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    聚集相關(guān)蛋白基因與轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β1對(duì)肺癌相關(guān)生物材料表皮葡萄球菌生物膜形成的影響

    2014-09-09 09:29:24陳穎雷玉潔黃云超饒鐘鳴葉聯(lián)華趙光強(qiáng)王小燕
    中國(guó)肺癌雜志 2014年4期
    關(guān)鍵詞:硅橡膠生物膜表皮

    陳穎 雷玉潔 黃云超 饒鐘鳴 葉聯(lián)華 趙光強(qiáng) 王小燕

    在肺癌診療過(guò)程中幾乎每位肺癌患者都可能永久或暫時(shí)被植入生物材料如:血管導(dǎo)管、外科縫合線、支架、引流管等。肺癌患者自身免疫低下,在接受綜合治療如:手術(shù)、化療、放療過(guò)程中又加重了自身的免疫功能損傷,易并發(fā)院內(nèi)感染,特別是以生物材料為中心的感染(biomaterial centered infection, BCI),是院內(nèi)感染的高發(fā)人群。

    課題組前期研究發(fā)現(xiàn)由于細(xì)菌粘附于植入材料表面形成生物膜(biofilm, BF)以及機(jī)體免疫功能失調(diào)是造成BCI反復(fù)發(fā)作,難以控制的關(guān)鍵因素[1]。

    BCI多由葡萄球菌屬引起,特別是定植皮膚、粘膜表面條件致病菌表皮葡萄球菌(staphylococcus epidermidis, SE)常伴隨植入過(guò)程侵入體內(nèi)[2]。SE粘附于植入材料表面后,其分泌的聚集相關(guān)蛋白(accumulation-associated protein, Aap),可促進(jìn)SE聚集形成BF,是形成細(xì)菌生物膜的主要成分。

    轉(zhuǎn)換生長(zhǎng)因子-β1(transforming growth factor β1,TGF-β1)是惡性細(xì)胞分泌的免疫抑制因子之一,是一類功能復(fù)雜的細(xì)胞因子。由肺癌細(xì)胞分泌的TGF-β1不僅與細(xì)胞免疫失調(diào)密切相關(guān),而且與肺癌的發(fā)生、發(fā)展以及預(yù)后關(guān)系密切[3-5]。

    本實(shí)驗(yàn)探討TGF-β1與表皮葡萄球菌Aap基因?qū)Ψ伟┗颊哚t(yī)用硅橡膠材料表面生物膜形成的影響。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)用菌種及試劑、器材 表皮葡萄球標(biāo)準(zhǔn)株RP62A(生物膜表型陽(yáng)性,經(jīng)基因組測(cè)序證明存在完整Aap基因),ATCC 12228(生物膜表型陰性,經(jīng)基因組測(cè)序證明Aap基因缺失)購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院微生物研究所;人肺腺癌細(xì)胞系A(chǔ)549由云南省腫瘤研究所提供;人轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β1(PeproTech公司,美國(guó));淋巴細(xì)胞分離液(Sigma公司,美國(guó));API試紙條(BioMerirux公司,法國(guó)); rTaq DNA Marker(Takara公司,日本);PCR使用所用引物如表1所示,由大連TaKaRa生物工程有限公司設(shè)計(jì),上海生工生物工程有限公司合成。

    醫(yī)用硅橡膠(四川大學(xué)生物材料系),將硅橡膠材料加工成面積0.5 cm×1.0 cm大小,甲醛熏蒸24 h滅菌備用。RPMI 1640培養(yǎng)基、DMSO、PBS緩沖液(GIBCO公司,美國(guó));FBS(COSTAR公司,美國(guó));電子顯微鏡EYO LS10(Carl Zeiss公司德國(guó));紫外分光光度儀、梯度PCR儀(Bio-Rad公司,美國(guó))。

    1.2 臨床表皮葡萄菌的分離、鑒定及細(xì)菌DNA的提取

    1.2.1 臨床表皮葡萄菌的分離、鑒定 留置胸腔引流管的肺癌患者,在排除導(dǎo)管部位發(fā)炎或化膿及其他原因的急性發(fā)熱、寒顫等全身情況下,拔除導(dǎo)管。將導(dǎo)管頂端3 cm浸于肉湯培養(yǎng)基中,經(jīng)振蕩、超聲洗脫或離心處理后,使用肉湯進(jìn)行倍比稀釋,種植于血瓊脂平板上。根據(jù)血瓊脂平板上菌落的形態(tài)及革蘭氏染色,API試劑條行種屬鑒定,確認(rèn)所分離到的細(xì)菌為表皮葡萄球菌。

