華 平, 劉家良, 楊淞然, 江慧琦, 王 萌, 陶 俊, 楊艷旗
(1中山大學(xué)孫逸仙紀(jì)念醫(yī)院心胸外科,廣東廣州510120;2廣州市第一人民醫(yī)院腦內(nèi)科,廣東廣州510180)
骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymal stem cells,MSCs)具有多向分化潛能,能分泌多種生物活性因子,且來源豐富,免疫原性低,是治療心肌梗死的理想種子細(xì)胞,可阻止心室重構(gòu),改善心功能[1-2],在心肌梗死的的細(xì)胞治療和基因治療中有著巨大的應(yīng)用價(jià)值。但移植后缺血缺氧的局部微環(huán)境導(dǎo)致MSCs增殖和存活能力受限[3],從而限制了干細(xì)胞移植的治療效果。因此,促進(jìn)細(xì)胞在非理想環(huán)境下的增殖能力,尤其是抗凋亡能力成為目前的研究熱點(diǎn)。半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶3(caspase-3)是細(xì)胞凋亡過程中的關(guān)鍵執(zhí)行者[4]。本實(shí)驗(yàn)采用前期研究中篩選出來的針對(duì)caspase-3干擾效果最好的靶點(diǎn)序列構(gòu)建shRNA表達(dá)載體[5],通過慢病毒介導(dǎo)的方法轉(zhuǎn)染MSCs,觀察沉默caspase-3后MSCs的增殖能力、細(xì)胞周期變化和抗凋亡能力。
SPF級(jí)3周齡Sprague-Dawley大鼠由中山大學(xué)北校區(qū)動(dòng)物中心提供。胎牛血清和DMEM/F12培養(yǎng)基(HyClone),小鼠抗大鼠CD29流式抗體(BD),小鼠抗大鼠CD45和CD90流式抗體(eBioscience),慢病毒載體GV115(上海吉?jiǎng)P基因),MTS試劑盒(Promega),細(xì)胞周期檢測試劑盒(南京凱基),SYBR Green PCR Master Mix(Toyobo),Trizol(Invitrogen),兔抗大鼠 caspase-3單克隆抗體(Anbo),Hoechst 33258(碧云天生物技術(shù)研究所)
2.1 MSCs的培養(yǎng)與鑒定 頸椎脫臼法處死SD大鼠,75%乙醇浸濕5 min。超凈臺(tái)上取雙側(cè)股骨、脛骨,去除骨骺,注射器吸取培養(yǎng)基反復(fù)沖洗骨髓腔。收集沖洗液制成單細(xì)胞懸液,離心(1 500 r/min,10 min),棄上清,加入含10%胎牛血清的DMEM/F12完全培養(yǎng)基,吹打細(xì)胞,計(jì)數(shù),以1×1010/L的密度接種,置37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。接種48 h后首次換液,以后每3 d換液,直至細(xì)胞長滿80% ~90%,0.25%胰酶消化并按1∶3傳代。經(jīng)多次換液傳代純化MSCs。流式細(xì)胞術(shù)檢測P2代CD29、CD45和CD90的表達(dá)以鑒定MSCs。
2.2 構(gòu)建慢病毒載體與細(xì)胞感染 根據(jù)前期實(shí)驗(yàn)結(jié)果,選取針對(duì)caspase-3干擾效果最好的靶點(diǎn)序列:5'-GCCGACTTCCTGTATGCTTAC-3',合成表達(dá) shRNA的2條互補(bǔ)DNA單鏈:5'-CCGGGCCGACTTCCTGTATGCTTACCTCGAGGTAAGCATACAGGAAGTCGGC-TTTTTG-3',5'-AATTCAAAAAGCCGACTTCCTGTATGCTTACCTCGAGGTAAGCATACAGGAAGTCGGC-3'。上述單鏈退火形成雙鏈,連接到線性化載體GV115后轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細(xì)胞,提取質(zhì)粒進(jìn)行酶切鑒定并測序。再用293T細(xì)胞包裝病毒。取良好生長狀態(tài)的MSCs以(3~5)×106/L的密度接種,細(xì)胞融合率為30%~50%時(shí)進(jìn)行病毒感染。同時(shí)制備空載體作為對(duì)照,并將實(shí)驗(yàn)分為空白對(duì)照組、空載體組和轉(zhuǎn)染組(由廣州萊德爾生物科技有限公司完成)。
