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    牛糞堆肥高溫期氨氧化古菌與氨氧化細(xì)菌的多樣性分析

    2013-11-24 04:00:10孫志遠(yuǎn)晏磊王彥杰林匡飛李輝王偉東
    關(guān)鍵詞:古菌牛糞克隆

    孫志遠(yuǎn),晏磊,王彥杰,林匡飛,李輝,王偉東

    (1.黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)農(nóng)學(xué)院,大慶163319;2.黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院;3.華東理工大學(xué)資源與環(huán)境工程學(xué)院)

    堆肥是牛糞等農(nóng)業(yè)有機(jī)固體廢棄物最有效的無害化處理和資源化利用技術(shù)之一,堆肥化后的產(chǎn)品是有機(jī)肥,可用于農(nóng)業(yè)生產(chǎn)。糞便等廢棄物在發(fā)酵過程中存在著嚴(yán)重的氮素?fù)p失,減輕堆肥過程中氮的損失對于保護(hù)環(huán)境和提高堆肥質(zhì)量至關(guān)重要[1]。硝化作用在氮循環(huán)中起著重要的作用,首先通過氨氧化細(xì)菌的氨氧化作用將氨氧化為亞硝酸鹽,然后利用亞硝酸細(xì)菌的亞硝酸鹽氧化作用將亞硝酸鹽氧化為硝酸鹽,其中氨氧化細(xì)菌介導(dǎo)的氨氧化是其限速步驟,主要由氨氧化細(xì)菌(AOB)的細(xì)菌來完成氨的氧化過程[2]。

    隨著氨氧化關(guān)鍵功能基因—氨單加氧酶功能基因(amoA)在泉古菌(Crenarchaeota)中的發(fā)現(xiàn),研究者們發(fā)現(xiàn)在海洋[3-5]、土壤[6-10]、淡水沉積物[11-12]、陸地?zé)崛猍13-17],生物反應(yīng)器[18-19]、河口沉積物[20-22]、地下水[23-25]、水族館[26]、冰川[27]等環(huán)境中的氨氧化過程都有氨氧化古菌(AOA)的蹤跡。氨氧化古菌的廣泛發(fā)現(xiàn)使人們改變了對氮循環(huán)的認(rèn)識(shí),因此,研究堆肥環(huán)境中AOB和AOA 的種類特征對于理解堆肥中的氮元素循環(huán)有著積極的作用,它們可能在堆肥環(huán)境中的氮循環(huán)中發(fā)揮著作用。

    近年來,國內(nèi)外學(xué)者利用分子生態(tài)學(xué)方法以16S rRNA 基因或amoA 基因?yàn)闃?biāo)記,對堆肥過程中AOB和AOA 種群特征和系統(tǒng)發(fā)育狀況進(jìn)行分析研究[28-29]。研究采用克隆技術(shù)對一牛糞為原料的條垛式堆肥高溫期的AOB 和AOA 群落結(jié)構(gòu)的進(jìn)行分析,通過研究AOA 和AOB 的生物多樣性及系統(tǒng)發(fā)育,希望為堆肥中氮循環(huán)研究提供理論和數(shù)據(jù)基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 堆肥原料

    堆肥樣品采自哈爾濱菁菁堆肥廠,原料為新鮮牛糞和秸稈。將牛糞與秸稈按體積比1∶1 混合,調(diào)節(jié)含水量60%~65%。每4 d 翻堆1 次。樣品采自堆肥化過程中的高溫期(第10 d)。各項(xiàng)理化參數(shù)見表1。

    表1 堆肥樣品理化參數(shù)Table 1 Physico-chemical features of compost sample

    1.2 堆肥樣品的采集,DNA 提取及純化

    于堆肥高溫期從堆體上、中、下3 層5 個(gè)位置取樣,充分混合均勻,現(xiàn)場測量樣品溫度及其他各項(xiàng)理化參數(shù),將樣品置于在-20 ℃冰箱保存。采用氯苯法[30]對樣品進(jìn)行DNA 的提取,用DNA 凝膠純化試劑盒(TaKaRa)純化DNA。

    1.3 amoA基因的擴(kuò)增

    利用引物對amoA-1F∶5′-GGGGTTTCTACTGGT GGT-3′和amoA-2R∶

    5′-CCCCTCKGSAAAGCCTTCTTC-3′進(jìn)行AOB amoA 基因的擴(kuò)增[31]。PCR 擴(kuò)增條件:94 ℃預(yù)變性4 min;94 ℃變性45 s,60 ℃復(fù)性45 s,72 ℃延伸1 min,擴(kuò)增35 個(gè)循環(huán);最后72 ℃延伸10 min。

