徐其嶺,閆 莉
(1.鄭州人民醫(yī)院神經(jīng)外科,鄭州450000;2.河南省人民醫(yī)院CT室,鄭州450000)
顱腦損傷(traumatic brain injury,TBI)是對(duì)腦組織的一種物理性損傷,可引起暫時(shí)性或永久性腦功能損傷,繼發(fā)性的腦損傷被認(rèn)為是患者病情加重的重要因素[1]。盡管一系列的醫(yī)療干預(yù)措施如采用高壓氧治療、亞低溫以及早期康復(fù)治療在很大程度上能降低顱腦損傷的病死率,改善預(yù)后,提高生存質(zhì)量。但目前仍然沒(méi)有行之有效的治療TBI的神經(jīng)保護(hù)藥物[2]。研究表明TBI后,壞死神經(jīng)組織產(chǎn)生的炎性反應(yīng),如氧化應(yīng)激產(chǎn)生的大量活性氧自由基對(duì)腦組織具有損害作用,并在繼發(fā)性腦組織損傷和功能恢復(fù)中發(fā)揮重要作用。富氫生理鹽水(HS)是一種優(yōu)質(zhì)的選擇性抗氧化劑,其在臨床醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)中的研究主要集中于對(duì)缺血再灌注引起的肺臟、腸及腦損傷的保護(hù)作用。目前關(guān)于HS對(duì)重度顱腦損傷(severe trau matic brain injury,STBI)引起的機(jī)體氧化應(yīng)激損傷的影響作用尚不明了,本研究通過(guò)建立STBI大鼠模型,給予HS治療,檢測(cè)大鼠血漿中丙二醛(MDA)水平、超氧化物歧化酶(SOD)和谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(GSH-PX)活性,探討HS對(duì)TBI大鼠機(jī)體氧化應(yīng)激水平的影響作用。
1.1 動(dòng)物選擇 健康的雄性Wistar大鼠60只,體質(zhì)量250~300 g,由河南省動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心提供。所有實(shí)驗(yàn)動(dòng)物給予國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)嚙齒類動(dòng)物飼料喂養(yǎng),自由飲食飲水,動(dòng)物均在相同條件下進(jìn)行飼養(yǎng)。
1.2 大鼠STBI模型的建立 根據(jù)參考文獻(xiàn)資料,采用控制性皮質(zhì)撞擊損傷進(jìn)行大鼠STBI模型的建立[3-4]。將大鼠用40 mg/kg戊巴比妥鈉麻醉后固定于立體定向儀上。用硫化物脫毛劑除去大鼠頭頂部被毛,頂部皮膚用碘伏消毒后切開(kāi),分離暴露顱骨。采用高速鉆機(jī)行6 mm顱骨切除術(shù)。致傷點(diǎn)選擇介于人字縫和前囪縫合線的右側(cè)感覺(jué)運(yùn)動(dòng)皮質(zhì),用帶有尖端直徑5 mm的氣動(dòng)活塞撞擊器裝置以4.0 m/s的速度撞擊腦部達(dá)到3.0 mm深度,并置于腦部120 min建立STBI模型。手術(shù)后,用骨蠟進(jìn)行密封并縫合皮膚。假手術(shù)組僅進(jìn)行顱骨開(kāi)窗,不做打擊致傷。
1.3 HS的制備 HS的制備參考文獻(xiàn)[5-6]進(jìn)行。將袋裝250 mL醫(yī)用生理鹽水抽出50 mL,加入50 mL純凈的氫氣(購(gòu)自上?;繕?biāo)準(zhǔn)氣體有限公司,純度為100%)并充分混合。將含氫的生理鹽水置于0.4 MPa壓力下穩(wěn)壓12~24 h,達(dá)到飽和狀態(tài),制備HS,使氫氣濃度保持在0.6 mmol/L左右,經(jīng)r輻射消毒滅菌后裝于鋁袋中常壓4℃保存。HS的濃度采用氣相色譜法進(jìn)行檢測(cè)[7]。HS需要每周新鮮配制保證氫的濃度不低于0.6 mmol/L。
