天竺葵花色苷的穩(wěn)定性及其在壓花保色中的應(yīng)用1)

劉曉東 閆 穎 高東菊

(東北林業(yè)大學(xué)，哈爾濱，150040) (上海農(nóng)林職業(yè)技術(shù)學(xué)院)

壓花(平面干燥花)是利用物理和化學(xué)處理方法，將植物的花、莖、葉、果實(shí)等壓制成保持自然形態(tài)和顏色(或增加顏色)的平面花材的過(guò)程。將壓制好的平面花材，經(jīng)設(shè)計(jì)構(gòu)思粘貼在各襯物上制成精美的藝術(shù)品，就是壓花藝術(shù)。隨著社會(huì)的發(fā)展，人們?cè)絹?lái)越崇尚自然，因此，干燥花的自然姿色更受人們的青睞，回歸自然、走向自然是人們的生活目標(biāo)，干燥花保持原有顏色不變，作為室內(nèi)裝飾已經(jīng)成為了一種消費(fèi)趨勢(shì)［1－2］。壓花飾品的色彩，主要依靠植物體內(nèi)的天然色素，而它們的穩(wěn)定性差，極易受到外界不利條件如氧氣、紫外線、潮濕等的破壞，使壓花飾品的壽命受到很大的影響［3］。目前，國(guó)內(nèi)關(guān)于壓花保色的研究也開(kāi)始逐漸增多，如月季、珍珠梅花材的研究就已經(jīng)取得很大的進(jìn)步［4－6］，非洲菊也有了很大進(jìn)展［7］，但由于檢測(cè)方法的限制，還有很多機(jī)理尚不清楚。

天竺葵(Pelargonium hortorum)為牻牛兒苗科天竺葵屬植物，多年生草本花卉，原產(chǎn)南非，世界各地均有栽培。其花色艷麗、花期長(zhǎng)、產(chǎn)花量大、適應(yīng)性強(qiáng)，具有較高的觀賞價(jià)值。天竺葵花中含有大量花色苷，是一種重要的天然色素資源?；ㄉ帐且环N水溶性的色素，是花青素與糖通過(guò)糖苷鍵結(jié)合而形成的一類(lèi)化合物［8］，具有很強(qiáng)的著色能力，但其穩(wěn)定性較差，是壓花保色研究的主要對(duì)象。

由于天竺葵的花型美麗、色澤艷麗是壓花畫(huà)用材的適宜花材，研究以天竺葵花為試驗(yàn)材料，對(duì)其花色苷的穩(wěn)定性進(jìn)行初步研究，為天竺葵干燥花瓣資源在平面壓花應(yīng)用中保持其花色穩(wěn)定性的研究提供科學(xué)依據(jù)。

1 材料與方法

天竺葵供試品種為特出系列紫羅蘭，于2012年4月份購(gòu)于哈爾濱花卉市場(chǎng)，于2012年5月—2013年4月份進(jìn)行相關(guān)試驗(yàn)。選擇第1 d 盛開(kāi)的天竺葵花朵為供試材料，隨采隨做。所用化學(xué)試劑均為分析純。

天竺葵花色苷吸收光譜的測(cè)定:取一定量的天竺葵花色苷提取液，用VARIAN Cary 100 UV－VIS紫外—可見(jiàn)分光光度計(jì)在波長(zhǎng)200 ～800 nm 掃描獲得其吸收光譜。

不同溫度、作用時(shí)間對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響:天竺葵花色苷提取液分別置于溫度30 ～90 ℃水浴鍋中密閉條件下加熱，對(duì)照組置于室溫23 ℃，分別于30、60 min 取樣，用紫外—可見(jiàn)分光光度計(jì)測(cè)定其最大吸收波長(zhǎng)(A530)處的吸光度值，重復(fù)3次，求平均值。

