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    肺癌血清蛋白質(zhì)雙向電泳圖譜的建立*

    2014-10-15 03:08:40李雪華劉燕青谷彥軍
    醫(yī)學(xué)理論與實(shí)踐 2014年11期
    關(guān)鍵詞:膠條電泳緩沖液

    李雪華 劉燕青 谷彥軍 劉 靜

    1 武警后勤學(xué)院附屬醫(yī)院病理科,天津市 300162; 2 天津市職業(yè)與環(huán)境危害防制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室

    肺癌已成為當(dāng)前世界各國(guó)常見的惡性腫瘤之一,預(yù)后很差,5年存活率僅為14%[1]。蛋白質(zhì)組學(xué)(proteomics)為肺癌的研究提供了新的思路和技術(shù)平臺(tái)。雙向凝膠電泳(two-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis,2-DE)是蛋白質(zhì)組學(xué)研究的核心技術(shù),用于分離蛋白質(zhì)[2]。固相pH 梯度(immobilized pH gradient,IPG)干膠條的出現(xiàn)使得2-DE的重復(fù)性大大改善,盡管如此,穩(wěn)定性和重復(fù)性仍然是2-DE技術(shù)的主要問題。本研究利用2-DE技術(shù)分離肺癌血清蛋白質(zhì),建立穩(wěn)定的肺癌血清蛋白質(zhì)2-DE圖譜,對(duì)2-DE的條件進(jìn)行了各方面的調(diào)整優(yōu)化,為進(jìn)一步的肺癌血清蛋白質(zhì)組學(xué)研究奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料和儀器 肺癌血清標(biāo)本取自武警后勤學(xué)院附屬醫(yī)院。IPG干膠條(pH 3~10L、pH 3~10NL、pH 4~7,17cm)、IEF buffer(pH 3~10)、三丁基膦(Tributyl phosphine,TBP)均為Bio-Rad公司產(chǎn)品;尿素、硫脲、二硫蘇糖醇(DTT)、CHAPS、SDS等均為Sigma公司產(chǎn)品。等電聚焦儀(Protean IEF cell)、垂直電泳系統(tǒng)(proteanⅡxi cell)均購(gòu)自Bio-Rad公司,透射掃描儀為 Umax PowerLook 1100。

    1.2 方法

    1.2.1 血清收集:取研究對(duì)象肘正中靜脈血3ml,4℃放置50min,1 500r/min離心10min,吸取血清,Bradford法測(cè)定血清蛋白濃度,分裝,存于-80℃冰箱備用。

    1.2.2 雙向凝膠電泳:2-DE 方法主要參考文獻(xiàn)[3]和儀器操作手冊(cè)進(jìn)行。以pH 4~7、17cm IPG膠條為例。600μg蛋白質(zhì)與上樣緩沖液(7mol/L尿素,2mol/L 硫 脲,4%CHAPS,50mmol/L DTT,2mmol/L TBP,0.2%IEF buffer pH 3~10,痕量溴酚藍(lán))充分混合,總體積為400μl,上樣,膠條被動(dòng)重水化16h;等電聚焦電泳(IEF)條件為250V1h、500V1h、1 000V1h、5 000V3h、10 000V70 000 Vh;等電聚焦完畢,IPG膠條立即在平衡液 A(6mol/L 尿 素、2%SDS、pH 8.8 的 0.05mol/L Tris-HCL、20%甘油、2%DTT)中平衡15min,再于平衡液B(以2.5%碘乙酰胺替換平衡液A中2%DTT)中平衡15min。之后的垂直板SDS-PAGE電泳條件為每塊膠12mA 30min、每塊膠24mA直至溴酚藍(lán)達(dá)膠底線。

    1.2.3 凝膠染色:2-DE所得凝膠參考文獻(xiàn)進(jìn)行硝酸銀染色[4]。

    2 結(jié)果與討論

    通過以上方法和實(shí)驗(yàn)條件能夠得到較穩(wěn)定的肺癌血清蛋白質(zhì)2-DE圖譜,蛋白質(zhì)點(diǎn)能夠較好分離。實(shí)驗(yàn)的條件的調(diào)整與優(yōu)化主要從以下各方面進(jìn)行。

    2.1 IPG膠條的pH范圍的選擇 最初本研究采用pH 3~10L(線性)膠條分析蛋白總體情況,發(fā)現(xiàn)血清蛋白主要集中于pH 4~7段(圖1A),后來筆者應(yīng)用了pH 3~10NL(非線性)(圖1B)、pH 4~7(圖1C)和pH 4.7~5.9的膠條(圖1D),進(jìn)一步提高上樣量、分辨率以及低豐度蛋白質(zhì)的檢測(cè)能力。

    圖1 IPG膠條pH范圍的選擇

    2.2 蛋白質(zhì)的加樣量 對(duì)于某一特定pH范圍的IPG膠條,選擇合適的蛋白質(zhì)加樣量才能使2-DE圖譜蛋白質(zhì)點(diǎn)清晰分辨。加樣量過大,會(huì)使蛋白點(diǎn)融合,分辨率降低,不利于軟件分析和取點(diǎn)鑒定;加樣量過小,則低豐度蛋白不能被檢測(cè)。經(jīng)過多次實(shí)驗(yàn)摸索,加樣量600μg比較適合,大部分蛋白點(diǎn)能夠清晰分辨。

