譚玉華,孫寶清
(廣州醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院廣州呼吸疾病研究所/呼吸疾病國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣州510120)
免疫球蛋白E(immunoglobulin E,IgE)在血清中含量極微,僅占血清免疫球蛋白總量的0.002%,但它卻是引起過(guò)敏反應(yīng)的主要抗體。自1966年日本學(xué)者Ishizaka發(fā)現(xiàn)IgE以來(lái),開啟了過(guò)敏性疾病研究的新時(shí)代??侷gE(total IgE,TIgE)的測(cè)定已在臨床廣泛應(yīng)用,它已成為過(guò)敏性疾病診斷與鑒別診斷、寄生蟲感染性疾病、免疫功能障礙相關(guān)性疾病的實(shí)驗(yàn)室評(píng)估指標(biāo)。隨著環(huán)境的改變,在生活中接觸到的食物、藥物、化學(xué)物質(zhì)等越來(lái)越多,過(guò)敏原也就越來(lái)越復(fù)雜多樣,可達(dá)數(shù)千種,而且很隱蔽。雖然目前已有多種國(guó)際先進(jìn)的過(guò)敏原檢測(cè)系統(tǒng),但仍難將所有過(guò)敏原全部涵蓋。TIgE檢測(cè)對(duì)這類無(wú)法確定具體過(guò)敏原的過(guò)敏癥患者仍具有極大的幫助。TIgE的體外定量檢測(cè)可為判定機(jī)體對(duì)過(guò)敏原的易感性提供了有價(jià)值的信息[1],TIgE是特應(yīng)性體質(zhì)的客觀指標(biāo)。據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道,血清TIgE水平的高低還與疾病嚴(yán)重程度有關(guān),測(cè)定TIgE含量有助于對(duì)病情嚴(yán)重程度的判定從而對(duì)急性發(fā)作期臨床治療療程、緩解期預(yù)防性用藥療程進(jìn)行指導(dǎo)[2]。IgE在過(guò)敏性疾病診斷中的作用已獲得公認(rèn),但血清中IgE的含量較低,特別是新生兒臍帶血中IgE含量極低,必須用靈敏的方法才能正確檢測(cè)。建立一個(gè)高度敏感同時(shí)又非常特異的檢測(cè)系統(tǒng)是開展人IgE抗體免疫調(diào)節(jié)機(jī)理研究的基本前提和難點(diǎn)之一。目前,時(shí)間分辨熒光免疫分析(time-resolved fluoroisnmunoassay,TRFIA)已成為生物醫(yī)學(xué)研究和臨床超微量生化檢驗(yàn)中一項(xiàng)最有發(fā)展前景的分析手段。因此,筆者基于雙抗體夾心法建立了TIgE TRFIA法,并對(duì)其性能進(jìn)行了評(píng)價(jià),現(xiàn)報(bào)道如下。
1.1 材料 按照《全國(guó)臨床檢驗(yàn)操作規(guī)程》(第3版)采集靜脈血,樣本如其干擾限超過(guò)試劑盒說(shuō)明書給定范圍或樣本污染等均應(yīng)予以剔除。收集用于方法學(xué)比對(duì)試驗(yàn)預(yù)期偏倚評(píng)估的隨機(jī)樣本共40例,其待測(cè)物濃度應(yīng)覆蓋方法學(xué)的檢測(cè)范圍,且盡可能均勻分布;健康成人樣本來(lái)自健康體檢正常者的血清樣本共20例,用于參考值的轉(zhuǎn)移接收的驗(yàn)證試驗(yàn);確診為過(guò)敏性疾病患者的樣本80例,用于評(píng)價(jià)TIgE在過(guò)敏患者樣本中的檢出率及方法學(xué)檢測(cè)結(jié)果間的一致性。