2.3 Real-time PCR 檢測 caspase-3、bcl-2和 bax mRNA的表達(dá) 收集細(xì)胞,Trizol試劑盒抽提總RNA,逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,取5μL逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物進(jìn)行擴(kuò)增反應(yīng)。使用熒光定量PCR儀,采用SYBR Green染料法,以β-actin為內(nèi)參照。引物設(shè)計(jì)見表1。反應(yīng)條件:95℃預(yù)熱5 min,95 ℃變性15 s,60℃退火15 s,72 ℃延伸32 s,40個(gè)循環(huán)。
表1 引物序列Table 1.Primer sequences
2.4 Western blotting檢測caspase-3蛋白的表達(dá) 收集細(xì)胞離心(1 000 r/min,5 min),棄上清,根據(jù)細(xì)胞量加入相應(yīng)的提取緩沖液,收集裂解液,BCA法測定蛋白濃度。配置5%濃縮膠和10%分離膠進(jìn)行SDS-PAGE電泳。電泳產(chǎn)物轉(zhuǎn)移至PVDF膜,5%脫脂奶粉溶液封閉,加入兔抗大鼠 I抗(caspase-3 1∶1 000,GAPDH 1∶1 000),37 ℃孵育2 h,TBST 洗膜5 min×3次,加山羊抗兔 IgG II抗(1∶5 000),37 ℃孵育1 h,TBST洗膜5 min×3次。DAB顯色。用Quantity One軟件對(duì)蛋白條帶進(jìn)行半定量分析。
2.5 MTS檢測細(xì)胞增殖 取對(duì)數(shù)生長期的細(xì)胞配置成1×108/L細(xì)胞懸液接種,每孔100μL,放置37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。待細(xì)胞貼壁后,收集各個(gè)時(shí)點(diǎn)的細(xì)胞(24 h、48 h、72 h、96 h 和 120 h)加入MTS,比例為1∶10。孵育4 h后,酶標(biāo)儀讀取 A490數(shù)據(jù)。細(xì)胞增殖率=(實(shí)驗(yàn)組A490值-A0)/A0×100%。A0為實(shí)驗(yàn)組第1天的A490值。
2.6 流式細(xì)胞術(shù)檢測細(xì)胞周期 常規(guī)消化細(xì)胞,用預(yù)冷PBS洗2次,加入預(yù)冷70%乙醇,4℃固定過夜。離心收集細(xì)胞,以1 mL PBS洗細(xì)胞1次,加入500μL PBS含50 mg/L溴化丙啶,100 mg/L RNase A,0.2%Triton X-100,4℃避光孵育30 min。以標(biāo)準(zhǔn)程序用流式細(xì)胞儀檢測,計(jì)數(shù)(2~3)×104個(gè)細(xì)胞,結(jié)果用細(xì)胞周期擬和軟件ModFit分析。
2.7 流式細(xì)胞術(shù)檢測細(xì)胞凋亡率 用PBS溶液輕輕潤洗培養(yǎng)板內(nèi)細(xì)胞,去除PBS溶液;加入0.5 mL不含EDTA的0.25%胰酶,孵育,直至顯微鏡下觀察到細(xì)胞開始從培養(yǎng)板壁脫落;輕輕連續(xù)拍打使細(xì)胞從培養(yǎng)板壁上完全脫落;將細(xì)胞輕輕重懸于預(yù)冷的緩沖液中,密度為1×109/L;轉(zhuǎn)移0.5 mL細(xì)胞懸液到干凈的離心管內(nèi);加入1.25μL Annexin V-APC,室溫避光反應(yīng) 15 min;室溫離心(1 000 r/min,5 min),去除上清;0.5 mL預(yù)冷結(jié)合緩沖液將細(xì)胞重懸;加入10μL溴化丙啶,冰上避光保存,流式細(xì)胞儀檢測分析。
2.8 Hoechst染色檢測細(xì)胞凋亡 細(xì)胞以5×104/L密度接種于用12孔培養(yǎng)板中,每孔1 mL,37℃、5%CO2孵箱中培養(yǎng),至細(xì)胞爬片。加入1 mL 4%甲醛溶液,4℃固定細(xì)胞10 min。去固定液,PBS洗5 min×3次,自然晾干。滴加100μL Hoechst 33258工作液(1 mg/L),室溫染色10 min。PBS洗5 min×3次。濾紙沾去多余液體,加抗熒光淬滅封片液,封片后熒光顯微鏡下觀察并拍照。
采用SPSS 13.0軟件處理,數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示,組間比較采用單因素方差分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
首次換液后見大量貼壁細(xì)胞,部分伸出偽足呈短棒狀。3~4 d貼壁細(xì)胞增多,細(xì)胞集落形成。9~10 d細(xì)胞融合成片,沿胞體長軸有序排列,呈旋渦狀。通過傳代逐漸純化MSCs,見圖1。免疫表型鑒定顯示表面標(biāo)志 CD29和 CD90的陽性率分別為 93.31%和93.45%,造血系統(tǒng)細(xì)胞表面標(biāo)志物CD45的陽性率為5.69%,見圖2,表明獲得的細(xì)胞為MSCs。