1.4 動(dòng)物分組及實(shí)驗(yàn)方案 將60只大鼠隨機(jī)分為假手術(shù)組、STBI+生理鹽水(NS)組和STBI+HS組,每組20只。STBI+NS組在STBI手術(shù)后5 min內(nèi)經(jīng)腹腔注射NS 10 mL/kg,STBI+HS組在STBI術(shù)后5 min內(nèi)經(jīng)腹腔注射HS 10 mL/kg。3組動(dòng)物分別于STBI術(shù)前和術(shù)后12、24、48 h檢測(cè)血漿中MAD水平以及SOD和GSH-PX的活性。
1.5 指標(biāo)檢測(cè)
1.5.1 血漿樣本中MDA水平的檢測(cè) 依據(jù)硫代巴比妥酸比色法進(jìn)行。按南京建成生物工程研究所試劑盒說(shuō)明操作。其中樣品中MDA含量=(測(cè)定管吸光度-測(cè)定空白管吸光度)/(標(biāo)準(zhǔn)管吸光度-標(biāo)準(zhǔn)空白管吸光度)×10 mmol/L×樣本稀釋倍數(shù)。
1.5.2 血漿樣本中SOD活性的檢測(cè) 依據(jù)黃嘌呤氧化酶法進(jìn)行。按南京建成生物工程研究所試劑盒說(shuō)明操作。樣品中SOD活性=(對(duì)照管吸光度-測(cè)定管吸光度)×稀釋倍數(shù)/對(duì)照管吸光度×1/2。
1.5.3 血漿樣本中GSH-PX活性的檢測(cè) 依據(jù)5,5′-二硫代-雙-硝基苯甲酸顯色法。按南京建成生物工程研究所試劑盒說(shuō)明操作。GSH-PX活性=(對(duì)照管吸光度-測(cè)定管吸光度)×標(biāo)準(zhǔn)管濃度×樣本稀釋倍數(shù)。
1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS16.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,兩組間比較采用t檢驗(yàn),多組間比較采用方差分析。P<0.05說(shuō)明差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 血漿中MAD水平 與同組術(shù)前相比,STBI+NS組及STBI+HS組的MDA水平在術(shù)后24 h和48 h明顯升高(P<0.05)。與假手術(shù)組比較,STBI+NS組及STBI+HS組動(dòng)物血漿中MDA水平在術(shù)后24 h和48 h均明顯升高(P<0.05)。與STBI+NS組相比,STBI+HS組的MDA水平在術(shù)后24 h和48 h明顯降低(P<0.05)。見(jiàn)表1。
2.2 血漿中SOD活性 與同組術(shù)前相比,STBI+NS組及STBI+HS組的SOD活性在術(shù)后12 h有所增高(P<0.05),但在24 h和48 h明顯降低(P<0.05)。與假手術(shù)組比較,STBI+NS組及STBI+HS組動(dòng)物血漿中SOD活性在術(shù)后24 h和48 h均明顯降低(P<0.05)。與STBI+NS組相比,STBI+HS組的SOD活性在術(shù)后24 h和48 h明顯升高(P<0.05)。見(jiàn)表2。
2.3 血漿中GSH-PX活性 與同組術(shù)前相比,STBI+NS組及STBI+HS組的GSH-PX活性在術(shù)后12 h有所增高(P<0.05),但在24 h和48 h明顯降低(P<0.05)。與假手術(shù)組比較,STBI+NS組及STBI+HS組動(dòng)物血漿中GSH-PX活性在術(shù)后24 h和48 h均明顯降低(P<0.05)。與STBI+NS組相比,STBI+HS治療組的GSH-PX活性在術(shù)后24 h和48 h明顯升高(P<0.05)。見(jiàn)表3。
表1 STBI術(shù)前及術(shù)后不同時(shí)間點(diǎn)血漿中MDA水平比較(±s,n mol/mL)
表1 STBI術(shù)前及術(shù)后不同時(shí)間點(diǎn)血漿中MDA水平比較(±s,n mol/mL)
a:P<0.05,與同組術(shù)前比較;b:P<0.05,與假手術(shù)組比較;c:P<0.05,與STBI+NS組比較。