1.2 儀器與試劑 TAKEEN-Ⅰ型TRFIA儀、FWZ-Ⅰ型微量振蕩器、DEM-Ⅲ型全自動(dòng)洗板機(jī)(廣州市豐華生物工程有限公司);酶標(biāo)儀(深圳雷杜生命科學(xué)股份有限公司);VictorTM2D1420型TRFIA儀(芬蘭Wallac Oy公司)。羊抗人IgE多克隆抗體(深圳菲鵬生物股份有限公司);鼠抗人IgE單克隆抗體(美國(guó)Advance公司);人IgE純品(英國(guó)Abcam公司);牛血清清蛋白(BSA)和Tween20(美國(guó)Sigma公司);Sepharose CL-6B凝膠(瑞典Pharmacia公司);96孔微孔板(深圳金燦華實(shí)業(yè)有限公司);銪(Eu3+)標(biāo)記試劑盒(芬蘭 Wallac Oy公司);帶有濾膜的離心管(美國(guó)Millipore公司);其余試劑為國(guó)產(chǎn)分析純?cè)噭蛔灾埔驭?萘甲酰三氟丙酮為主要成分的增強(qiáng)液;自制含0.4%(V/V)的 Tween20為主要成分的 pH 7.8 200 mmol/L Tris-HCl溶液為濃縮洗滌液;自制含10%(V/V)的小牛血清和0.01g/L乙二胺四乙酸二鈉為主要成分的pH 7.8 50mmol/L的Tris-HCl溶液為實(shí)驗(yàn)緩沖液;自制含50g/L BSA的50mmol/L、pH 7.8的Tris-HCl緩沖液為校準(zhǔn)品稀釋液或樣本稀釋液。300mg/mL的IgA、IgG、IgM,160g/L的清蛋白,1 000IU/mL的甲胎蛋白,800IU/mL的類風(fēng)濕因子,低、中、高3個(gè)濃度的質(zhì)量控制品(廣州市豐華生物工程有限公司);IgE國(guó)際標(biāo)準(zhǔn)品(WHO 2ndIRP75/502;5 000IU/安培)(英國(guó)NIBSC);TIgE檢測(cè)ELISA試劑盒(德國(guó)歐蒙醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)診斷股份公司)。
1.3 方法
1.3.1 校準(zhǔn)品的制備 以 WHO 2ndIRP 75/502為對(duì)照,人IgE純品用含50g/L BSA的50mmol/L、pH 7.8的 Tris-HCl緩沖液定量稀釋成0.0、2.4、12.0、60.0、300.0、1 500.0IU/mL(分別用A~F表示)。
1.3.2 固相反應(yīng)板的制備和最適包被濃度的選擇 將羊抗人IgE多克隆抗體用50mmol/L、pH 9.6的碳酸鹽緩沖液稀釋成包被液(2.0、3.0、4.0、5.0、6.0μg/mL),在固相微孔板加入100μL抗體包被液,以上濃度各包被1塊,4℃冰箱孵育過(guò)夜,洗滌1次,再每孔中加入含10g/L BSA的50mmol/L、pH 7.2的磷酸鹽緩沖液(PBS)250μL,37℃恒溫箱孵育2h封閉,甩干后晾干,真空封膜,4℃冰箱保存?zhèn)溆?。采用方陣(棋盤)滴定法,在2.0~6.0μg/mL預(yù)包被的反應(yīng)板上,檢測(cè)校準(zhǔn)品A、校準(zhǔn)品F 2個(gè)濃度點(diǎn)的熒光值強(qiáng)度(CPs)。選取校準(zhǔn)品A本底熒光值(N)較低,且校準(zhǔn)品F的檢測(cè)熒光值(P)與N的比值(P/N)最大的包被濃度為最適包被濃度。確定最適包被濃度后按以上方法制備固相反應(yīng)板。
1.3.3 銪標(biāo)記物的制備和最佳稀釋度的選擇 將1mg的鼠抗人IgE單克隆抗體加入Millipore公司的帶有濾膜的離心管中,10 000r/min離心9~10min。再用標(biāo)記緩沖液(50mmol/L、pH 9.3的碳酸鹽緩沖液)重復(fù)洗滌3~5次。將收集到的200μL鼠抗人IgE單克隆抗體和1mg的銪標(biāo)記試劑充分混勻,4℃振蕩反應(yīng)(24±2)h。反應(yīng)液經(jīng)50mmol/L、pH 7.80 Tris-HCl緩沖液平衡的Sepharose CL-6B柱(1cm×30cm)層析,每管2.0mL,A280監(jiān)測(cè)收集第一洗脫峰。合并峰管,根據(jù)Eu3+標(biāo)記試劑盒說(shuō)明書所提供的公式計(jì)算標(biāo)記率和回收率。蛋白相對(duì)分子質(zhì)量為160 000的單克隆抗體的理想標(biāo)記Eu3+個(gè)數(shù)為6~10個(gè)/蛋白分子。將銪標(biāo)記物用實(shí)驗(yàn)緩沖液按體積比1∶500、1∶1 000、1∶1 500、1∶2 000稀釋,檢測(cè)校準(zhǔn)品 A、校準(zhǔn)品F 2個(gè)濃度點(diǎn)的CPs。選取N較低,且P/N最大的稀釋度為銪標(biāo)記物最佳稀釋度。