不同光照對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響:天竺葵花色苷提取液于室溫23 ℃，室內(nèi)自然光照，日均光照強(qiáng)度250 lx;40 W 紫外燈照射，光源置于高40 cm 上方;室內(nèi)黑暗條件;組培室內(nèi)晝夜連續(xù)1 個(gè)燈管光照(光照強(qiáng)度1 770 lx)、組培室內(nèi)晝夜連續(xù)2 個(gè)燈管光照(光照強(qiáng)度2 420 lx)、組培室內(nèi)晝夜連續(xù)3個(gè)燈管光照(光照強(qiáng)度3 520 lx)條件下進(jìn)行穩(wěn)定性的研究，試驗(yàn)處理后，將提取液分別于特定時(shí)間取樣用紫外—可見(jiàn)分光光度計(jì)測(cè)定其最大吸收波長(zhǎng)(A530)處的吸光度值，重復(fù)3 次，求平均值，計(jì)算其保存率。保存率=(A1/A0)×100%(式中:A1表示加入添加劑后的吸光度值;A0表示色素原液的吸光度值)。

不同pH 值對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響:以0.3 mol·L－1HCl—乙醇溶液為天竺葵花色苷提取液，其pH 值小于1。用其提取液及2 mol·L－1的NaOH 溶液配置1 ～12 不同pH 值的天竺葵花色苷溶液，比較其顏色變化。再將pH 值為1 ～4 的花色苷溶液各配三等份，分別放置在室內(nèi)23 ℃自然條件下，水浴鍋30、40 ℃中，分別于特定時(shí)間取樣用紫外—可見(jiàn)分光光度計(jì)測(cè)定其最大吸收波長(zhǎng)(A530)處的吸光值，重復(fù)3 次，求平均值，計(jì)算其保存率。

不同金屬離子Na+、K+、Zn2+、Ca2+對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響:將天竺葵花色苷提取液分別與不同濃度的金屬離子(Na+、K+、Zn2+、Ca2+)以體積比1∶ 1 的比例配成溶液，放置在23 ℃室內(nèi)自然條件下，分別于特定時(shí)間取樣用紫外—可見(jiàn)分光光度計(jì)測(cè)定其最大吸收波長(zhǎng)(A530)處的吸光值，重復(fù)3 次，求平均值。

蔗糖、葡萄糖、蘋(píng)果酸、檸檬酸處理對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響:將天竺葵花色苷提取液分別與不同質(zhì)量分?jǐn)?shù)糖或有機(jī)酸以體積比1∶ 1 的比例配成溶液，放置在室內(nèi)23 ℃自然環(huán)境下，分別于特定時(shí)間取樣用紫外—可見(jiàn)分光光度計(jì)測(cè)定其最大吸收波長(zhǎng)(A530)處的吸光值，重復(fù)3 次，求平均值，計(jì)算其保存率。

根據(jù)前期試驗(yàn)結(jié)果，將天竺葵花色苷提取液與組合優(yōu)化保色劑配方分別以體積比1∶ 1 的比例配成溶液，放置在室內(nèi)23 ℃自然條件下，分別于特定時(shí)間取樣，用紫外—可見(jiàn)分光光度計(jì)測(cè)定其最大吸收波長(zhǎng)(A530)處的吸光值，重復(fù)3 次，求平均值，計(jì)算其保存率。

取4 等份新鮮天竺葵花瓣，每份花瓣30 瓣，顏色及形狀大小相同，花瓣直徑1.5 cm。分別浸沒(méi)于30 mL 最優(yōu)保色劑中0.5、1、1.5、2 h，取出，吸水紙上放24 h 后微波壓花，與新鮮花瓣對(duì)比并記錄顏色，選出最佳浸泡時(shí)間。再將最佳保色后的壓花分成5 份(確保每份花瓣數(shù)大于3)分別放于溫度均為23 ℃的室內(nèi)自然光照(日均光照強(qiáng)度250 lx)、室內(nèi)黑暗條件、組培室內(nèi)晝夜連續(xù)1 個(gè)燈管光照(光照強(qiáng)度1 770 lx)、組培室內(nèi)晝夜連續(xù)2 個(gè)燈管光照(光照強(qiáng)度2 420 lx)和組培室內(nèi)晝夜連續(xù)3 個(gè)燈管光照(光照強(qiáng)度3 520 lx)下處理1 個(gè)月，觀察并記錄花瓣顏色變化。