    利用引物對Arch-amoAF∶5′-STAATGGTCTGGC TTAGACG-3′和Arch-amoAR∶

    5′-GCGGCCATCCATCTGTATGT-3′進(jìn) 行AOA amoA 基因的擴(kuò)增[32]。PCR 擴(kuò)增條件:95 ℃預(yù)變性4 min;94 ℃變性30 s,58 ℃復(fù)性20 s,72 ℃延伸1 min,擴(kuò)增30 個(gè)循環(huán)。最后72 ℃延伸10 min。

    PCR 產(chǎn)物在1.2%瓊脂糖凝膠電泳中檢測。

    PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物使用DNA 純化試劑盒Agarose Gel DNA Purification Kit Ver.2.0(TaKaRa)進(jìn)行純化。

    1.4 克隆文庫構(gòu)建和系統(tǒng)進(jìn)化分析

    將純化后PCR 產(chǎn)物,與pGEM-Teasy 載體(Promega,Madison,WI)在4 ℃條件下進(jìn)行連接,連接時(shí)間為16 h,將連接好的載體轉(zhuǎn)化入DH5α 大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞中。分別從涂有X-gal 和IPTG 的氨芐霉素的兩個(gè)LB 平板上(AOA,AOB)隨機(jī)挑取50 個(gè)克隆子采用特異引物M13-47 和RV-M 的PCR 擴(kuò)增進(jìn)行陽性古菌克隆子的篩選,最終將其中經(jīng)鑒定為陽性克隆子的30 個(gè)克隆子送上海生工測序,將其序列用mouth 軟件按相似度97%對AOA、AOB 序列進(jìn)行劃分,各分為5 個(gè)OTU,從每個(gè)OTU 中選出一條序列與NCBI GenBank 數(shù)據(jù)庫中的同源序列進(jìn)行比對。根據(jù)比對結(jié)果,選取相似度最高的同源序列作為參照序列,與研究代表序列結(jié)合在一起。然后,通過Bioedit 軟件包中的Clustal W,將序列對齊,并將對齊后的序列文件轉(zhuǎn)為MEGA4.0 軟件的文件輸入格式。最后,用MEGA4.0 軟件做系統(tǒng)進(jìn)化分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 堆肥樣品總DNA 提取、PCR 擴(kuò)增

    采用氯苯法提取的DNA 條帶較為清晰。AOA 與AOB amoA 基因的PCR 擴(kuò)增采用DNA 原液稀釋的方法進(jìn)行DNA 樣品PCR 擴(kuò)增,濃度稀釋在10~50 倍之間可達(dá)到較理想的擴(kuò)增效果。試驗(yàn)將DNA 原液稀釋20 倍為模板,擴(kuò)增堆肥樣品AOB 和AOA amoA基因。結(jié)果分別得到490 bp 和610 bp 大小的條帶(圖1 和圖2)。

    圖1 氨氧化細(xì)菌(AOB)PCR 產(chǎn)物Fig.1 Ammonia-oxidizing bacteria(AOB)PCR products

    2.2 AOB 種群構(gòu)成及多樣性

    研究氧化細(xì)菌的amoA 功能基因系統(tǒng)發(fā)育樹中的引物均屬于β-Proteobacteria,分別為亞硝化單胞菌屬(Nitrosomonas)分支和亞硝化螺菌(Nitrosospira)分支,2 個(gè)分支未找到相似的已知菌種amoA 功能基因序列。從系統(tǒng)發(fā)育樹來看,Nitrosospira Cluster 序列與主要來自于耕作土壤、湖泊底泥、熱泉、生物反應(yīng)器的amoA 基因序列聚集在同一分支上,其中CCS-4序列與Uncultured Nitrosomonas sp. clone AOB-R4-1(HQ230333) 的 同 源 性 為87% 。 這 與Nozomi Yamamoto[28]發(fā)現(xiàn)的amoA 基因序列相似,可能為一種新的氨氧化細(xì)菌。Nitrosomonas Cluster 主要與來自土壤、生物反應(yīng)器的amoA 基因序列聚集在同一分支上,種群結(jié)構(gòu)相對單一(圖3)。

    圖2 氨氧化古菌(AOA)PCR 產(chǎn)物Fig. 2 Ammonia-oxidizing Archaea(AOA)PCR products

    圖3 基于amoA 基因構(gòu)建的堆肥高溫期樣品的氨氧化細(xì)菌系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.3 Phylogenetic trees of ammonia-oxidizing bacteria(AOB)targeted on amoA gene

