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    抗HSV-2單鏈抗體和堿性磷酸酶融合蛋白的制備

    2014-08-24 07:35:52,,
    關(guān)鍵詞:復(fù)性磷酸酶咪唑

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    (浙江工業(yè)大學(xué) 藥學(xué)院,浙江 杭州 310032)

    生殖器皰疹(GH)是一種常見的性傳播疾病,主要通過水平性接觸傳播,也能垂直感染胎兒及新生兒,導(dǎo)致流產(chǎn)及新生兒死亡.GH主要由單純皰疹病毒II型(HSV-2)感染所致[1].近年來的流行病學(xué)調(diào)查表明:HSV-2感染與宮頸癌的發(fā)生有關(guān)[2-3],還會(huì)增加人類免疫缺陷病毒(HIV)感染的風(fēng)險(xiǎn)[4-5].Looker KJ等根據(jù)全球12個(gè)地區(qū)的匯總數(shù)據(jù)估計(jì),2003年全球15~49歲人群中,HSV-2感染的患病率約為16.2%,發(fā)病率約為0.7%,僅2003年全球新增HSV-2感染者約2 360萬人[6].因此,建立一種簡便、快速和低成本的HSV-2初篩方法,對GH的輔助診斷和控制傳播具有重要的意義.本研究為了探索前期篩選到的高特異性抗HSV-2糖蛋白B的單鏈抗體在GH診斷中的應(yīng)用價(jià)值,構(gòu)建了抗HSV-2單鏈抗體和堿性磷酸酶的融合表達(dá)載體,并進(jìn)行了包涵體的復(fù)性研究.

    1 材料與方法

    1.1 材 料

    1.1.1 菌株及質(zhì)粒

    大腸桿菌BL21(DE3)和DH5α由本實(shí)驗(yàn)室保存,質(zhì)粒pLac-duet-1-AKP和pCANTAB5E-H3由杭州遠(yuǎn)方生物科技有限公司提供.

    1.1.2 酶及主要試劑

    限制性內(nèi)切酶NotI、NcoI和T4 DNA連接酶購自TaKaRa公司,DNA和蛋白購自Fermentas公司,DNA凝膠回收試劑盒、質(zhì)粒小量抽提試劑盒和堿性磷酸酶檢測試劑盒購自碧云天公司,Ni2+-NTA基質(zhì)購自QIAGEN公司.

    1.2 方 法

    1.2.1 融合表達(dá)載體pLac-H3-AKP的構(gòu)建

    質(zhì)粒pLac-duet-1-AKP是將pETduet-1(Novagen公司)質(zhì)粒中T7啟動(dòng)子用大腸桿菌Lac啟動(dòng)子替代,并插入了一個(gè)進(jìn)化后酶活性提高30倍左右的大腸桿菌堿性磷酸酶基因片段;pCANTAB5E-H3是從本室早先構(gòu)建的噬菌體抗體庫中篩選到的針對單純皰疹病毒糖蛋白B抗原的N端特異性中和抗體,這個(gè)抗體識別抗原的立體結(jié)構(gòu),能有效封閉病毒與相應(yīng)細(xì)胞受體的結(jié)合位點(diǎn)從而阻斷病毒侵入細(xì)胞.分別用限制性內(nèi)切酶NotI和NcoI雙酶切,產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳目標(biāo)條帶用凝膠回收試劑盒回收后用T4 DNA連接酶連接,產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞,涂布含氨芐青霉素的LB培養(yǎng)平板37 ℃培養(yǎng)過夜,次日挑取單菌落培養(yǎng),抽提質(zhì)粒用NotI和NcoI雙酶切鑒定克隆是否含有目標(biāo)載體,含預(yù)期大小基因片段的克隆送上海生工測序,測序正確的克隆命名為pLac-H3-AKP.

    1.2.2 融合蛋白的表達(dá)及包涵體的制備

    將表達(dá)載體pLac-H3-AKP轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞,涂布含氨芐青霉素的LB培養(yǎng)平板37 ℃培養(yǎng)過夜,次日挑取單菌落接種于含氨芐青霉素的LB培養(yǎng)基中37 ℃培養(yǎng),再次抽提質(zhì)粒雙酶切確認(rèn)是否含有目標(biāo)載體.將確認(rèn)后的克隆接種至含氨芐青霉素的LB培養(yǎng)基中培養(yǎng)過夜,次日按1:100比例接種于1 L新鮮的含氨芐青霉素的LB培養(yǎng)基中,37 ℃搖床振蕩培養(yǎng)至OD600為0.8左右,加入終濃度為1 mmol/L的IPTG,繼續(xù)37 ℃搖床振蕩誘導(dǎo)培養(yǎng)4 h.4 ℃,4 000 r/m收集菌體15 min,每克濕菌體用10 mL PBS洗滌兩次,再以相同比例的含有0.5 mol/L NaCl的預(yù)冷PBS重懸細(xì)菌,反復(fù)凍融三次后,放冰水浴中超聲至菌體完全裂解,12 000 r/m離心15 min,收集包涵體沉淀.