    1.2.2 細(xì)菌DNA的提取 選取單個(gè)葡萄球菌接種于5 mL肉湯培養(yǎng)基37oC震蕩過(guò)夜,加入180 μL的TE緩沖液吹勻,加入20 μL 50 mg/mL溶菌酶溶液37oC溫育20 min后,加入15 μL的蛋白酶K混勻,55oC溫育40 min。加入5 μL RNase A震蕩樣品,靜置20 min。加入220 μL BTL緩沖液,混勻后再65oC溫育10 min。將上清轉(zhuǎn)入新管中,500 μL Buffer HB溶液,10,000 g離心1 min。1 mL的70%乙醇洗滌后沉淀,離心棄乙醇,重溶于200 μL TE緩沖液中,準(zhǔn)備PCR檢測(cè)。

    表1 PCR引物、復(fù)性溫度及產(chǎn)物長(zhǎng)度Tab 1 The PCR primers, annealing temperature and the products lengths

    1.2.3 PCR擴(kuò)增Aap DNA、16s rRNA,檢測(cè)臨床表皮葡萄球菌株Aap基因 以表皮葡萄球菌基因組為模板,16s rRNA為內(nèi)參,擴(kuò)增Aap基因(表1)。PCR反應(yīng)過(guò)程:起始變性: 94oC 3 min;變性: 94oC 30 s;退火(Aap):58oC 30 s,退火(16s rRNA): 60oC 30 s;延伸: 72oC 1 min;循環(huán): 第2-4步驟35個(gè)循環(huán);最終延伸: 72oC 10 min。微量加樣槍取DNA 2 μL加入的2%瓊脂糖凝膠板,加入Marker 2 μL,在電泳槽內(nèi)進(jìn)行100 V電泳20 min,成像儀進(jìn)行檢測(cè),檢測(cè)臨床SE分離株Aap基因表達(dá)。

    1.3 表皮葡萄球菌Aap基因在醫(yī)用硅橡膠上生物膜形成情況 將臨床分離SE Aap+株38株,SE Aap-株8株,濃度調(diào)整為1×106/mL,與醫(yī)用硅橡膠在24孔板內(nèi)培養(yǎng)30 h,取出硅橡膠材料。PBS液進(jìn)行沖洗3遍,Bouin固定液進(jìn)行固定1 h,無(wú)菌蒸餾水沖洗3遍。使用結(jié)晶紫染色3 min,再次無(wú)菌蒸餾水沖洗,晾干在微量酶測(cè)量標(biāo)儀上測(cè)定490 nm波長(zhǎng)吸光度值,測(cè)定每株細(xì)菌均值。按上述方法測(cè)出空白對(duì)照490 nm的均值。用實(shí)驗(yàn)組值減去空白對(duì)照組值,差值>0.12的菌株即可判斷細(xì)菌生物膜形成。

    1.4 非小細(xì)胞肺患者PBMCs分離及A549制備 采集非小細(xì)胞肺癌患者外周靜脈血10 mL,使用淋巴細(xì)胞分離液,在2,000 r/min,溫度4oC下離心20 min。小心吸出血漿層和淋巴細(xì)胞分離液交界的外周血單個(gè)核細(xì)胞(peripheral blood mononuclear cells, PBMCs)。轉(zhuǎn)移入另一15 mL離心管中加入Hanks液1,000 r/min離心10 min后洗滌3次,使用含10%PBS的RPMI-1640培養(yǎng)液培養(yǎng)液,置于37oC、5%CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)備用。

    復(fù)蘇A549細(xì)胞株,用含10%FBS的RPMI 1640培養(yǎng)液,在37oC、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。2天后細(xì)胞傳代,加入0.25%胰酶消化,取第3代生長(zhǎng)旺盛細(xì)胞,制備細(xì)胞懸液,調(diào)整濃度為1×106/mL。

