戚麗華,張傳福,史云,胡曉豐,宋宏彬,劉雪林
軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院 疾病預(yù)防控制所,北京 100071
SmartAmp(smart amplification process)技術(shù)是日本學(xué)者M(jìn)itani等于2007年首先報(bào)道的一種新的DNA等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)。根據(jù)目標(biāo)序列設(shè)計(jì)5條引物,在Aac DNA聚合酶的作用下實(shí)現(xiàn)自循環(huán)鏈置換反應(yīng),并通過引物上結(jié)合的雜交敏感的熒光染料實(shí)現(xiàn)對(duì)擴(kuò)增過程的監(jiān)測(cè)[1]。和其他檢測(cè)方法相比,Smart?Amp技術(shù)具有快速、精確、靈敏、特異、背景低、成本低等優(yōu)點(diǎn)[2],目前在基因多態(tài)性分析、感染性疾病診斷,以及食品、環(huán)境中病原體快速檢測(cè)等方面已有初步應(yīng)用,并顯示了很好的應(yīng)用前景。
SmartAmp技術(shù)的基本原理,即獲取目標(biāo)序列后在等溫條件下對(duì)其反復(fù)進(jìn)行擴(kuò)增,并通過熒光實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè),以檢測(cè)目標(biāo)序列的存在。根據(jù)目標(biāo)序列保守區(qū)域設(shè)計(jì) turnback primer(TP)、forward primer(FP)、boost primer(BP)、outer primer 1(OP1)、outer primer 2(OP2)等共5條引物[3]。TP由退火序列和一段能夠與目標(biāo)序列互補(bǔ)的核苷酸序列構(gòu)成,F(xiàn)P帶有一個(gè)莖環(huán)結(jié)構(gòu),它們的退火位點(diǎn)分別位于目標(biāo)序列的兩端,可分別從兩端與互補(bǔ)的2條DNA單鏈退火,向?qū)?cè)延伸。OP1和OP2的退火位點(diǎn)分別位于TP和FP外側(cè),向中間退火延伸的同時(shí)將TP和FP延伸得到的雙鏈剝離。帶有TP或FP的單鏈被置換下來后又可作為模板,繼續(xù)上述過程,如此可形成2種關(guān)鍵的單鏈中間產(chǎn)物,這2種中間產(chǎn)物繼而分別以TP和FP的特殊結(jié)構(gòu)為起點(diǎn),進(jìn)行自身引導(dǎo)的DNA合成。這樣循環(huán)往復(fù),在Aac DNA聚合酶的作用下引起自循環(huán)鏈置換反應(yīng),實(shí)現(xiàn)目標(biāo)序列的大量擴(kuò)增[4]。在此過程中,其中一條引物上結(jié)合一種雜交敏感的熒光引物,一旦與互補(bǔ)序列退火雜交,即可發(fā)出一定強(qiáng)度的熒光,由實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀監(jiān)測(cè)。隨著擴(kuò)增反應(yīng)的進(jìn)行,熒光強(qiáng)度增大,當(dāng)超過檢測(cè)最低閾值時(shí)即可確定擴(kuò)增反應(yīng)的實(shí)現(xiàn),也即目標(biāo)序列的存在[1]。整個(gè)過程在60℃恒溫條件下30~40 min即可完成[3]。