    設(shè)置無質(zhì)粒和空白質(zhì)粒轉(zhuǎn)化對照組,并設(shè)計(jì)了各組未誘導(dǎo)全菌、誘導(dǎo)全菌、破菌后上清和沉淀進(jìn)行12%SDS-PAGE電泳以確定表達(dá)產(chǎn)物的定位.

    1.2.3 包涵體的純化

    每克包涵體用5 mL洗滌緩沖液(50 mmol/L Tris-HCl,2 mol/L尿素,1% Triton X-100,pH 8.0)洗滌包涵體3次.洗滌后的包涵體復(fù)性前采用兩步變性法處理:每300 mg包涵體用1 mL裂解緩沖液(50 mmol/L Tris-HCl,0.5 mol/L NaCl,6 mol/L鹽酸胍,pH 8.0)重懸后室溫?fù)u床振蕩過夜以溶解包涵體,次日12 000 r/m離心15 min,棄去沉淀,上清用40倍體積超純水迅速稀釋,使蛋白重新聚集沉淀過夜,12 000 r/m離心30 min,保留沉淀,用變性緩沖液(50 mmol/L Tris-HCl,0.5 mol/L NaCl,8 mol/L尿素,pH 8.0)重新溶解沉淀,12 000 r/m離心15 min,上清過0.45 μm濾膜備用.

    按制造商推薦的方法用10倍柱體積的平衡緩沖液(50 mmol/L Tris-HCl,0.5 mol/L NaCl,8 mol/L尿素,20 mmol/L咪唑,pH 8.0)平衡鎳離子螯合介質(zhì).將尿素變性溶解的包涵體溶液與平衡好的螯合介質(zhì)混勻,室溫溫和混勻30 min使之充分結(jié)合,用10倍柱體積的洗滌緩沖液(50 mmol/L Tris-HCl,0.5 mol/L NaCl,8 mol/L尿素,40 mmol/L咪唑,pH 8.0)充分洗滌鎳離子螯合介質(zhì).從低到高以不同濃度梯度的咪唑洗脫緩沖液競爭性洗脫目的蛋白,每個(gè)濃度2個(gè)柱體積洗脫.12% SDS-PAGE電泳分析目的蛋白有效洗脫濃度和純度.洗脫液中加入終濃度為10 mmol/L DTT打開二硫鍵.用含有50 mmol/L Tris-HCl,0.5 mol/L NaCl,8 mol/L尿素的pH為8.0的緩沖液低溫透析除去咪唑和DTT,用Bradford法測定蛋白濃度.

    1.2.4 包涵體的復(fù)性

    復(fù)性緩沖液(50 mmol/L Tris-HCl,0.5 mol/L NaCl,10 mmol/L β-巰基乙醇,0.5 mol/L尿素,0.5 mol/L精氨酸,1 mmol/L GSSG和1 mmol/L GSH,pH 8.0),蛋白的初始復(fù)性質(zhì)量濃度為0.1 mg/mL,放4 ℃冰箱中復(fù)性24 h.

    1) 不同pH值對復(fù)性效果的影響

    將透析好的變性蛋白逐滴加入到預(yù)冷的不同pH值的復(fù)性緩沖液中,pH值分別為7.0,7.5,8.0,8.5,9.0,蛋白的初始復(fù)性質(zhì)量濃度為0.1 mg/mL.放4 ℃冰箱中復(fù)性24 h,12 000 r/m離心15 min,測定上清中AKP比活.

    2) 不同初始復(fù)性蛋白質(zhì)量濃度對復(fù)性效果的影響

    將透析好的變性蛋白逐滴加入到預(yù)冷的復(fù)性緩沖液中,初始的復(fù)性蛋白質(zhì)量濃度分別為0.05,0.1,0.15,0.2,0.25 mg/mL.放4 ℃冰箱中復(fù)性24 h,12 000 r/m離心15 min,測定上清中AKP比活.

    3) 不同濃度比例的GSSG和GSH對復(fù)性效果的影響

    將透析好的變性蛋白逐滴加入到預(yù)冷的不同濃度比例的復(fù)性緩沖液中,GSSG終濃度為1 mmol/L,GSH終濃度分別為0.5,1,2,3,4 mmol/L,蛋白的初始復(fù)性質(zhì)量濃度為0.1 mg/mL.放4 ℃冰箱中復(fù)性24 h,12 000 r/m離心15 min,測定上清中AKP比活.