2 結(jié)果與分析

2.1 天竺葵花色苷提取液紫外—可見(jiàn)光光譜特征

天竺葵花色苷提取液的紫外—可見(jiàn)光光譜如圖1所示，圖1顯示，在可見(jiàn)光區(qū)530 nm 處有明顯的吸收峰，故在穩(wěn)定性試驗(yàn)中采用530 nm 處波長(zhǎng)吸光值作為參考值。

圖1 天竺葵花色苷提取液的紫外—可見(jiàn)光光譜

圖2為花色苷母核結(jié)構(gòu)［9］，是2－苯基苯并吡喃陽(yáng)離子，屬于類(lèi)黃酮化合物［9］。B－環(huán)的R1和R2基團(tuán)主要是—H、—OH 和—OCH3取代基不同決定著花色素的種類(lèi)和顏色?；ㄉ战Y(jié)構(gòu)上的基團(tuán)可與多種結(jié)構(gòu)反應(yīng)，改變?cè)ㄉ盏慕Y(jié)構(gòu)類(lèi)型，從而改變其穩(wěn)定性。

圖2 花色苷母核結(jié)構(gòu)

2.2 不同光、溫度、pH 值、金屬離子、糖和有機(jī)酸因子處理對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響

2.2.1 不同溫度、作用時(shí)間對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響

將等量初始吸光度值為0.769 5 的天竺葵花色苷提取液分別置于水浴鍋中30、40、50、60、70、80、90 ℃密閉條件下加熱，對(duì)照組置于室溫23 ℃，分別于30、60 min 取樣測(cè)定其吸光度值(表1)，從表1中可以看出，在30 min 短時(shí)間內(nèi)，隨溫度的增加，吸光度值先增大后減小，且70 ℃時(shí)吸光度值升到最高;當(dāng)持續(xù)加熱60 min 時(shí)，隨溫度的增加吸光度值依次減小，且60 ℃前吸光度值減小緩慢，60 ℃后減小幅度增大。這說(shuō)明天竺葵花色苷的穩(wěn)定性與作用時(shí)間和溫度有關(guān)。在30 min 短時(shí)間內(nèi)，溫度低于70 ℃時(shí)對(duì)天竺葵花色苷有一定的增色效果，70 ℃以前吸光度值隨溫度上升而增大，70 ℃時(shí)最大為0.790 1，80、90 ℃時(shí)吸光度值分別下降為0.766 3、0.761 7，均小于室溫組。當(dāng)時(shí)間達(dá)到60 min，溫度達(dá)到60 ℃時(shí)，時(shí)間越長(zhǎng)、溫度越高天竺葵花色苷分解越迅速。Laleh et al.［10］推測(cè)，花色苷對(duì)溫度的不穩(wěn)定性可能是由高溫下C3位上的糖基丟失引起的，糖基對(duì)于花色苷穩(wěn)定性具有重要的作用，穩(wěn)定性一般會(huì)隨著糖基化程度的增加而增加。在以后的壓花保色環(huán)節(jié)中可以利用其具有一定的耐熱性這一特性，使天竺葵花材在短時(shí)間的加熱條件下與保色劑發(fā)生很好的化學(xué)反應(yīng)，以達(dá)到較好的保色效果。