組別 n 術(shù)前 術(shù)后12 h 術(shù)后24 h 術(shù)后48 h假手術(shù)組20 3.21±0.13 3.56±0.09 3.68±0.08 3.79±0.14 STBI+NS組 20 3.45±0.16 3.72±0.09 8.25±0.11 ab 18.69±0.05 ab STBI+HS組 20 3.34±0.06 3.64±0.12 4.71±0.13abc 5.68±0.16 abc
表2 STBI術(shù)前及術(shù)后不同時(shí)間點(diǎn)血漿中SOD活性比較(±s,U/mL)
表2 STBI術(shù)前及術(shù)后不同時(shí)間點(diǎn)血漿中SOD活性比較(±s,U/mL)
a:P<0.05,與同組術(shù)前比較;b:P<0.05,與假手術(shù)組比較;c:P<0.05,與STBI+NS組比較。
組別 n 術(shù)前 術(shù)后12 h 術(shù)后24 h 術(shù)后48 h假手術(shù)組 20 132.61±8.92 135.79±0.02 131.86±8.92 137.13±13.42 STBI+NS組 20 138.27±6.13 145.63±11.21a 109.12±7.62 ab 92.37±10.61 ab STBI+HS組 20 135.42±9.21 156.25±5.46 a 121.59±10.13 abc 110.28±9.89 abc
表3 STBI術(shù)前及術(shù)后不同時(shí)間點(diǎn)血漿中GSH-PX活性比較(±s,U/mL)
表3 STBI術(shù)前及術(shù)后不同時(shí)間點(diǎn)血漿中GSH-PX活性比較(±s,U/mL)
a:P<0.05,與同組術(shù)前比較;b:P<0.05,與假手術(shù)組比較;c:P<0.05,與STBI+NS組比較。
組別 n 術(shù)前 術(shù)后12 h 術(shù)后24 h 術(shù)后48 h假手術(shù)組20 0.52±0.01 0.54±0.05 0.53±0.06 0.51±0.03 STBI+NS組 20 0.48±0.02 0.55±0.04a 0.42±0.03 a 0.39±0.01 a STBI+HS組 20 0.53±0.03 0.58±0.01 a 0.48±0.02 ab 0.44±0.05 abc
氧化應(yīng)激是由于各種內(nèi)外因素的刺激引起機(jī)體組織內(nèi)或細(xì)胞內(nèi)的氧自由基生成的增多和(或)清除能力降低,從而導(dǎo)致氧自由基在體內(nèi)或細(xì)胞內(nèi)蓄積,體內(nèi)過(guò)多的氧自由基攻擊生物膜中的多不飽和脂肪酸,出現(xiàn)脂質(zhì)過(guò)氧化,造成細(xì)胞或組織氧化損傷,從而引起細(xì)胞損傷或凋亡,加劇機(jī)體的炎性反應(yīng)[8-9]。MDA是氧自由基攻擊細(xì)胞膜中多不飽和脂肪酸后生成的脂質(zhì)過(guò)氧化產(chǎn)物,其作為強(qiáng)交聯(lián)劑,與蛋白質(zhì)、核酸或脂類結(jié)成難溶性物質(zhì),使生物膜通透性降低,繼而引起細(xì)胞破裂和(或)死亡,MDA水平的變化間接反映體內(nèi)脂質(zhì)氧化及組織損傷程度且性質(zhì)較穩(wěn)定。機(jī)體的抗氧化能力取決于脂質(zhì)過(guò)氧化程度和抗氧化保護(hù)的動(dòng)態(tài)平衡,目前研究認(rèn)為SOD、GSH-PX是機(jī)體中重要的抗氧化物酶。其中,SOD在機(jī)體的氧化與抗氧化平衡中起著關(guān)鍵作用,主要通過(guò)清除人體中超氧化物和H2O2,保護(hù)細(xì)胞生物膜結(jié)構(gòu)和功能的穩(wěn)定性。谷胱甘肽是一種低分子自由基清除劑,可直接或間接清除H2O2、·OH等,是外源性和內(nèi)源性的抗氧化劑。當(dāng)機(jī)體血漿中出現(xiàn)MDA含量升高,SOD、GSH-PX下降,一般認(rèn)為機(jī)體出現(xiàn)損傷,引起脂質(zhì)過(guò)氧化,產(chǎn)生了氧化性應(yīng)激。