    1.5 不同濃度TGF-β1下醫(yī)用硅橡膠表面生物膜的形成選取SE Aap+株、SE Aap-株(各6株)以及SE標(biāo)準(zhǔn)株,RP62A、ATCC12228濃度為1×106/mL細(xì)菌懸液各1 mL。加入在不同濃度(0 ng/mL, 10 ng/mL, 20 ng/mL, 40 ng/mL)的TGF-β1因子下,在濃度1×106/mL的A549細(xì)胞,濃度為1×106/mL,PBMCs中共培養(yǎng)30 h上清液中1 mL。后與滅菌硅醫(yī)用橡膠(每組兩片)共培養(yǎng)30 h,半定量粘附試驗(yàn)檢測(cè)表皮葡萄球菌細(xì)菌生物膜形成的情況方法同前。

    SEM標(biāo)本制作和觀察用羥乙基哌嗪乙硫磺酸(HEPES)緩沖液(pH=7)沖洗3次,4%戊二醛固定于SEM載物臺(tái)上,PBS沖洗3遍,二氧化碳(CO2)臨界干燥,離子濺射表面固定鍍膜致PVC材料表面成金黃色,掃描電鏡觀察細(xì)菌生物膜表面結(jié)構(gòu)。

    1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 數(shù)據(jù)使用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,各組的細(xì)胞膜生長(zhǎng)情況先進(jìn)行方差齊性檢驗(yàn),若方差齊則采用單因素方差分析進(jìn)行F檢驗(yàn),進(jìn)一步做兩兩比較使用q檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 表皮葡萄球菌臨床分離株Aap基因PCR檢測(cè)結(jié)果 臨床表皮葡萄球菌分離株46株與標(biāo)準(zhǔn)株RP62A、ATCC1228株,經(jīng)PCR檢測(cè):46株表皮葡萄球菌的16s RNA檢測(cè)陽(yáng)性率為100%。Aap+株共38株,陽(yáng)性率82.6%,Aap-株共8株,陰性率17.4%(圖1)。

    2.2 表葡菌生物膜的形成能力與Aap基因的相關(guān)分析 半定量作為判定生物膜形成能力的標(biāo)準(zhǔn),Aap基因的存在與SE生物膜形成密切相關(guān)(P<0.01)(表2)。

    2.3 TGF-β1因子對(duì)SE Aap+株細(xì)菌生物膜形成的影響 半定量方法測(cè)結(jié)果:10 ng/mL、20 ng/mL、40 ng/mL TGF-β1因子刺激下SE986、SE842、SE317、SE276、RP62A細(xì)菌生物膜的厚度大于空白對(duì)照組(P<0.05)。通過(guò)組間比較q檢驗(yàn)提示20 ng/mL、40 ng/mL組細(xì)菌生物膜的厚度無(wú)差異(P>0.05)(表3)。

    2.4 TGF-β1因子對(duì)SE Aap-株細(xì)菌生物膜形成的影響 通過(guò)半定量方法測(cè)量結(jié)果:10 ng/mL、20 ng/mL、40 ng/mL TGF-β1因子刺激下的各表皮葡萄球菌的厚度與空白對(duì)照組未見(jiàn)差異(P>0.05)。各濃度TGF-β1組間比較未見(jiàn)差異(P>0.05)。實(shí)驗(yàn)證明SE Aap-在不同濃度TGF-β1因子刺激(0 ng/mL, 10 ng/mL, 20 ng/mL, 40 ng/mL)均不能形成細(xì)菌生物膜(表4)。

    2.5 SEM觀察不同濃度TGF-β1組醫(yī)用硅橡膠表面細(xì)菌生物膜形成情況 SE Aap+株與RP62A株,在(10 ng/mL, 20 ng/mL, 40 ng/mL)TGF-β1組中,可觀察到在醫(yī)用硅橡膠表面大量SE相互聚集重疊,形成生物膜;在對(duì)照組中,僅見(jiàn)少量聚集SE粘附與硅橡膠表面,無(wú)生物膜形成(圖2)。

