20 ~1∶25 為好[11]。過少,在沒有達到最佳蒸煮時間之前,浸出液已經(jīng)變得很少,甚至糊鍋,從而影響多糖含量;若加水過多,則浸出液過多,不利于以后的分離濃縮。

    3.3 蒸煮溫度要合適,經(jīng)研究表明,在96℃條件下蒸煮可以達到較高的多糖得率[11]。溫度過低(85℃),溶劑的滲透能力和溶解能力降低,使多糖不能有效的溶出;溫度過高(100℃以上)導(dǎo)致多糖的裂解,使多糖得率大大降低。

    3.4 用苯酚-硫酸法測定多糖時,要保持硫酸足夠過量,因為該呈色反應(yīng)是以對多糖的水解和糖醛反應(yīng)為基礎(chǔ)的。

    3.5 實驗中,分光光度計測定的吸光度數(shù)據(jù)是否準(zhǔn)確,與所用的苯酚有很大的關(guān)系。首先苯酚要純,本實驗用的苯酚為我們自行蒸餾配制。另外測定樣品用的苯酚和測標(biāo)準(zhǔn)曲線用的苯酚必須是一次配制的,這樣測得的數(shù)據(jù)才具有可信度,才有比較的價值。

    3.6 由于真菌體內(nèi)有水解酶共存,所以必須采用適當(dāng)?shù)姆椒ㄆ茐幕蛘咭种泼傅幕钚?,例如迅速加熱干燥、冷凍保存等?/p>

    3.7 在多糖的醇沉過程中的醇的濃度對多糖的沉淀析出有較大的影響,一般情況下醇的濃度應(yīng)該為80%左右。

    3.8 超聲法提取多糖有較多的優(yōu)點,可以縮短提取時間,提高工作效率,節(jié)省溶劑,提高有效成分的提取率,簡化提取操作步驟。另外,超聲提取一般是在常溫條件下進行,提取全過程無須加熱,避免了高溫對有效成分的破壞。超聲波破碎過程是一個物理過程,浸提過程中無化學(xué)反應(yīng),可避免因結(jié)構(gòu)改變產(chǎn)生錯誤的結(jié)論。被浸提的生物活性物質(zhì)在一定時間內(nèi)保持不變,生物活性不減,該法適合于某些熱敏成分的提取。因此超聲技術(shù)已經(jīng)廣泛應(yīng)用于植物有效成分的提取。

    在超聲法提取中,一種方法是先超聲波處理再熱水浸提,一種方法是先熱水浸提再超聲波處理,以比較處理方法的先后對結(jié)果是否有影響。根據(jù)實驗結(jié)果可知,先超聲波處理再熱水浸提效果較先熱水浸提再超聲波處理要好。

    4 結(jié)論

    本實驗采用不同溶劑和方法浸提香菇得到粗多糖,然后采用相同工藝純化粗多糖,結(jié)果表明用三氯乙酸從干香菇中提取香菇多糖,相對于其他溶劑方法提取的多糖純度好、得率高,香菇三氯乙酸浸提所得粗多糖經(jīng)純化處理多糖含量達93.10%。綜合分析香菇多糖提取以三氯乙酸浸提效果最佳。

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