    2.3 聚焦參數(shù)設(shè)置 對(duì)于不同的樣品、不同的上樣量、不同的pH范圍的膠條、不同的標(biāo)本處理方法或者不同的樣品緩沖液聚焦參數(shù)的設(shè)置是不同的,具體條件要實(shí)驗(yàn)摸索。聚焦不夠,蛋白沒有到達(dá)相應(yīng)的等電點(diǎn)部位,會(huì)出現(xiàn)橫向條紋;但是聚焦過度,蛋白質(zhì)會(huì)在等電點(diǎn)附近發(fā)生沉淀,同樣會(huì)出現(xiàn)橫向條紋;而且二者都可能使所能檢測(cè)的蛋白點(diǎn)數(shù)減少。最初實(shí)驗(yàn)中由于聚焦過度2-DE圖譜中出現(xiàn)一些橫向的細(xì)條紋。經(jīng)多次實(shí)驗(yàn)調(diào)整,最終所設(shè)置的IEF聚焦參數(shù)為:對(duì)于pH4~7的膠條,600μg左右的上樣量,按照前述聚焦步驟,總Vh 70 000左右,能夠?qū)ρ宓鞍踪|(zhì)較好的分離;對(duì)于pH4.7~5.9的膠條,1 400μg左右的上樣量,總Vh 85 000左右。以下為聚焦過度和聚焦適度的2-DE圖譜比較(圖2)。

    圖2 IEF聚焦參數(shù)設(shè)置對(duì)2-DE結(jié)果的影響

    2.4 血清蛋白質(zhì)緩沖液 2-DE樣品蛋白質(zhì)緩沖液一般分為樣品制備的裂解液和上樣緩沖液。樣品緩沖液的配方多種多樣,對(duì)于不同樣品的蛋白質(zhì),緩沖液的成分和濃度會(huì)有所不同。對(duì)于某一特定樣品的蛋白質(zhì),要想達(dá)到最佳分離效果,必須對(duì)緩沖液的成分和濃度進(jìn)行預(yù)實(shí)驗(yàn)、調(diào)整。本研究最初應(yīng)用了不適合的血清蛋白上樣緩沖液,導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)結(jié)果較差(圖3A)。經(jīng)過預(yù)實(shí)驗(yàn)調(diào)整,目前筆者應(yīng)用的上樣緩沖液成分是7mol/L尿素、2mol/L硫脲、4%CHAPS、50mmol/L DTT、2mmol/L TBP、0.2%IEF buffer pH3~10、痕量溴酚藍(lán),能夠達(dá)到較好電泳效果(圖3B)。

    圖3 血清蛋白質(zhì)緩沖液對(duì)2-DE的影響

    2.5 血清蛋白質(zhì)的純化 丙酮沉淀蛋白質(zhì)的方法,被廣泛用于蛋白質(zhì)標(biāo)本的預(yù)處理純化,可以去除鹽、脂、核酸等雜質(zhì)的干擾,可以富集低濃度蛋白質(zhì)。而沉淀的方法會(huì)丟失少量的蛋白質(zhì)。所以本研究進(jìn)行了血清蛋白質(zhì)丙酮沉淀與不沉淀的比較。圖4A為經(jīng)過丙酮沉淀的血清蛋白2-DE圖,圖4B為未沉淀蛋白2-DE圖,二者的加樣量相同。通過比較可以發(fā)現(xiàn)兩張圖蛋白點(diǎn)極為相似。以后的實(shí)驗(yàn)中盡量采取不沉淀的方法,但如果血清鹽、脂等嚴(yán)重干擾等電聚焦電泳,則可以采取沉淀的方法純化標(biāo)本,去除干擾成分。

    圖4 丙酮沉淀與不沉淀蛋白質(zhì)2-DE圖比較

    本研究對(duì)肺癌血清蛋白質(zhì)2-DE的各種條件進(jìn)行了優(yōu)化,建立了重復(fù)性較好的血清蛋白質(zhì)2-DE技術(shù),獲得了較穩(wěn)定的肺癌血清蛋白質(zhì)2-DE圖譜,為進(jìn)一步比較、分析、鑒定肺癌相關(guān)血清蛋白質(zhì),開展相關(guān)的蛋白質(zhì)組學(xué)研究奠定了一定的基礎(chǔ)。

    [1]劉璟.肺癌治療的進(jìn)展〔J〕.醫(yī)學(xué)理論與實(shí)踐,2011,24(1):25.

    [2]Aebersold R,Mann M.Mass spectrometry-based proteomics〔J〕.Nature,2003,422(6928):198.

    [3]Curreem SO,Watt RM,et al.Two-dimensional gel electrophoresis in bacterial proteomics〔J〕.Protein Cell,2012,3(5):346.

    [4]G?rg A,Weiss W,Dunn MJ.Current two-dimensional electrophoresis technology for proteomics〔J〕.Proteomics,2004,4(12):3665-3685.

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