    2.3 AOA 種群構(gòu)成及多樣性

    從系統(tǒng)發(fā)育樹來看(圖4)研究AOA amoA 基因系統(tǒng)發(fā)育較為單一,克隆序列都屬于未培養(yǎng)的Crenarchaeota(泉古菌門)。通過amoA 功能基因序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹發(fā)現(xiàn),試驗(yàn)檢測到的AOA 與已知AOA 并不聚類到一個(gè)分支上,其中CCS6、7、9、10 所代表的OTU 克隆序列在研究樣品中AOA 基因文庫中占94.2%,與來自土壤、熱泉、生物反應(yīng)器,湖泊沉積物的AOA amoA 基因序列聚集在同一分支上;而與海洋沉積物的AOA amoA 基因序列相似性較高的僅有CCS-8 序列所代表的一個(gè)OTU。

    圖4 基于amoA 基因構(gòu)建的堆肥高溫期樣品的氨氧化古菌系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.4 Phylogenetic trees of ammonia-oxidizing archaea(AOA)targeted on amoA gene

    3 討論

    AOB 是一類化能自養(yǎng)型的微生物,廣泛分布于各種自然環(huán)境中。在伯杰氏細(xì)菌鑒定手冊第九版中將其分為5 個(gè)屬:亞硝化單胞菌屬(Nitrosomonas)、亞硝 化 螺 菌 (Nitrosospira)、 亞 硝 化 葉 菌 屬(Nitrosolobus)、亞硝化弧菌屬(Nitrosovibrio)和亞硝化球菌(Nitrosococcus)。研究利用AOB amoA 功能基因檢測到Nitrosospira 和Nitrosomonas,Nitrosomonas克隆子占整個(gè)克隆文庫的59.3%,Nitrosospira 為40.7%。從進(jìn)化樹看研究的AOB 基因序列與分布在淡水沉積物、干旱土壤、蔬菜土壤、生物反應(yīng)器等環(huán)境中的序列有很大的相似度,這與虞泳[33]和Shimaya[34]等以農(nóng)業(yè)廢棄物為原料的堆肥化過程中Nitrosospira 和Nitrosomonas 為堆肥中AOB 的優(yōu)勢種屬的研究結(jié)果一致。Nitrosomonas 是耐受性較強(qiáng)的種屬,存在于整個(gè)堆肥過程中。Chikako Shimaya 和Tomoyoshi Hashimoto 在50 ℃高溫條件下成功富集培養(yǎng)了堆肥中的嗜熱AOB,隨著培養(yǎng)條件的不斷成熟,人工培養(yǎng)的AOB 可能很快就會(huì)在實(shí)際的堆肥生產(chǎn)中發(fā)揮除氨固氮作用。

    氨氧化古菌(AOA)在氮素循環(huán)中的重要作用是最近幾年才被發(fā)現(xiàn)的,它們是一類以重碳酸鹽為碳源、利用銨態(tài)氮氧化產(chǎn)生細(xì)胞能量進(jìn)行化能無機(jī)自養(yǎng)生長的獨(dú)立于AOB 進(jìn)化分支外的進(jìn)化類群,屬于泉古菌門(Crenarchaeota)。AOA 不僅廣泛存在于自然界中,并且在菌體數(shù)量上也大大超過了AOB[35],有報(bào)道在牛糞堆肥過程中古菌的數(shù)量大于AOB[28]。研究在高溫好氧堆肥中同樣證實(shí)了AOA 的存在,所獲得的AOA amoA 基因序列都屬于泉古菌門(Crenarcharota),AOA 群落結(jié)構(gòu)比較單一,與土壤的同源性高的AOA 占大多數(shù),與海水及海洋沉積物中的AOA 的amoA 基因序列相似性很低,這表明堆肥環(huán)境中AOA 與土壤中AOA 可能有著相似近緣關(guān)系。由于數(shù)量與功能之間不一定是絕對相關(guān),因此,AOA 與AOB 在堆肥環(huán)境氮循環(huán)中的哪個(gè)更起到主要作用還需要通過活性檢測,但是由于AOA 的不可培養(yǎng)性限制了相關(guān)研究。

    當(dāng)然只根據(jù)所得到的序列還不足以說明AOB、AOA 與堆肥環(huán)境因子之間的響應(yīng)關(guān)系,尤其是AOA與AOB 哪種菌群在堆肥環(huán)境中對氮循環(huán)作用更大一些。研究發(fā)現(xiàn)溫度是影響硝化細(xì)菌的關(guān)鍵因子[36-37],并可能是影響硝化古菌的重要環(huán)境條件,嗜熱AOA 對溫度的變化具有很高的耐受能力,它們能夠活躍在38~97 ℃的溫泉、地礦等受地?zé)嵊绊懙沫h(huán)境中[38-40]。由于研究樣品采自堆肥高溫期,因此溫度可能是造成這種現(xiàn)象的因素,該AOA 菌群應(yīng)屬于嗜熱AOA 菌群。AOA 在堆肥環(huán)境中的發(fā)現(xiàn)拓寬了人們研究堆肥環(huán)境中氮循環(huán)的思路,為堆肥中的氮循環(huán)提供了新的研究方向。

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