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    西藏牦牛12SrRNA基因全序列測(cè)定及系統(tǒng)進(jìn)化關(guān)系

    2013-11-30 06:45:22姜雪鷗鐘金城
    家畜生態(tài)學(xué)報(bào) 2013年6期
    關(guān)鍵詞:水牛類群牦牛

    姜雪鷗,鐘金城

    (西南民族大學(xué) 動(dòng)物遺傳育種學(xué)國家民委-教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,四川 成都 610041)

    動(dòng)物線粒體基因組中通常含有2個(gè)rRNA、13個(gè)結(jié)構(gòu)蛋白基因、22個(gè)tRNA和1個(gè)D-loop區(qū)[1]。按照母性遺傳方式傳代,其分子量小,拷貝數(shù)多,進(jìn)化速度很快,堿基的替代率比單拷貝核DNA基因組快6~10倍。12SrRNA基因是在進(jìn)化上比較保守,通常被用于系統(tǒng)發(fā)生和分子進(jìn)化的研究[2]。

    牦牛是牛屬動(dòng)物中唯一繁殖在青藏高原及其毗鄰高寒牧區(qū)的牛種,一般生活在海拔3 000 m以上的高山、亞高山地區(qū),對(duì)低氧、高寒等惡劣的環(huán)境具有很強(qiáng)的適應(yīng)能力, 同時(shí),該物種對(duì)于缺氧環(huán)境的適應(yīng)能力具有很大的生態(tài)可塑性[3]。

    本文以西藏11個(gè)牦牛品種為研究材料,首次對(duì)它們的mtDNA 12SrRNA基因全序列進(jìn)行了測(cè)定及分析,并在11個(gè)群體內(nèi)進(jìn)行同源性比較和分子信息學(xué)的探討,為今后深入研究牦牛線粒體基因的分子特征、種群結(jié)構(gòu)等方面提供理論基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)動(dòng)物及血樣采集

    從11個(gè)西藏牦牛品種或類群中,隨機(jī)選取健康成年牦牛110頭,采集耳組織,75%乙醇保存,低溫帶回實(shí)驗(yàn)室,-80 ℃保存(牦牛的品種及數(shù)量見表1)。

    1.2 酶和試劑

    Tris-Base、氯仿、95%酒精、DNA Marker 2000、蛋白酶K、EDTA、硼酸、IPTG、飽和酚、X-gal、氨卞青霉素、瓊脂粉等均購自大連寶(TakaRa)生物工程有限公司;動(dòng)物基因組DNA凝膠回收試劑盒購自天根生化科技有限公司。

    1.3 菌株和載體

    大腸桿菌DH5α由成都天泰生命科技有限公司提供;pMD19-T Vector載體購自大連寶(TakaRa)生物有限公司。

    1.4 基因組DNA提取及檢驗(yàn)

    采用的是常規(guī)的酚-氯仿法提取動(dòng)物組織的基因組DNA[4],用1%~1.5%的瓊脂糖凝膠電泳以及紫外分光光度計(jì)法雙重檢測(cè)DNA的濃度和純度,并將所提DNA產(chǎn)物置于-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.5 引物的設(shè)計(jì)、合成及稀釋

    參照NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/)上已有的亞洲水牛(GenBank Accession No:AY488491.1)、非洲水牛(GenBank Accession No:EF536353.1)、歐洲野牛(GenBank Accession No:HM045017)和家牛(GenBank Accession No:EU177829)的12SrRNA序列,應(yīng)用生物信息學(xué)軟件DNAMAN和Primer Premier 5.0設(shè)計(jì)引物,由英濰捷基(上海)貿(mào)易有限公司(cnservice.invitrogen.com)合成。引物序列為:PF:5′-GGCACTGAAAATGCCTAGATG-3′與PR:5′-GCATACTGGAAAGTGTGCTTG-3′。

    表1 樣本信息Table 1 Information of samples

    1.6 PCR擴(kuò)增

    PCR的擴(kuò)增體系:總體系為25 μL,包括MgCl2(25 mmol/L) 1.5 μL,滅菌去離子水,14.85 μL dNTP(各2.5 mmol/L) 2 μL,模板DNA(50 ng/μL)2 μL,10×Buffer(Mg2+Free)2.5 μL,上、下游引物各1 μL,ExTaq (5 U/μL)0.15 μL。

    PCR的擴(kuò)增程序:94 ℃預(yù)變性3 min;94 ℃變性30 s,62.5 ℃退火30 s,72 ℃延伸90 s, 30個(gè)循環(huán);最后72 ℃延伸5 min,4 ℃保存。PCR產(chǎn)物用1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。