Figure 1.Morphology of MSCs(×40).The third-generation MSCs were morphologically consistent,long spindle,arranged in a radial or spiral shape and showed colony growth under phase-contrast microscopy.圖1 MSCs的形態(tài)
Figure 2.Identification of MSCs圖2 MSCs鑒定結(jié)果
經(jīng)慢病毒介導(dǎo)方法導(dǎo)入質(zhì)粒后,轉(zhuǎn)染組、空載體組和空白對(duì)照組mRNA相對(duì)表達(dá)量分別為0.39±0.06、1.66 ±0.17 和1.91 ±0.31(P <0.01),轉(zhuǎn)染組的表達(dá)量僅為對(duì)照組的23.49%和20.31%,干擾效率為76.51%和79.69%,見圖3。通過灰度值分析,轉(zhuǎn)染組、空載體組和空白對(duì)照組的蛋白表達(dá)量分別為0.19 ±0.09、0.49 ±0.16 和 0.48 ± 0.14(P <0.05),轉(zhuǎn)染組的蛋白表達(dá)量降低了61%和60%,見圖4,說明caspase-3的表達(dá)得到了很好的抑制。
Figure 3.Expression of caspase-3 mRNA.A:MSCs;B:MSCsvector;C:MSCs-shRNA.Mean ± SD.n=3.** P <0.01 vs A or B.圖3 Caspase-3 mRNA的表達(dá)
Figure 4.Expression of caspase-3 protein.A:MSCs;B:MSCsvector;C:MSCs-shRNA.Mean ± SD.n=3.*P <0.05 vs A or B.圖4 Caspase-3蛋白的表達(dá)情況
除第1天外,轉(zhuǎn)染組的增殖率在各時(shí)點(diǎn)均明顯高于對(duì)照組(均P<0.05),而兩對(duì)照組之間無明顯差異(P>0.05),見圖5,證實(shí)慢病毒系統(tǒng)本身對(duì)MSCs的增殖能力無顯著影響,而沉默caspase-3能加快細(xì)胞生長。
Figure 5.Proliferative curves of MSCs-shRNA,MSCs-vector and MSCs.Mean ± SD.n=3.*P < 0.05 vs MSCs or MSCs-vector.圖5 細(xì)胞增殖曲線
與空載體組和空白對(duì)照組相比,轉(zhuǎn)染組S期細(xì)胞百分比明顯升高(P<0.01),G0/G1期和G1/G2期細(xì)胞百分比下降(均P<0.05),對(duì)照組之前差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),沉默caspase-3后MSCs主要停留在S期,見圖6和表2。
Figure 6.Cell cycle detected by flow cytometry.A:MSCs;B:MSCs-vector;C:MSCs-shRNA.圖6 流式細(xì)胞術(shù)檢測細(xì)胞周期
表2 細(xì)胞周期變化Table 2.Changes of cell cycle(%.Mean±SD.n=3)
沉默caspase-3后,除caspase-3表達(dá)降低外,還觀察到bcl-2表達(dá)上調(diào)(P<0.01),bax表達(dá)下調(diào)(P<0.01),bcl-2/bax比值升高(P <0.05),見圖7。
流式細(xì)胞術(shù)檢測各組細(xì)胞凋亡率顯示,轉(zhuǎn)染組的凋亡率低于對(duì)照組,見圖8。Hoechst 33258染色后在熒光顯微鏡下觀察到所有細(xì)胞的細(xì)胞核都呈現(xiàn)藍(lán)色熒光,凋亡的細(xì)胞核染色質(zhì)凝聚,細(xì)胞核濃縮,見圖9。400倍鏡下,各組細(xì)胞選取6個(gè)不同的視野進(jìn)行陽性細(xì)胞計(jì)數(shù),得出轉(zhuǎn)染組的細(xì)胞凋亡率為(15.01 ±1.73)%,低于空載體組(25.67% ±3.05%)和空白對(duì)照組(23.67% ±1.16%)(P <0.05),兩對(duì)照組之間無明顯差異(P>0.05)。
Figure 7.Expression of bcl-2 and bax mRNA.A:MSCs;B:MSCs-vector;C:MSCs-shRNA.Mean±SD.n=3.*P<0.05 vs A or B.圖7 bcl-2和bax mRNA的表達(dá)