    4) 不同時(shí)間對復(fù)性效果的影響

    將透析好的變性蛋白逐滴加入到預(yù)冷的復(fù)性緩沖液中,蛋白的初始復(fù)性質(zhì)量濃度為0.1 mg/mL.放4 ℃冰箱中分別復(fù)性12,24,36,48,60 h,12 000 r/m離心15 min,測定上清中AKP比活.

    1.2.5 復(fù)性后融合蛋白的分析鑒定

    進(jìn)行8% SDS-PAGE和抗原結(jié)合活性鑒定:用包被緩沖液稀釋HSV-2糖蛋白B抗原至1 μg/mL,取100 μL加入96孔板4 ℃包被過夜,空白對照孔加等量包被液.次日移去包被液,用含0.05% Tween-20的PBS洗3次,1% BSA 37 ℃封閉1 h,移去封閉液,用含0.05% Tween-20的PBS洗3次,加入100 μL復(fù)性后的融合蛋白(1 μg/mL)37 ℃反應(yīng)1 h,PBS洗3次,然后分別加入50 μL堿性磷酸酶試劑盒中溶液I和溶液II,37 ℃顯色15 min,再加入50 μL堿性磷酸酶試劑盒中溶液III,與空白對照對比觀察顏色變化.

    2 結(jié)果與分析

    2.1 融合表達(dá)載體pLac-H3-AKP的構(gòu)建

    重組質(zhì)粒經(jīng)雙酶切消化后進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳可見一條大小約5 200 bp的條帶和一條大小約750 bp的條帶,理論上重組質(zhì)粒應(yīng)該由一個(gè)大小約5 200 bp的載體片段和一個(gè)大小約750 bp的單鏈抗體基因片段組成,可見電泳顯示的兩個(gè)條帶大小均與理論值相符(圖1),表明成功地構(gòu)建了融合表達(dá)載體pLac-H3-AKP.該載體含Lac啟動(dòng)子,可用IPTG誘導(dǎo)表達(dá),同時(shí)在堿性磷酸酶的羧基端設(shè)計(jì)有編碼6個(gè)組氨酸的密碼子序列使表達(dá)的融合蛋白含有6個(gè)組氨酸,便于金屬螯合層析純化.

    M-1 kb DNA Ladder; 1-重組質(zhì)粒雙酶切產(chǎn)物

    2.2 融合蛋白的表達(dá)及包涵體的制備

    對比未經(jīng)IPTG誘導(dǎo)的全菌蛋白,可見誘導(dǎo)后的全菌蛋白及破菌沉淀在SDS-PAGE電泳中均出現(xiàn)約75 kD大小的條帶(圖2),而經(jīng)誘導(dǎo)后的破菌上清中未見明顯差異條帶,表明融合蛋白在大腸桿菌中成功表達(dá)且主要以包涵體形式存在.

    M-Protein Marker;1-未誘導(dǎo)全菌;2-誘導(dǎo)全菌;3-誘導(dǎo)后破菌上清;4-誘導(dǎo)后破菌沉淀

    2.3 包涵體的純化

    12% SDS-PAGE電泳顯示,純化后的包涵體蛋白能被適當(dāng)濃度的咪唑有效洗脫,在200 mmol/L咪唑洗脫時(shí)純度達(dá)到75%左右(圖3).

    1-未純化包涵體;2-100 mmol/L咪唑洗脫;3-150 mmol/L咪唑洗脫;4-200 mmol/L咪唑洗脫;5-250 mmol/L咪唑洗脫

    2.4 包涵體的復(fù)性

    1) 不同pH值對復(fù)性效果的影響

    通常來說,復(fù)性緩沖液的pH值需要大于7.0,用來防止自由硫醇的質(zhì)子化作用影響二硫鍵的正確配對,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:當(dāng)復(fù)性緩沖液pH值為7.5左右時(shí)(圖4),離心上清中的復(fù)性蛋白比活最高.

    圖4 不同pH值對復(fù)性效果的影響曲線

    2) 不同初始復(fù)性蛋白質(zhì)量濃度對復(fù)性效果的影響

    采用稀釋法復(fù)性,需要確定最佳初始蛋白質(zhì)量濃度,蛋白質(zhì)量濃度過高會(huì)增加分子間相互碰撞的幾率,使蛋白更容易發(fā)生聚集.實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:當(dāng)初始復(fù)性蛋白質(zhì)量濃度為0.1~0.15 mg/mL左右時(shí)(圖5),離心上清中的復(fù)性蛋白比活最高.