    1.7 PCR產(chǎn)物的的克隆

    PCR產(chǎn)物參照DNA凝膠回收試劑盒說明書進(jìn)行回收純化,用pMDTM19-T Vector與回收的目的片段在恒溫16 ℃的金屬浴中反應(yīng)連接2~8 h;將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)入大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞中培養(yǎng);再將培養(yǎng)好的菌液涂在含有X-Gal 底物、氨芐青霉素、IPTG 誘導(dǎo)物的固體培養(yǎng)基平板上,利用藍(lán)白斑法進(jìn)行篩選;用滅菌好的牙簽去挑取白色的單一菌落,在含有氨卞青霉素的LB液體培養(yǎng)基中培養(yǎng),將構(gòu)建的重組質(zhì)粒通過PCR 法進(jìn)行轉(zhuǎn)化子鑒定克隆是否成功。

    1.8 測(cè)序及分析

    提取陽性重組質(zhì)粒,將其送往英濰捷基(上海)貿(mào)易有限公司測(cè)序。測(cè)序結(jié)果用BioXM、DNAMAN、dnasp5等軟件進(jìn)行序列比對(duì)分析;用MEGA生物信息學(xué)軟件構(gòu)建不同的物種間系統(tǒng)進(jìn)化樹。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 mtDNA D-loop擴(kuò)增結(jié)果

    PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳顯示有清晰明亮的區(qū)帶,片段長度應(yīng)為1 008 bp左右,由圖1可看出,牦牛的mtDNA D-loop區(qū)的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物大小與預(yù)期結(jié)果一致。

    圖1 PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的1%瓊脂糖凝膠電泳圖Fig.1 Electrophoretic agarose gel of PCR amplification

    2.2 牦牛12SrRNA全序列的長度與堿基組成

    本研究測(cè)定的11個(gè)牦牛類群110個(gè)個(gè)體的12SrRNA全序列,長度為962 bp、963 bp、964 bp或965 bp,T、C、A、G 4種核苷酸的平均比例分別為22.5%(22.4%~22.7%)、23.2%(23.0%~23.3%)、36.6%(36.4%~36.7%)、17.8%(17.7%~17.8%),見表2。

    2.3 12SrRNA基因的遺傳多樣性

    通過dnasp5軟件分析110只牦牛,共檢測(cè)出35種單倍體(見表3),其中帕里牦牛的單倍型高于其他8個(gè)類群,而桑日牦牛的單倍型數(shù)最小,為2。Tajima′s D檢驗(yàn)是中性檢驗(yàn)的一種,BQ、DQ、GD、PL、SB的Tajima′s D統(tǒng)計(jì)值為正值或者接近零(P>0.05),說明中性檢驗(yàn)不顯著,序列進(jìn)化方式為平衡選擇,且有一些單倍型分化;而其他6個(gè)類群的Tajima′s D統(tǒng)計(jì)值均為負(fù)值(0.01

    根據(jù)測(cè)得的序列推算其氨基酸序列組成(見表4),結(jié)果顯示,在11個(gè)類群的牦牛中,12SrRNA均含有20種氨基酸,共由321個(gè)氨基酸組成,統(tǒng)計(jì)發(fā)現(xiàn):12SrRNA各氨基酸平均含量在1%~11%之間變化,亮氨酸(Leu)的含量最高,為10.75%;苯丙氨酸(Phe)的含量最低,為1.60%。

    表2 西藏11個(gè)類群牦牛12SrRNA基因片段的堿基組成比較Table 2 The base composition of of 12SrRNA of Tibetan yak

    表3 西藏11個(gè)類群牦牛12SrRNA基因的核苷酸多樣性和單倍型多樣性Table 3 The nucleotide diversity and haplotype diversity of 12SrRNA of Tibetan yak

    表4 11種西藏牦牛12SrRNA的氨基酸組成Table 4 Average amino-acid composition of 12SrRNA of Tibetan yak

    2.4 11種牦牛類群12SrRNA基因序列間差異

    應(yīng)用Mega 5 軟件算出了11種牦牛及亞洲水牛、非洲水牛、歐洲野牛和家牛四種牛亞科12SrRNA序列間的相對(duì)遺傳距離,它們之間的序列差異在0.000~0.082(見表5)。其中帕里牦牛、斯布牦牛、巴青牦牛、丁青牦牛、江達(dá)牦牛與工布江達(dá)牦牛的序列差異最小為0.000,表明它們的親緣關(guān)系最近;康布牦牛與非洲水牛的序列差異最大為0.082,表明它們的親緣關(guān)系最遠(yuǎn)。圖3表明,相對(duì)于亞洲水牛、非洲水牛、歐洲野牛和家牛四種牛亞科的關(guān)系,西藏11種牦牛類群之間的遺傳距離更近,同源性更高。