1.3.4 TIgE TRFIA方法學(xué)的建立 為了盡量避免 HOOK效應(yīng),選用雙抗體夾心二步法。檢測(cè)方法應(yīng)適用于普通實(shí)驗(yàn)室條件下,反應(yīng)宜選擇室溫20~25℃條件。第1步:在固相微孔反應(yīng)板中依次加入10μL的校準(zhǔn)品或樣本或質(zhì)量控制品,再每孔中加入100μL樣本稀釋液,在室溫條件下振蕩孵育(30、45、60、75min),洗板5次拍干。第2步:在每孔中加入100μL銪標(biāo)記物工作液,在室溫條件下振蕩孵育(30、45、60、75min),洗板5次拍干。然后在每孔中加入100μL增強(qiáng)液,在室溫條件下振蕩(1、2、3、4、5、10、30、40min),將反應(yīng)板放入 TRFIA 儀內(nèi)進(jìn)行熒光計(jì)數(shù)。選擇檢測(cè)校準(zhǔn)品A~F熒光值接近平衡的反應(yīng)時(shí)間作為最適反應(yīng)時(shí)間。
1.3.5 性能評(píng)價(jià) 參考文獻(xiàn)[3-4]對(duì)劑量-反應(yīng)曲線擬合模型進(jìn)行優(yōu)選。參考NCCLS的指南及有關(guān)文獻(xiàn)[5-14]對(duì)精密度、檢測(cè)低限、線性、準(zhǔn)確度(校準(zhǔn)品核對(duì)試驗(yàn)、回收試驗(yàn))、特異性(交叉反應(yīng)試驗(yàn)、干擾試驗(yàn))、參考值確認(rèn)、方法學(xué)比對(duì)等進(jìn)行評(píng)價(jià)。
1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 TRFIA測(cè)量所得熒光計(jì)數(shù)采用TRFIA儀上隨機(jī)配備的分析軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。其他統(tǒng)計(jì)數(shù)據(jù)采用SPSS13.0和Microsoft Excel軟件進(jìn)行分析。
2.1 銪標(biāo)記鼠抗人IgE抗體的鑒定 銪標(biāo)記鼠抗人IgE抗體A280監(jiān)測(cè)收集,收集銪標(biāo)記物峰(5~8管)。銪標(biāo)記鼠抗人IgE抗體的回收率為92.51%,表明分離純化后的抗體損失較少。以芬蘭Wallac Oy公司標(biāo)準(zhǔn)Eu3+為參考,銪標(biāo)記物峰的銪標(biāo)記鼠抗人IgE抗體中的Eu3+含量為6.06μmol/L,蛋白含量為0.72μmol/L,計(jì)算可得平均每個(gè)鼠抗人IgE抗體上連接了8.40個(gè)Eu3+,達(dá)到了理想的標(biāo)記率。
2.2 方法學(xué)的建立
2.2.1 最適包被濃度和銪標(biāo)記物最佳稀釋度 經(jīng)方陣(棋盤)滴定法,當(dāng)以4.0μg/mL包被反應(yīng)板和銪標(biāo)記物按1∶1 500稀釋時(shí),本底良好(<2 000)且校準(zhǔn)品F檢測(cè)熒光值的S/N值趨于最大,因此最適包被濃度為4.0μg/mL,銪標(biāo)記物最佳稀釋度為1∶1 500。
2.2.2 反應(yīng)動(dòng)力學(xué) 當(dāng)?shù)?、2步的反應(yīng)時(shí)間分別為60min和45min,檢測(cè)校準(zhǔn)品A~F的熒光值趨于“飽和”,曲線斜率趨于最大,表明反應(yīng)趨于完全。解離增強(qiáng)振蕩5min時(shí),校準(zhǔn)品A~F的熒光值已趨于平衡,表明Eu3+已從銪標(biāo)記物螯合物上充分解離下來(lái),與增強(qiáng)液成分形成了穩(wěn)定的復(fù)合物。