Figure 8.Apoptosis of MSCs detected by flow cytometry assay.Mean ± SD.n=3.*P <0.05 vs MSCs or MSCs-vector.圖8 流式細(xì)胞術(shù)檢測MSCs凋亡
Figure 9.Apoptosis of MSCs detected by Hoechst 33258 staining(×400).A:MSCs;B:MSCs-vector;C:MSCs-shRNA圖9 Hoechst 33258染色檢測MSCs凋亡
盡管MSCs移植用于治療心肌梗死具有發(fā)展?jié)摿?,但是移植后的低存活率使得治療效果并不理想,成為其臨床應(yīng)用的瓶頸。心肌微環(huán)境是植入的MSCs賴以生存的空間位置和相互關(guān)系。微環(huán)境中的細(xì)胞外基質(zhì)和生物活性分子不但對(duì)MSCs起著支持、連接、營養(yǎng)和保護(hù)等作用,還對(duì)其增殖、分化和遷移有著重要的信號(hào)調(diào)節(jié)作用。細(xì)胞外基質(zhì)與MSCs黏附,通過整合素-FAK-ERK信號(hào)通路促進(jìn)MSCs生長、增殖和遷移[6]。MSCs能旁分泌多種細(xì)胞因子,尤其是堿性成纖維細(xì)胞生長因子(basic fibroblast growth factor,bFGF)通過ERK的活化,具有相對(duì)較強(qiáng)的促增殖作用[7]。心肌梗死后,局部的缺血缺氧、炎癥反應(yīng)和再灌注損傷使植入的細(xì)胞面臨一個(gè)復(fù)雜、失穩(wěn)態(tài)和惡劣的微環(huán)境[8]。缺乏基質(zhì)中的存活信號(hào),細(xì)胞毒性因子的產(chǎn)生導(dǎo)致細(xì)胞在移植后增殖能力受限,短時(shí)間內(nèi)大量凋亡[9]。同時(shí),心肌的機(jī)械刺激也對(duì)MSCs的增殖和存活造成一定的影響。
Pouzet等[10]率先提出了“線性關(guān)系”理論,認(rèn)為增加注射細(xì)胞的數(shù)量能夠提高移植效率。但隨后的幾項(xiàng)研究結(jié)果得出了與此相悖的結(jié)論,甚至有報(bào)道稱,細(xì)胞數(shù)量的增加可導(dǎo)致左心室射血分?jǐn)?shù)(left ventricular ejection fraction,LVEF)的惡化[11]。由于用于動(dòng)物實(shí)驗(yàn)和臨床實(shí)驗(yàn)的移植細(xì)胞種類各不相同,而每種細(xì)胞的生物學(xué)特性都有所差別,加上其它研究因素不盡一致,很難單純分析數(shù)量對(duì)療效的影響。
細(xì)胞凋亡是由基因控制的程序性死亡,涉及一系列基因的激活、表達(dá)以及調(diào)控。Caspase家族在凋亡過程中起著關(guān)鍵作用。Caspase-3處于凋亡有序級(jí)聯(lián)反應(yīng)的下游,內(nèi)源性和外源性通路最后都有caspase-3的激活[12],它的活化是凋亡進(jìn)入不可逆階段的標(biāo)志。bcl-2基因家族也與細(xì)胞凋亡密切相關(guān)。家族成員包括促凋亡基因(bax和bag)和抗凋亡基因(bcl-xL和bcl-2)兩大類。任何因素破壞促凋亡和抗凋亡2組基因或相關(guān)蛋白之間的平衡都會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞對(duì)外界刺激的敏感性增加,而破壞細(xì)胞的結(jié)構(gòu)與功能。bcl-2 mRNA和bax是研究最廣泛的凋亡相關(guān)基因,兩者的比值往往決定了細(xì)胞的命運(yùn)[13]。
本實(shí)驗(yàn)針對(duì)caspase-3這一凋亡過程中的關(guān)鍵執(zhí)行者構(gòu)建了shRNA表達(dá)載體,通過慢病毒介導(dǎo)成功轉(zhuǎn)染了MSCs,在mRNA和蛋白水平對(duì)目的基因的表達(dá)起到了有效的干擾,同時(shí)觀察到bcl-2 mRNA表達(dá)上調(diào),bax mRNA表達(dá)下調(diào),bcl-2/bax比值升高。沉默caspase-3后的MSCs增殖率明顯提高,原因可能為細(xì)胞周期受到調(diào)控,更多的細(xì)胞停留在S期和凋亡的細(xì)胞數(shù)量減少。凋亡的細(xì)胞染色質(zhì)凝聚,細(xì)胞核濃縮,細(xì)胞體積縮小,轉(zhuǎn)染組的凋亡率明顯低于對(duì)照組。然而,心肌梗死區(qū)域是一個(gè)以缺血缺氧為主要特點(diǎn)的復(fù)雜微環(huán)境,下一步需進(jìn)行體外缺血缺氧模擬或體內(nèi)細(xì)胞移植才能進(jìn)一步驗(yàn)證沉默caspase-3能否提高M(jìn)SCs的抗凋亡能力。