目前關(guān)于氫氣抗氧化作用的研究日益成為國(guó)內(nèi)外學(xué)者關(guān)注的焦點(diǎn)[10]。氫是無(wú)色、無(wú)嗅、無(wú)味具有低還原性的雙原子氣體。而近年相關(guān)的研究認(rèn)為,氫氣不是生理性惰性氣體,而是一種理想的抗氧化物質(zhì),具有選擇性抗氧化作用,可特異性中和細(xì)胞內(nèi)有害自由基,保護(hù)DNA、蛋白質(zhì)等不被破壞,維持線粒體正常功能,阻止細(xì)胞凋亡[11-13]。HS是將氫氣通過(guò)高壓溶解于生理鹽水中,關(guān)于氫氣對(duì)機(jī)體各種外源性因素引起的氧化應(yīng)激的影響作用存在不一致的研究結(jié)果[14]。任漢強(qiáng)等[11]的研究結(jié)果表明,HS對(duì)高糖所致內(nèi)皮細(xì)胞氧化損傷具有保護(hù)作用,可有效降低人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞內(nèi)ROS的生成和抗氧化酶減少,發(fā)揮抗細(xì)胞凋亡的作用。也有研究發(fā)現(xiàn),腹腔注射HS可以顯著提高大鼠腹部臟器如肝、腎等組織內(nèi)的氫濃度,并對(duì)腦、腸缺血再灌注損傷動(dòng)物模型都有較好的保護(hù)作用。Matchett等[15]研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),吸入2%氫氣后對(duì)中度及重度新生兒缺血缺氧腦病大鼠模型療效不明顯。但是Xie等[16]研究表明,2%氫氣吸入對(duì)嚴(yán)重膿毒血癥小鼠具有保護(hù)作用。Ji等[17]研究表明,吸入氫氣可通過(guò)降低腦組織中氧化產(chǎn)物的產(chǎn)生及提高抗氧化酶活性對(duì)TBI大鼠具有顯著保護(hù)作用。
大量的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)表明,TBI后機(jī)體的氧自由基反應(yīng)增強(qiáng)。腦組織在生理情況下清除自由基主要依靠?jī)深愇镔|(zhì),酶和天然的抗氧化劑。自由基的生成和清除之間保持動(dòng)態(tài)平衡,以維持機(jī)體功能的正常和結(jié)構(gòu)完整,但在某種病理情況下,自由基的生成超出機(jī)體清除能力時(shí)會(huì)造成機(jī)體的組織損傷。由于腦組織脂質(zhì)豐富,抗氧化能力較弱,因此極易受到自由基的攻擊而發(fā)生氧化應(yīng)激損傷。控制性皮質(zhì)撞擊損傷模型作為復(fù)制局部TBI的成熟模型廣泛用于小鼠和大鼠前后腦組織中細(xì)胞和分子改變的研究中。因此,本研究采用控制性皮質(zhì)撞擊損傷誘導(dǎo)的TBI模型,結(jié)果表明,STBI手術(shù)過(guò)程中存在一定程度的氧化應(yīng)激損傷。與術(shù)前相比,STBI手術(shù)組動(dòng)物血中MDA水平在顱腦損傷24 h和48 h后顯著升高;與術(shù)前相比,STBI手術(shù)組動(dòng)物血中的SOD及GSH-PX的活性在顱腦損傷后12 h有所升高,但在STBI 24 h和48 h后顯著降低,提示STBI手術(shù)過(guò)程中機(jī)體受到刺激,生成大量氧自由基,引起了機(jī)體脂質(zhì)過(guò)氧化,發(fā)生了氧化性應(yīng)激。與STBI+NS組相比,STBI+HS治療可以顯著降低STBI傷后MDA的水平,增加STBI術(shù)后SOD及GSH-PX的活性。
綜上所述,在大鼠STBI模型中,HS治療可有效降低神經(jīng)損傷引起的機(jī)體氧化產(chǎn)物的生成和抗氧化酶的減少,對(duì)氧化應(yīng)激損傷具有保護(hù)作用。采用新的抗氧化劑HS治療可能成為治療TBI更有效的治療策略。
[1]Elliott MB,Jallo JJ,Barbe MF,et al.Hypertonic saline attenuates tissue loss and astrocyte hypertrophy in a modelof traumatic brain injury[J].Brain Res,2009,1305:183-191.