    2.5 分子系統(tǒng)進(jìn)化

    分別用鄰接法和最小進(jìn)化法構(gòu)建11種西藏牦牛與亞洲水牛、非洲水牛、歐洲野牛和家牛四種牛亞科的12SrRNA基因序列系統(tǒng)進(jìn)化樹,如圖2~3所示,兩種方法得出大致相同的拓?fù)浣Y(jié)構(gòu)。結(jié)果顯示:

    表5 11種西藏牦牛12SrRNA兩兩序列間的遺傳距離Table 5 The genetic distance among 11 groups of 12SrRNA of Tibetan yak

    注:1-15分別為BQ、DQ、GD、JD、JL、KB、LWQ、PL、SB、SR、SS、B.taurus、B.bubalis、S.caffer、B.bonasus

    Note: No.1 to 15 are BQ、DQ、GD、JD、JL、KB、LWQ、PL、SB、SR、SS、B.taurus、B.bubalis、S.cafferandB.bonasusrespectively.

    圖2 用ME法構(gòu)建的12SrRNA基因序列系統(tǒng)進(jìn)化樹Fig.2 The ME phylogenetic tree between 11 groups of 12SrRNA

    圖3 用N-J法構(gòu)建的12SrRNA基因序列系統(tǒng)進(jìn)化樹Fig.3 The N-J phylogenetic tree between 11 groups of 12SrRNA

    帕里牦牛、斯布牦牛、巴青牦牛、丁青牦牛、江達(dá)牦牛、工布江達(dá)牦牛、康布牦牛與桑日牦牛同屬于一個(gè)單倍型,它們先與嘉黎牦牛聚在一起;桑桑牦牛和類烏齊牦牛為同一單倍體;以上兩聚合枝聚為一個(gè)合枝;家牛與非洲野牛聚在一起,亞洲水牛與非洲水牛聚在一起。11種西藏牦牛是同一屬的,因而它們之間的親緣關(guān)系比較近。枝上數(shù)值為重復(fù)1000次的支持率。以上系統(tǒng)進(jìn)化關(guān)系還可以從11種牦牛與亞洲水牛、非洲水牛、歐洲野牛和家牛四種牛亞科的遺傳距離得以驗(yàn)證(見表3)。

    3 討 論

    本試驗(yàn)根據(jù)NCBI上已有的亞洲水牛、非洲水牛、歐洲野牛和家牛四種牛類的線粒體基因組的信息設(shè)計(jì)引物,成功擴(kuò)增出西藏牦牛的線粒體12SrRNA基因序列。

    該基因長度為962~965 bp之間,其堿基含量與其他的牛類相近。A+T含量59.1%顯著高于G+C含量40.8%,表現(xiàn)出一定的堿基偏好性。相對(duì)于已經(jīng)研究的牦牛線粒體D-Loop控制區(qū)序列和細(xì)胞色b基因相比較,西藏牦牛的(A+T)% 略低[5-6]。序列比對(duì)還發(fā)現(xiàn),12SrRNA基因在線粒體基因組中的位置較為保守。

    Nei的定義說明核苷酸差異數(shù)目(歧義度)值越小,說明該群體的遺傳多樣性越低[7]。本研究測(cè)得11個(gè)牦牛類群間的核苷酸歧義度在0.01890~0.08774之間變化,而總的核苷酸歧義度為0.06421,表明群體間遺傳變異大于群體內(nèi)遺傳變異,說明西藏牦牛群體的遺傳變異主要存在于種群間。

    一些物種mtDNA的研究表明,細(xì)胞色素b基因和D-Loop控制區(qū)序列可適于屬內(nèi)不同種內(nèi)種間的系統(tǒng)發(fā)育分析[7-9]。而很多研究認(rèn)為,12SrRNA序列更適合較高階元類群的系統(tǒng)發(fā)育分析,相對(duì)而言,在一些低階的魚類等類群,線粒體進(jìn)化較快的區(qū)段12SrRNA基因序列不能夠提供有效的信息含量[10-12]。近年來,線粒體12SrRNA的二級(jí)結(jié)構(gòu)模型及變型在牦牛的物種鑒定和系統(tǒng)發(fā)育研究中得到廣泛應(yīng)用,以至于將成為今后的進(jìn)一步探討內(nèi)容[13-16]。

    本研究首次對(duì)牦牛的12SrRNA基因進(jìn)行克隆測(cè)序,并對(duì)其基因結(jié)構(gòu)進(jìn)行了初步分析,為探究牦牛線粒體基因組的遺傳特點(diǎn)、物種進(jìn)化關(guān)系以及物種多樣性分析等提供參考。

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