表1 不同溫度、作用時(shí)間對(duì)天竺葵花色苷吸光度值的影響

2.2.2 不同光照對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響

光照對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響如表2所示，除紫外光照射在8 h 時(shí)吸光度值有一定程度的增大外，其他情況均隨著光照時(shí)間的延長(zhǎng)，吸光度值越來(lái)越小，保存率越來(lái)越低。室內(nèi)黑暗條件下的保存率最高，第7 d 時(shí)還為95.73%，比室內(nèi)自然光照保存率86.23%高9.50%，其次，紫外光照射保存率為89.84%，比室內(nèi)自然光照保存率高3.61%，3 個(gè)燈管照射保存率最低，僅0.46%，褪色最快。且光照強(qiáng)度(不同個(gè)數(shù)燈管照射)與天竺葵花色苷的降解速率之間無(wú)線性關(guān)系。由此可見(jiàn)，光照是導(dǎo)致天竺葵花色苷降解的一個(gè)很重要原因。據(jù)分析，光照引起花色苷降解的途徑可能為:花色苷首先降解生成C4羥基的中間產(chǎn)物，此中間產(chǎn)物在C2位上水解開(kāi)環(huán)，最后生成查爾酮，查爾酮又快速降解成苯甲酸及2，4，6－三羥基苯甲醛等產(chǎn)物［11］。在今后的壓花保色中，要達(dá)到預(yù)期保色效果必須解決這一難題。而紫外燈照射對(duì)天竺葵花色苷有一定增色作用的機(jī)理還需進(jìn)一步研究。

表2 不同光照對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響

2.2.3 不同pH 值對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響

2.2.3.1 不同pH 值下天竺葵花色苷顏色比較

將溶液調(diào)成固定pH 值，30 min 后測(cè)定其吸光度值，并記錄顏色，結(jié)果見(jiàn)表3。

在溶液介質(zhì)中，花色苷隨pH 值的變化而發(fā)生結(jié)構(gòu)上的轉(zhuǎn)換，這幾種結(jié)構(gòu)分別為:Ionized quinonoidal anhydrobase(藍(lán)色)、Neutral quinonoidal anhydrobase(紫色或淺紫色)、Flavylium cation(紅色)、Carbinol pseudobase(無(wú)色)及Chalcone pseudobase(無(wú)色)［13］。從表3中可知，天竺葵花色苷隨酸性的降低顏色變淺，在pH 值為5 ～7 時(shí)，幾乎無(wú)色。隨著堿性的增加，顏色逐漸由墨綠加深，pH 值為12 時(shí)，變?yōu)辄S綠。可見(jiàn)，在較低的pH 值時(shí)(pH 值＜2)，據(jù)花色苷存在形式推測(cè)天竺葵花色苷主要以紅色的花色烊陽(yáng)離子形式存在;當(dāng)pH 值為3 ～7 時(shí)，主要以無(wú)色的甲醇假堿和查酮假堿的形式存在，當(dāng)pH 值繼續(xù)上升時(shí)，以藍(lán)色離子化的醌式堿存在形式越來(lái)越多。

表3 經(jīng)不同pH 值處理的天竺葵花色苷色彩差異

2.2.3.2 不同pH 值處理對(duì)天竺葵花色苷保存率的影響

分別在室溫23，30、40 ℃下測(cè)定pH 值為1、2、3、4 時(shí)不同時(shí)間天竺葵花色苷的A530值，并計(jì)算保存率，結(jié)果如表4所示。天竺葵花色苷在不同溫度、不同時(shí)間、不同pH 值條件下，降解速度有差異:同一pH 值不同溫度條件下，隨溫度的升高保存率降低，但不存在線性關(guān)系，且隨溫度的升高降解速率加快。同一溫度不同pH 值條件下，隨pH 值的增加保存率減少，降解速率加快。