[2]Mc Allister TW.Psychopharmacological issues in the treatment of TBI and PTSD[J].Clin Neuropsychol,2009,23(8):1338-1367.
[3]Hall ED,Bryant YD,Cho W,et al.Evolution of post-traumatic neurodegeneration after controlled cortical impacttraumatic brain injury in mice and rats as assessed by thede Olmos silver and fluorojade staining methods[J].JNeurotrauma,2008,25(3):235-247.
[4]Yu S,Kaneko Y,Bae E,et al.Severity of controlled cortical impact traumatic brain injury in rats and mice dictatesdegree of behavioral deficits[J].Brain Res,2009,1287:157-163.
[5]Zheng X,Mao Y,Cai J,et al.Hydrogen-rich saline protects against intestinal ischemia/reperfusion injury in rats[J].Free Radic Res,2009,43(5):478-484.
[6]Cai J,Kang Z,Liu K,et al.Neuroprotective effects of Hydrogen saline in neonatal hypoxia-ischemia rat model[J].Brain Res,2009,1256:129-137.
[7]Ohsawa I,Ishikawa M,Takahashi K,et al.Hydrogen actsas a therapeutic antioxidant by selectively reducing cytotoxic Oxygen radicals[J].Nat Med,2007,13(6):688-694.
[8]Arsalani-Zadeh R,Ullah S,Khan S,et al.Oxidative stressin laparoscopic versus open abdominal surgery:a systematic review[J].J Surg Res,2011,169(1):e59-e68.
[9]Sauer H,Wartenberg M,Hescheler J.Reactive Oxygenspecies as intracellular messengers during cell growth anddifferentiation[J].Cell Physiol Biochem,2001,11(4):173-186.
[10]George JF,Agarwal A.Hydrogen:another gas with therapeutic potential[J].Kidney Int,2010,77(2):85-87.
[11]任漢強(qiáng),沈小波.氫氣飽和生理鹽水對(duì)高糖所致內(nèi)皮細(xì)胞內(nèi)活性氧生成和凋亡的影響[J].重慶醫(yī)學(xué),2012,41(6):575-577.
[12]Mao YF,Zheng XF,Cai JM,et al.Hydrogen-rich salinereduces lung injury induced by intestinal ischemia/reperfusion in rats[J].Biochem Biophys Res Commun,2009,381(4):602-605.
[13]Sun H,Chen L,Zhou W,et al.The protective role of hydrogen-rich saline in experimental liver injury in mice[J].J Hepatol,2011,54(3):471-480.
[14]Cai J,Kang Z,Liu WW,et al.Hydrogentherapy reduces apoptosis in neonatal hypoxia-ischemiarat model[J].Neurosci Lett,2008,441(2):167-172.
[15]Matchett GA,F(xiàn)athali N,Hasegawa Y,et al.Hydrogengas is ineffective in moderate and severe neonatal hypoxia-ischemia rat models[J].Brain Res,2009,1259:90-97.
[16]Xie K,Yu Y,Pei Y,et al.Protective effects of Hydrogengas on murine polymicrobial sepsis via reducing oxidativestress and HMGB1 release[J].Shock,2010,34(1):90-97.
[17]Ji X,Liu W,Xie K,et al.Beneficial effects of hydrogengas in a rat model of traumatic brain injury via reducingoxidative stress[J].Brain Res,2010,1354:196-205.