2.2.3 建立劑量-反應(yīng)曲線 按優(yōu)化的反應(yīng)條件進(jìn)行試驗(yàn)[3-4],劑量-反應(yīng)曲線擬合優(yōu)選Log_LogB雙對(duì)數(shù)數(shù)學(xué)模式及三樣條平滑(SPLINE)擬合時(shí)曲線平滑,擬合程度高,擬合后的曲線的r>0.990 0,典型的劑量-反應(yīng)曲線,見(jiàn)圖1。
圖1 TIgE TRFIA的劑量-反應(yīng)曲線
2.3 分析性能評(píng)價(jià)
2.3.1 精密度 參考 NCCLS EP5-A文件[5]評(píng)價(jià),低、中、高3個(gè)濃度的質(zhì)量控制品批內(nèi)和批間檢測(cè)的實(shí)測(cè)值分別為(4.03±0.07)IU/mL和(4.03±0.30)IU/mL,(90.57±1.44)IU/mL和(90.57±5.05)IU/mL,(319.55±5.33)IU/mL 和(319.55±16.70)IU/mL,批內(nèi)和批間的變異系數(shù)(CV)分別為1.68%和7.33%,1.59%和5.57%,1.67%和5.23%。
2.3.2 檢測(cè)低限 參考文獻(xiàn)[6]評(píng)價(jià),平行檢測(cè)校準(zhǔn)品A 20次的熒光值(±s)為1 309+156;95%CI(x±2s)為1 620,在劑量-反應(yīng)曲線上擬合得到的濃度值為0.25IU/mL,優(yōu)于歐蒙TIgE ELISA法試劑的檢測(cè)低限1IU/mL。
2.3.3 線性 參考 EP6-A 文件[7]評(píng)價(jià),該方法在1.47~1 510.00IU/mL范圍內(nèi),其線性回歸方程為Y=0.988 2X-0.068 8,r=0.999 3(tr=83.15,v=9,P<0.01),見(jiàn)圖2。本方法的線性上限高于歐蒙TIgE ELISA法試劑的線性上限500 IU/mL。
圖2 TIgE TRFIA的線性
2.3.4 校準(zhǔn)品核對(duì)試驗(yàn) 參考文獻(xiàn)[8-9]評(píng)價(jià),以國(guó)際標(biāo)準(zhǔn)品的稀釋溶液(2.4~1 500.0IU/mL)為對(duì)照,測(cè)定TIgE TRFIA各校準(zhǔn)品,以相對(duì)偏倚±10.00%為可接受范圍;TIgE TRFIA校準(zhǔn)品A~F的實(shí)測(cè)值與標(biāo)示值的相對(duì)偏倚在-5.57%~7.92%內(nèi)。
2.3.5 回收試驗(yàn) 將1份22IU/mL的常規(guī)檢測(cè)樣本分成3等份(各1mL),在其中2份中分別加入44IU/mL和110IU/mL的血清樣本0.1mL,制成加入濃度分別為4.0IU/mL和10.0IU/mL的2份待回收分析樣本,第3份中加入校準(zhǔn)品稀釋液0.1mL制成基礎(chǔ)樣本血清,回收率在90.00%~110.00%范圍內(nèi)為可接受。檢測(cè)基礎(chǔ)樣本和2份待回收分析樣本的實(shí)測(cè)濃度分別為19.41、24.21IU/mL和29.64IU/mL,2份待回收分析樣本的回收率分別為97.00%和106.75%,平均回收率為101.88%,比例系統(tǒng)誤差為1.88%。
圖3 血紅蛋白對(duì)樣本檢測(cè)結(jié)果的干擾程度
2.3.6 交叉反應(yīng) 參考文獻(xiàn)[9-10]評(píng)價(jià),檢測(cè)300mg/mL的IgA、IgG、IgM,160g/L的清蛋白,800IU/mL的類風(fēng)濕因子,1 000IU/mL的甲胎蛋白,其實(shí)測(cè)濃度值分別為0.075、0.120、0.120、0.105、0.125IU/mL和0.040IU/mL,均未高于檢測(cè)低限0.25IU/mL,表明對(duì)TIgE TRFIA檢測(cè)結(jié)果無(wú)明顯交叉反應(yīng)。