圖3是室溫(約23 ℃)條件下不同pH 值對(duì)保存率的影響。由圖3可發(fā)現(xiàn)，天竺葵花色苷在pH 值小于1(ck)時(shí)，保存率下降速度開(kāi)始平緩，以后速率加大。其他不同pH 值的保存率均在前8 h 下降迅速，以后趨于平緩。再據(jù)表4中23 ℃室溫條件下1 個(gè)月后各pH 值的保存率可看出，pH 值為1 時(shí)，天竺葵花色苷降解速度最慢，保存時(shí)間最長(zhǎng)。因此，在以后的保色劑配方優(yōu)化中要充分利用天竺葵花色苷這一特性，以便選出最優(yōu)保色劑，達(dá)到最好的保色效果。

表4 不同pH 值、作用時(shí)間處理對(duì)天竺葵花色苷在A530下吸光度、保存率的影響

2.2.4 不同金屬離子Na+、K+、Zn2+、Ca2+對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響

金屬離子對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響結(jié)果如表5所示，不同金屬離子對(duì)天竺葵花色苷溶液在A530下的影響各不相同。由表5可以看出，剛加入鈉離子后，各吸光度值除0.050 mol·L－1濃度略低于對(duì)照外，其他各濃度的均有增加，以后又不同程度地降低，只有0.500 mol·L－1鈉離子在所測(cè)定的時(shí)間內(nèi)所測(cè)吸光度值始終高于對(duì)照，其余最后與對(duì)照幾乎無(wú)差異。說(shuō)明低濃度鈉離子對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性基本無(wú)影響。不同濃度的鉀離子均使天竺葵花色苷溶液的吸光度值降低，且0.100 mol·L－1鉀離子對(duì)其影響最大，說(shuō)明鉀離子對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性起破壞作用。加入鋅離子后前48 h，各濃度的吸光度值均小于對(duì)照，當(dāng)72 h 時(shí)0.300、0.400、0.500 mol·L－1鋅離子吸光度值高于對(duì)照，說(shuō)明鋅離子對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響隨時(shí)間和濃度的不同而有很大變化。與對(duì)照相比，不同濃度的鈣離子均使天竺葵花色苷溶液的吸光度值增加，且0.300 mol·L－1鈣離子吸光度值增加最明顯。說(shuō)明鈣離子對(duì)天竺葵花色苷有增色作用。鈣離子的這一特性可以應(yīng)用到以后天竺葵花材的保色中，以期達(dá)到更好的保色效果。

圖3 室溫(約23 ℃)條件下不同pH 值對(duì)保存率的影響

2.2.5 蔗糖、葡萄糖、蘋(píng)果酸、檸檬酸處理對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響

由表6可以看出，隨時(shí)間的推移(4 h 以后)，各質(zhì)量分?jǐn)?shù)的蔗糖均可以明顯地增加天竺葵花色苷的吸光度值，且當(dāng)時(shí)間長(zhǎng)達(dá)7 d 時(shí)，質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%的效果最明顯，天竺葵花色苷的保存率最高達(dá)99.50%，質(zhì)量分?jǐn)?shù)為7%的次之，保存率為99.12%，分別高出對(duì)照12.71%和12.33%，說(shuō)明蔗糖對(duì)天竺葵花色苷有很好的增色作用。葡萄糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%時(shí)吸光度值與對(duì)照最接近，第7 d 時(shí)保存率僅比對(duì)照低0.19%，但隨著葡萄糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)的增加吸光度值減小，說(shuō)明葡萄糖對(duì)天竺葵花色苷的穩(wěn)定性有破壞作用。在所測(cè)時(shí)間內(nèi)，所有加入檸檬酸的天竺葵花色苷保存率均比對(duì)照高，質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%時(shí)效果最明顯，第7 d 時(shí)天竺葵花色苷的保存率最高，達(dá)93.17%，質(zhì)量分?jǐn)?shù)為12% 時(shí)的次之，保存率為93.15%，分別高出對(duì)照6.38%和6.36%，說(shuō)明檸檬酸能提高天竺葵花色苷的穩(wěn)定性。低濃度的蘋(píng)果酸(質(zhì)量分?jǐn)?shù)1% ～5%)對(duì)天竺葵花色苷的穩(wěn)定性有破壞作用，高濃度(質(zhì)量分?jǐn)?shù)7% ～12%)有保護(hù)作用，應(yīng)用中要注意質(zhì)量分?jǐn)?shù)的控制。