    圖5 不同初始復(fù)性蛋白質(zhì)量濃度對復(fù)性效果的影響曲線

    3) 不同濃度比例的GSSG和GSH對復(fù)性效果的影響

    包涵體變性時(shí),蛋白中的二硫鍵被DTT完全打開,復(fù)性時(shí),需要一定的氧化劑將其重新氧化,同時(shí)還需要一定的還原劑對錯(cuò)配的和不穩(wěn)定的二硫鍵重新還原,這兩個(gè)過程的有機(jī)結(jié)合才能得到較好的復(fù)性效果.本實(shí)驗(yàn)采用適當(dāng)比例的GSSG和GSH來提供所需的氧化還原環(huán)境,最終確定復(fù)性液中GSSG濃度為1 mmol/L,GSH濃度為3 mmol/L最為合適(圖6),離心上清中的復(fù)性蛋白比活最高.

    圖6 不同濃度比例的GSSG和GSH對復(fù)性效果的影響曲線

    4) 不同時(shí)間對復(fù)性效果的影響

    蛋白復(fù)性是一個(gè)緩慢的過程,需要充足的時(shí)間做保證,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:融合蛋白在復(fù)性24 h后,復(fù)性率趨于不變(圖7).

    圖7 不同時(shí)間對復(fù)性效果的影響曲線

    5) 復(fù)性后融合蛋白的分析鑒定

    確定最佳復(fù)性條件為復(fù)性緩沖液(50 mmol/L Tris-HCl,0.5 mol/L NaCl,10 mmol/L β-巰基乙醇,0.5 mol/L尿素,0.5 mol/L精氨酸,1 mmol/L GSSG和3 mmol/L GSH,pH 7.5),蛋白的初始復(fù)性質(zhì)量濃度為0.13 mg/mL,4 ℃復(fù)性24 h.

    8% SDS-PAGE電泳顯示復(fù)性后融合蛋白約為75 kD大小(圖8).

    M-Protein Marker;1-復(fù)性后融合蛋白

    為了驗(yàn)證復(fù)性后的融合蛋白是否具有HSV-2抗原結(jié)合活性,本實(shí)驗(yàn)用直接ELISA法鑒定復(fù)性液檢測抗原的活性.結(jié)果表明:復(fù)性后的融合蛋白不僅能識別特異性抗原還能有效顯示酶活性,證明了該融合蛋白具有融合前兩個(gè)分子的雙重功能.ELISA結(jié)果見圖9.

    1-空白對照;2,3,4-三組平行ELISA

    3 結(jié) 論

    單鏈抗體分子量小,結(jié)構(gòu)簡單,易于與各種分子融合形成多重功能的融合蛋白.堿性磷酸酶是廣泛應(yīng)用于生物技術(shù)中的一種標(biāo)記酶.常規(guī)的酶標(biāo)二抗采用化學(xué)交聯(lián)方法制備,存在步驟繁瑣、標(biāo)記率低、成本高的弊端.使用基因工程技術(shù)將識別單元和顯示單元融合表達(dá)制備出具有雙重功能活性的融合蛋白,這不僅省略了酶標(biāo)抗體的制備過程,而且還可以使檢測過程更加簡單快速[7-8].我們構(gòu)建了含有抗HSV-2單鏈抗體基因和堿性磷酸酶基因的融合表達(dá)載體并在大腸桿菌中獲得了包涵體形式為主的融合蛋白表達(dá),包涵體經(jīng)過兩步變性法[9]變性,再用鎳離子金屬螯合層析純化,最后初步探索了影響這種融合蛋白復(fù)性的因素,為今后產(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)相關(guān)診斷試劑打下了一定的基礎(chǔ).實(shí)驗(yàn)結(jié)果證明:大腸桿菌可以有效地表達(dá)單鏈抗體和堿性磷酸酶融合蛋白,這種融合蛋白經(jīng)過復(fù)性可以恢復(fù)原有兩個(gè)蛋白的各自生物學(xué)活性.堿性磷酸酶還可以作為復(fù)性的指示劑,通過檢測它的活性可以評估其融合伴侶是否也得以復(fù)性.該雙重功能活性的融合蛋白可應(yīng)用于快速免疫篩查,使ELISA不再需要酶標(biāo)二抗,簡化了ELISA步驟、縮短了檢測的時(shí)間、省下了常規(guī)化學(xué)交聯(lián)制備酶標(biāo)二抗的成本,具有一定的應(yīng)用前景.

    參考文獻(xiàn):

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