    SE Aap-株與標(biāo)準(zhǔn)株ATCC12228株,在(10 ng/mL, 20 ng/mL, 40 ng/mL)TGF-β1組及在對(duì)照組中,可觀察到在醫(yī)用硅橡膠表面零散分布單個(gè)表皮葡萄球菌,未觀察到表皮葡萄球菌出現(xiàn)相互聚集產(chǎn)生細(xì)菌生物膜(圖3)。

    表2 表皮葡萄球菌Aap基因檢測(cè)陽(yáng)性率與生物膜表型檢測(cè)Tab 2 The Staphylococcus epidermidis Aap genetic testing positive rate of biofilm formation detection

    表3 不同濃度TGF-β1對(duì)A549上清液與外周單個(gè)核細(xì)胞共同培養(yǎng)下Aap+表葡菌生物膜厚度(Mean±SD)Tab 3 Different concentrations of TGF-β1 on the A549 supernatant and peripheral mononuclear cells co-cultured in the Aap positive SE biofilm thickness (Mean±SD)

    表4 不同濃度TGF-β1對(duì)A549上清液與外周單個(gè)核細(xì)胞共同培養(yǎng)下Aap-表葡菌生物膜厚度的作用(Mean±SD)Tab 4 Different concentrations of TGF-β1 on the A549 supernatant and peripheral mononuclear cells co-cultured in the Aap negative SE biofilm thickness (Mean±SD)

    圖1 表皮葡萄球菌標(biāo)準(zhǔn)株P(guān)CR檢測(cè)結(jié)果Fig 1 Gel electrophoresis figure of PCR products

    圖2 SEM圖片。A:40 ng/mL TGF-β1組SE Aap+株SEM圖片;B: 20 ng/mL TGF-β1組SE Aap+株SEM圖片;C:10 ng/mL TGF-β1組SE Aap+株SEM圖片;D:0 ng/mL TGF-β1組SE Aap+株SEM圖片。Fig 2 SEM pictures. A: The SEM picture of Aap postive SE biofilm in 40 ng/mL TGF-β1 gourp; B: The SEM picture of Aap postive SE biofilm in 20 ng/mL TGF-β1 gourp; C: The SEM picture of Aap postive SE biofilm in 10 ng/mL TGF-β1 gourp; D: The SEM picture of Aap postive SE biofilm in 0 ng/mL TGF-β1 gourp.

    圖3 SEM圖片。A:40 ng/mL TGF-β1組SE Aap-株SEM圖片;B:20 ng/mL TGF-β1組SE Aap-株SEM圖片;C:10 ng/mL TGF-β1組SE Aap-株SEM圖片;D:0 ng/mL TGF-β1組SE Aap-株SEM圖片。Fig 3 SEM pictures. A: The SEM picture of Aap negative SE biofilm in 40 ng/mL TGF-β1 group; B: The SEM picture of Aap negative SE biofilm in 20 ng/mL TGF-β1 group; C: The SEM picture of Aap negative SE biofilm in 10 ng/mL TGF-β1 group; D: The SEM picture of Aap negative SE biofilm in 0 ng/mL TGF-β1 group.

    3 討論

    研究[6,7]表明,肺癌患者的免疫應(yīng)答以T細(xì)胞免疫為主,肺癌細(xì)胞產(chǎn)生的免疫抑制因子TGF-β1是造成癌癥患者免疫功能紊亂、Th1/Th2因子失調(diào)、T淋巴細(xì)胞與NK細(xì)胞活性較低的主要原因之一。肺癌患者接受手術(shù)、化療、放療過(guò)程中,更易受條件致病菌感染。

    肺癌治療過(guò)程中所植入的生物材料增加了細(xì)菌入侵宿主途徑,降低了機(jī)體的防御能力,BCI上升明顯。對(duì)于抵抗力較低的癌癥患者來(lái)說(shuō),一旦發(fā)生BCI,死亡率高達(dá)3%-60%,甚至可達(dá)到80%。研究[8]表明,BCI與細(xì)菌在生物材料表面粘附形成BF密切相關(guān)。在TGF-β1因子高表達(dá)的肺癌患者,中心靜脈導(dǎo)管相關(guān)性血流感染幾率較高,細(xì)菌產(chǎn)生BF的比例也升高。定植皮膚表面的條件致病菌SE是植入材料感染的主要條件致病菌,占肺癌患者BCI的40%。