在試驗(yàn)的糖和有機(jī)酸中通過(guò)測(cè)定結(jié)果可以得出，蔗糖和檸檬酸是應(yīng)用到天竺葵花材保色中的最適合保色劑。

表5 不同濃度金屬離子、作用時(shí)間處理對(duì)天竺葵花色苷在A530下吸光度的影響

2.3 天竺葵花瓣干燥保色劑優(yōu)化配方的選擇

根據(jù)前期的單因子試驗(yàn)，分別從糖、酸和金屬離子中選出最佳試劑，然后將不同濃度組合調(diào)到最佳pH 值(pH=1)得到表7結(jié)果。由表7可知，在試驗(yàn)時(shí)間內(nèi)，經(jīng)組合后的保色劑均有很明顯的保色效果，在試驗(yàn)中各組合吸光度值均先在短時(shí)間內(nèi)增大，再隨時(shí)間的延長(zhǎng)逐漸減小。其中最好的組合為5%蔗糖+7%檸檬酸+0.01 mol·L－1Ca2+，在試驗(yàn)中6個(gè)月后保存率仍為87.20%，在天竺葵花材保色中有很好應(yīng)用前景。值得一提的是，單因子試驗(yàn)中的最佳試劑濃度，組合后效果并不是最好，反應(yīng)機(jī)理有待進(jìn)一步研究。

表6 不同質(zhì)量分?jǐn)?shù)蔗糖、葡萄糖、蘋(píng)果酸、檸檬酸處理對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響

表7 不同質(zhì)量分?jǐn)?shù)蔗糖與檸檬酸添加0.01 mol·L －1Ca2+保色劑配方對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響

2.4 最優(yōu)保色劑配方在壓花保色中的應(yīng)用

取4 等份新鮮天竺葵花瓣，每份花瓣30 瓣，顏色及形狀大小相同，花瓣直徑1.5 cm。分別浸沒(méi)于30 mL 最優(yōu)保色劑中0.5、1、1.5、2 h 取出，吸水紙上放24 h 后微波壓花，其色彩經(jīng)比色卡對(duì)比分別為M100B10、M100B10、M100、M90，新鮮天竺葵花瓣的顏色為M100。結(jié)果表明:浸泡時(shí)間為1.5 h 時(shí)保色效果最佳。分析其原因，可能與短時(shí)間(0.5、1 h)內(nèi)花瓣對(duì)保色劑的吸收不充分、不能形成穩(wěn)定的絡(luò)合物有相關(guān)性。時(shí)間太長(zhǎng)(2 h)時(shí)保色劑改變了花瓣細(xì)胞膜的透性，使部分花色苷滲出，減淡了天竺葵花瓣原有的色澤。

表8是對(duì)保色后天竺葵壓花進(jìn)行不同光照處理試驗(yàn)后的結(jié)果。由表8可以看出未經(jīng)保色的天竺葵壓花變色嚴(yán)重，而經(jīng)過(guò)保色的天竺葵壓花基本沒(méi)有改變顏色，說(shuō)明保色劑起到了很好的保色效果，可以在以后的天竺葵壓花中進(jìn)行應(yīng)用。

表8 天竺葵平面壓花花材在不同光照條件下的色彩差異

3 結(jié)束語(yǔ)