2.3.7 干擾試驗(yàn) 參考 NCCLS EP7-A2文件[11]評(píng)價(jià),分別選用低、中、高濃度的血清加入以下干擾物,干擾物質(zhì)溶液與血清分別按體積比1∶9混合,組成系列干擾物濃度,對(duì)照血清加入干擾物相同體積的純化水,采用干擾率為±10.00%作為系統(tǒng)干擾物最高限。樣本中含血紅蛋白(≤18.00g/L),膽紅素(≤818.0mol/L),三酰甘油(≤21.54mmol/L),乙二胺四乙酸鉀(≤2.20mg/mL),草酸鉀(≤2.00mg/mL),肝素(≤15.00U/mL),枸櫞酸鈉(≤21.80mmol/L),氟化鈉(≤1.00mg/mL)對(duì)檢測(cè)結(jié)果干擾率均在±10.00%以內(nèi),見(jiàn)圖3~10。
圖4 膽紅素對(duì)樣本檢測(cè)結(jié)果的干擾程度
圖5 三酰甘油對(duì)樣本檢測(cè)結(jié)果的干擾程度
圖6 乙二胺四乙酸二鉀對(duì)樣本檢測(cè)結(jié)果的干擾程度
圖7 草酸鉀對(duì)樣本檢測(cè)結(jié)果的干擾程度
2.3.8 HOOK效應(yīng) 將已知濃度的IgE純品稀釋成3.6~15 000.0IU/mL的系列濃度樣品,每稀釋濃度重復(fù)測(cè)定2次后取平均值。該方法檢測(cè)TIgE達(dá)15 000.0IU/mL時(shí)仍未見(jiàn)HOOK效應(yīng)。
2.3.9 參考值驗(yàn)證 歐蒙ELISA法試劑的參考值為100IU/mL(年齡大于16歲)。參考NCCLS C28-A2文件[12]及 WS/T 402-2012[13],對(duì)參考值進(jìn)行轉(zhuǎn)移接收驗(yàn)證,檢測(cè)20例健康成人樣本,僅有1例結(jié)果(114.96IU/mL)高于100IU/mL,其他19例樣本在29.81~92.91IU/mL間,檢測(cè)值在引用參考區(qū)間的參考個(gè)體數(shù)與總的參考個(gè)體數(shù)的比率為95%,可以直接引用100IU/mL作為TRFIA檢測(cè)成人樣本TIgE的參考值,但是健康人群TIgE水平易受環(huán)境、種族、遺傳、年齡、檢測(cè)方法及取樣標(biāo)準(zhǔn)等因素的影響,各實(shí)驗(yàn)室應(yīng)建立自己的參考值或參考值驗(yàn)證。
圖8 肝素對(duì)樣本檢測(cè)結(jié)果的干擾程度
圖9 枸櫞酸鈉對(duì)樣本檢測(cè)結(jié)果的干擾程度
圖10 氟化鈉對(duì)樣本檢測(cè)結(jié)果的干擾程度
2.3.10 方法學(xué)比對(duì) 參考NCCLS EP9-A2文件[14]進(jìn)行預(yù)期偏倚評(píng)估試驗(yàn)。參考美國(guó)CLIA′88規(guī)定的類似項(xiàng)目(IgG)的允許誤差(±25%)的1/2(即±12.50%),作為方法學(xué)可比性的臨床接受判斷標(biāo)準(zhǔn)。TIgE TRFIA與歐蒙ELISA平行檢測(cè)40份樣本(14.43~518.81IU/mL)結(jié)果的線性回歸方程為Y=1.005 6X-0.153 4,r=0.999 2(tr=153.99,v=38,P<0.01)。選用歐蒙TIgE ELISA說(shuō)明書上的各年齡階段的參考值作為給定值,TRFIA與歐蒙ELISA的測(cè)定結(jié)果的相對(duì)偏倚在-12.22%~0.48%內(nèi),均在可接受范圍(±12.50%)之內(nèi)。2種方法在80例過(guò)敏性疾病患者樣本中均檢出61例(76.25%)TIgE高于臨界值100IU/mL,2種方法檢測(cè)結(jié)果的一致性符合率為100%。