    Aap是一種SE細(xì)胞壁錨定蛋白,在BF形成的初期可促進(jìn)細(xì)菌相互粘附,是SE生物膜的主要成分之一[9]。Aap結(jié)構(gòu)包括A末端區(qū)域和B重復(fù)區(qū)域。A區(qū)域功能在于使SE粘附在人皮膚表面,B區(qū)域可以增強(qiáng)其粘附功能。B重復(fù)區(qū)域由5到17個(gè)可變數(shù)量的幾乎相同128氨基酸組成的保守半重復(fù)末端結(jié)構(gòu),通過(guò)Zn2+-依賴的D二聚體實(shí)現(xiàn)細(xì)菌間的直接粘附[10,11]。通過(guò)Zn2+螯合劑可以抑制SE Aap基因的表達(dá),進(jìn)而影響細(xì)菌生物膜的形成。Aap基因陰性的表皮葡萄球菌M7株,可以粘附在生物材料表面,但是不能在其表面聚集形成生物膜。

    醫(yī)用硅橡膠價(jià)格低廉、易加工、生物相容性良好是臨床中最常用生物材料之一,廣泛用于制作醫(yī)用導(dǎo)管、引流管及假體植入等。研究臨床分離SE Aap+株與SE Aap-株在醫(yī)用硅橡膠生物膜的形成。結(jié)果提示在肺癌患者醫(yī)用硅橡膠引流管植入引起感染中,表皮葡萄球菌Aap基因與細(xì)菌生物膜密切相關(guān),臨床分離葡萄球菌Aap-株不能在硅橡膠表面形成細(xì)菌生物膜。提示Aap基因是表皮葡萄球菌生物膜形成過(guò)程中的重要調(diào)節(jié)基因,調(diào)控細(xì)菌聚集相關(guān)過(guò)程,缺乏Aap基因所調(diào)控的聚集相關(guān)蛋白的輔助,表皮葡萄球菌難以在生物材料相互聚集形成細(xì)菌群落,最終形成生物膜。

    本研究通過(guò)分離肺癌患者外周單個(gè)核細(xì)胞與肺腺癌細(xì)胞A549在不同濃度TGF-β1因子刺激下共同培養(yǎng),模擬體外肺癌免疫抑制狀態(tài)下表皮葡萄球菌臨床分離株在生物材料表面形成過(guò)程。結(jié)果提示TGF-β1對(duì)在肺癌細(xì)胞微環(huán)境中SE Aap+生物膜形成有一定促進(jìn)作用??赡苁怯捎诜伟┗颊逿淋巴細(xì)胞與NK細(xì)胞活性以及體內(nèi)非特異性殺傷因子水平較健康人群低下[12],TGF-β1的加入進(jìn)一步抑制肺癌患者PBMCs相關(guān)細(xì)胞因子的分泌,導(dǎo)致對(duì)細(xì)菌的殺傷作用下降,細(xì)菌更易達(dá)到粘附在生物材料表面所需數(shù)量。當(dāng)局部粘附的SE數(shù)量達(dá)到一定程度后,由于肺癌患者機(jī)體因子失調(diào),免疫監(jiān)視紊亂,可能導(dǎo)致細(xì)菌在生物材料上聚集過(guò)程不易引發(fā)免疫細(xì)胞吞噬作用[13,14]。最終導(dǎo)致細(xì)菌之間相互粘附、分化、增殖,并分泌大量細(xì)胞外粘物質(zhì)形成BF。

    肺癌患者體內(nèi)免疫因子與TGF-β1作用關(guān)系復(fù)雜,表皮葡萄球菌細(xì)菌生物膜形成的分子學(xué)研究不但涉及蛋白依賴,而且還存在多糖依賴等。生物材料植入感染BF形成與生物材料、病原菌、宿主三者的相互關(guān)系密不可分。目前國(guó)內(nèi)外對(duì)于BCI的研究大多數(shù)集中在心血管、口腔、泌尿、整形骨科等學(xué)科領(lǐng)域,而對(duì)肺癌患者治療中出現(xiàn)的BCI的研究報(bào)道不多,如何分別從生物材料、細(xì)菌基因水平、宿主三個(gè)方面預(yù)防肺癌治療中BCI值得進(jìn)一步研究。

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