天竺葵花材豐富，其花色苷水溶性、醇溶性好，易提取，醇酸水溶液中的λmax=530 nm。該花色苷具有一定的耐熱性，耐光性較差，其中高溫可導(dǎo)致天竺葵花色苷分子的幾何異構(gòu)化，光對(duì)花色苷影響較為復(fù)雜，有待進(jìn)一步研究;不同的pH 值下天竺葵花色苷會(huì)呈現(xiàn)不同的顏色，酸性條件下隨酸性的降低顏色變淺至無(wú)色，隨著堿性的增大，顏色由墨綠加深，最后變?yōu)辄S綠色(pH 值=12)。不同的pH 值對(duì)天竺葵花色苷的保存率構(gòu)成很大影響。在以后的保色試驗(yàn)中應(yīng)注意消除以上因素對(duì)天竺葵花色苷穩(wěn)定性的影響。

在試驗(yàn)濃度、時(shí)間范圍內(nèi)，鈉離子、鉀離子對(duì)天竺葵花色苷影響不明顯;鋅離子隨濃度和時(shí)間的增加有一定增色作用;鈣離子增色效果明顯;葡萄糖對(duì)天竺葵花色苷的穩(wěn)定性有破壞作用;蔗糖、檸檬酸有顯著的增色作用;低濃度(質(zhì)量分?jǐn)?shù)1% ～5%)的蘋(píng)果酸有破壞作用，高濃度(質(zhì)量分?jǐn)?shù)7% ～12%)的有增色作用。

通過(guò)保色劑配方的優(yōu)化選出最好的保色組合:pH 值為1 時(shí)，5%蔗糖+7%檸檬酸+0.01 mol·L－1Ca2+。經(jīng)破壞性試驗(yàn)表明，其可以應(yīng)用于天竺葵花材保色中，以延長(zhǎng)壓花藝術(shù)品中花色的保存時(shí)間，提高壓花畫(huà)的觀賞效果。

［1］ 徐玉安.押花畫(huà)的制作［J］.花卉園藝，2006(5):16－19.

［2］ 趙國(guó)防，宗晶瑩.試論壓花藝術(shù)及發(fā)展前景［J］.天津農(nóng)林科技，2002，5:21－23.

［3］ 洪波.干燥花制作工藝與應(yīng)用［M］.北京:中國(guó)林業(yè)出版社，2009:58－60.

［4］ 洪波，劉香環(huán).紅色月季花瓣平面干燥技術(shù)與機(jī)理研究［J］.園藝學(xué)報(bào)，2002，29(6):561－565.

［5］ 蘭偉，蔡建，胡慶菊.玫瑰花瓣干燥保色技術(shù)與機(jī)理研究［J］.安徽農(nóng)學(xué)通報(bào)，2007，12(4):71－72.

［6］ 劉嶧，劉占海，劉慧芹，等.珍珠梅壓花花材染色與保色效果的研究［J］.北方園藝，2011(12):145－147.

［7］ 劉曉東，李鵬.非洲菊黃色素穩(wěn)定性［J］.東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)，2012，40(5):67－70.

［8］ 龐志申.花色苷研究概況［J］.北京農(nóng)業(yè)科學(xué)，2000，18(5):37－42.

［9］ 孫建霞，張燕，胡小松，等.花色苷的結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性與降解機(jī)制研究進(jìn)展［J］.中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)，2009，42(3):996－1008.

［10］ Laleh G H，F(xiàn)rydoonfar H，Heidary R，et al.The effect of light，temperature，pH and species on stability of anthocyanins pigments in four Berberis species［J］.Pakistan Journal of Nutrition，2006，5(1):90－92.

［11］ 陳健初.楊梅汁花色苷穩(wěn)定性、澄清技術(shù)及抗氧化特性研究［D］.杭州:浙江大學(xué)，2005.

［12］ 姚根發(fā)，張洪德.四色配色手冊(cè)［M］.上海:上海科學(xué)技術(shù)文獻(xiàn)出版社，2001:1－57.

［13］ Brouillard R.Flavonoids and flower color［C］//Harborne J B.The flavonoids:advances in research since 1980.London:Chapman ＆ Hall，1988:525－538.