目前應(yīng)用于TIgE檢測(cè)的方法有免疫比濁法(ITM)、放射免疫法(RIA)、ELISA法、化學(xué)發(fā)光法(CLIA)、電化學(xué)發(fā)光法(ECLIA)、熒光免疫分析法(FIA)等。ITM是一類均相免疫測(cè)定法,但單純就靈敏度而言,RIA、ELISA及FIA法等均優(yōu)于ITM法。因RIA具有放射性污染的固有缺陷,其市場(chǎng)占有率逐年下降,Gosling[15]在《Clinical Chemistry》發(fā)表的文章統(tǒng)計(jì),國(guó)際上在免疫分析中采用同位素標(biāo)記所占的比例由1980年的60%下降為1989年的25%,非同位素標(biāo)記由1980年的不足40%上升為1989年的75%,近年來(lái)這個(gè)比例仍在變化。目前,臨床檢測(cè)TIgE常用的仍是ELISA法,但其靈敏度較低,線性范圍較窄,結(jié)果易受操作人員、實(shí)驗(yàn)條件等因素的影響。由于一般FIA法中的本底較高等問(wèn)題,傳統(tǒng)的FIA用于定量測(cè)定有一定困難。CLIA和ECLIA是目前的新型超微量免疫分析技術(shù),但是CLIA發(fā)光過(guò)程短、樣品不能重復(fù)檢測(cè)、本底高及易受環(huán)境物質(zhì)干擾。ECLIA盡管有一定優(yōu)勢(shì),但目前儀器和試劑均依賴進(jìn)口,且非開放系統(tǒng),造成試劑價(jià)格昂貴,儀器成本及維護(hù)費(fèi)用高。近年來(lái)引進(jìn)的熒光酶免疫法Pharmacia CAP變應(yīng)原體外檢測(cè)系統(tǒng),試劑價(jià)格昂貴,限制了其大量使用。
RIA、ELISA、傳統(tǒng)的FIA均沒(méi)有實(shí)現(xiàn)人們所期待的高靈敏度分析,因此科學(xué)家們努力尋求一種更可靠的標(biāo)記物,自1979年Soini等[16]合成了一種可用于標(biāo)記抗體的“Eu3+、β-二酮體和EDTA衍生物”的三元混合物作為熒光探針并提出TRFIA理論,他們預(yù)言TRFIA將發(fā)展為新一代以鑭系元素為示蹤物和時(shí)間分辨熒光測(cè)量相結(jié)合的非放射性微量免疫分析技術(shù)。TRFIA因鑭系元素的熒光壽命可達(dá)60~900s,甚至更長(zhǎng),比普通熒光高數(shù)個(gè)數(shù)量級(jí),在每個(gè)激發(fā)光脈沖過(guò)后,通過(guò)延時(shí),門寬選擇,并通過(guò)濾光,以達(dá)到消除來(lái)自樣品、試劑及其他的非特異熒光,從而提高靈敏度,又因鑭系元素的激發(fā)光和發(fā)射光之間有一個(gè)較大的stokes位移,這有利于排除其他非特異熒光的干擾,方法的特異性較高。TRFIA將抗原抗體反應(yīng)與熒光物質(zhì)發(fā)光和時(shí)間分辨技術(shù)三者相結(jié)合,其靈敏度可達(dá)10-18mol/L。與現(xiàn)在廣泛使用的 RIA、ELISA、FIA、CLIA和ECLIA相比,TRFIA克服了RIA放射性污染的不足、酶標(biāo)記物的不穩(wěn)定性和定量范圍窄的缺陷、化學(xué)發(fā)光僅能一次發(fā)光、一般熒光標(biāo)記受環(huán)境干擾的難點(diǎn)和電化學(xué)發(fā)光的非直接標(biāo)記等缺點(diǎn)。
本研究應(yīng)用Eu3+標(biāo)記建立的TIgE雙抗體夾心TRFIA,經(jīng)方法學(xué)評(píng)價(jià)具有以下優(yōu)點(diǎn):(1)重復(fù)性好;(2)靈敏度高;(3)線性范圍寬;(4)準(zhǔn)確度高;(5)特異性強(qiáng);(6)與歐蒙 ELISA 比對(duì)檢測(cè)試劑線性范圍內(nèi)的臨床樣本具有良好的相關(guān)性,2種方法檢測(cè)結(jié)果的一致性符合率為100.00%;在過(guò)敏性疾病患者中的TIgE的陽(yáng)性檢出率達(dá)76.25%。表明TIgE的檢測(cè)在過(guò)敏性疾病篩選試驗(yàn)中是一個(gè)重要參考指標(biāo),本研究建立的TIgE TRFIA能滿足臨床的需要。
[1] 李豐,曾華松.IgE介導(dǎo)的兒童過(guò)敏性疾病的診斷及治療[J].臨床兒科雜志,2013,31(1):97-98.
[2] Lee JH,Haselkorn T,Chipps BE,et al.Gender differences in IgE-mediated allergic asthma in the epidemiology and natural history of asthma:Outcomes and Treatment Regimens(TENOR)study[J].J Asthma,2006,43(3):179-184.
[3] 樂(lè)愛(ài)平,胡國(guó)信,李太原,等.血清乙型肝炎病毒大蛋白濃度標(biāo)準(zhǔn)曲線的擬合與優(yōu)選[J].檢驗(yàn)醫(yī)學(xué),2009,24(6):463-465.
[4] 胡鎮(zhèn)球,夏宗勤.免疫放射分析劑量效應(yīng)曲線的質(zhì)量作用模型及其擬合[J].中華核醫(yī)學(xué)雜志,1992,12(4):226-228.
[5] National Committee for Clinical Laboratory Standards.EP5-A Evaluation of precision performance of clinical chemistry devices,approved guideline[S].Wayne,PA:NCCLS,1999.
[6] 馮仁豐.分析靈敏度 (檢測(cè)限)[J].上海醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)雜志,2002,17(3):133-136.
[7] National Committee for Clinical Laboratory Standards.EP6-A Evaluation of the Linearity of Quantitative measurement Procedures:A Statistical Approach,Proposed Guideline[S].Wayne,PA:NCCLS,2003.
[8] 國(guó)家食品藥品監(jiān)督管理局.YY/T 1175-2010中華人民共和國(guó)醫(yī)藥行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)——腫瘤標(biāo)志物定量測(cè)定試劑(盒)(化學(xué)發(fā)光免疫分析法)[S].北京:中國(guó)標(biāo)準(zhǔn)出版社,2012.
[9] 徐偉文.體外診斷試劑研制常用技術(shù)指標(biāo)之分析性能評(píng)估[J].分子診斷與治療雜志,2010,2(2):140-144.
[10] 董勁春.過(guò)敏原特異性IgE抗體檢測(cè)試劑盒的臨床研究指南[J].標(biāo)記免疫分析與臨床,2011,18(3):213-216.
[11] National Committee for Clinical Laboratory Standards.EP7-A2Interference testing in clinical chemisty,approved guideline-second edition[S].2nd.Wayne,PA:NCCLS,2005.
[12] National Committee for Clinical Laboratory Standards.C28-A How to Define and Determine Reference Intervals in The Clinical Laboratory,Approved Guideline [S].Wayne,PA:NCCLS,2000.
[13] 中華人民共和國(guó)衛(wèi)生部.WS/T 402-2012中華人民共和國(guó)衛(wèi)生行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)——臨床實(shí)驗(yàn)室檢驗(yàn)項(xiàng)目參考區(qū)間的制定[S].北京:中國(guó)標(biāo)準(zhǔn)出版社,2013.
[14] National Committee for Clinical Laboratory Standards.EP9-A2Method comparison and bias estimation using patient samples,approved guideline[S].2nd.Wayne,PA:NCCLS,2002.
[15] Gosling JP.A decade of development in immunoassay methodology[J].Clin Chem,1990,36(8):1408-1427.
[16] Soini E,Hemmil?I.Fluoroimmunoassay:present status and key problems[J].Clin Chem,1979,25(3):353-361.