SmartAmp技術(shù)具有獨(dú)特的錯(cuò)配抑制技術(shù),能夠識(shí)別單個(gè)核苷酸的差異。首先,反應(yīng)使用了5條不對(duì)稱引物,當(dāng)DNA鏈與任何一條引物不匹配時(shí),就會(huì)阻止后續(xù)的擴(kuò)增反應(yīng)。另外反應(yīng)體系中還加入了錯(cuò)配結(jié)合蛋白Taq MutS,如果引物出現(xiàn)單個(gè)堿基的錯(cuò)配,Taq MutS即結(jié)合到錯(cuò)配區(qū)域,使擴(kuò)增反應(yīng)停止[5],不再有熒光產(chǎn)生。SmartAmp的這一特點(diǎn)使得它能夠檢測(cè)出單個(gè)核苷酸的差異,從而成為單核苷酸多態(tài)性檢測(cè)的有力方法。這也是與其他等溫?cái)U(kuò)增技術(shù),如環(huán)介導(dǎo)恒溫?cái)U(kuò)增、鏈置換擴(kuò)增、核酸序列擴(kuò)增、轉(zhuǎn)錄酶擴(kuò)增、滾環(huán)擴(kuò)增、解鏈酶擴(kuò)增等相比,SmartAmp最為明顯的優(yōu)點(diǎn)。在病原微生物的檢測(cè)方面,SmartAmp也能夠降低其他污染的影響。
SmartAmp技術(shù)不需要核酸純化,在檢測(cè)過程中使用的Aac DNA聚合酶具有很強(qiáng)的抑制細(xì)胞污染物影響的能力,只需要一個(gè)簡單的熱處理使DNA和蛋白質(zhì)變性(如血樣,98℃ 3 min),即可直接分析臨床樣品。而PCR所用的Taq DNA聚合酶,極易因樣品不純而受到抑制,必須進(jìn)行DNA純化[1]。2009年,Victor等還提出使用一種SmartAmp等溫裂解緩沖液(SmartAmp isothermal lysis buffer,SIL-B),它能夠在60℃下溶解血細(xì)胞,使DNA變性,這樣就可以實(shí)現(xiàn)完全的等溫?cái)U(kuò)增[6]。
SmartAmp技術(shù)具有較低的背景。在其等溫?cái)U(kuò)增過程中使用的雜交敏感的熒光引物,相當(dāng)于一種序列特異性染料,一旦與互補(bǔ)序列雜交,引物上的熒光即向?qū)崟r(shí)PCR儀提供信號(hào)[1]。它在低背景下顯示了很高的信號(hào)強(qiáng)度,大大提高了反應(yīng)的信噪比。檢測(cè)的特異性和靈敏度也隨之增強(qiáng)[7]。
SmartAmp技術(shù)與傳統(tǒng)的檢測(cè)基因多態(tài)性的方法,如DNA芯片、限制性片段長度多態(tài)性PCR(PCR-RFLP)、等位基因特異性多 PCR(AS-PCR)、Se?quenom、TaqMan探針、Invader等相比,具有簡單、快速、成本低、靈敏度高等明顯優(yōu)勢(shì)。它的出現(xiàn),使得臨床上檢測(cè)基因多態(tài)性,而后制定個(gè)體化治療方案、給出相應(yīng)生活方式建議這一發(fā)展趨勢(shì)更加現(xiàn)實(shí)可行[5],能夠極大地促進(jìn)現(xiàn)代醫(yī)學(xué)的發(fā)展。
SmartAmp同樣可以用來檢測(cè)臨床樣本、食物、環(huán)境中的病原體[3,8]。目前常用的病原體檢測(cè)方法有培養(yǎng)法、噬菌體法、電化學(xué)方法、基因芯片、免疫學(xué)方法、PCR及同樣為等溫?cái)U(kuò)增的LAMP等,與這些方法相比,SmartAmp技術(shù)具有快速、簡單、成本低等明顯優(yōu)勢(shì)。各種方法的詳細(xì)比較見表1。
SmartAmp還可通過一步法對(duì)RNA進(jìn)行擴(kuò)增,稱為RT-SmartAmp,由Kawai等設(shè)計(jì)并應(yīng)用于2009年大流行的甲型流感H1N1病毒的快速檢測(cè)中[3]。只需在反應(yīng)體系中加入禽骨髓細(xì)胞瘤病毒(AMV)反轉(zhuǎn)錄酶,即可將RNA反轉(zhuǎn)錄和DNA擴(kuò)增合為一步。
另外,在臨床上還可以通過一種連接了電荷耦合相機(jī)的數(shù)字過程進(jìn)行檢測(cè),使用96孔板或384孔板及自動(dòng)化分裝單元能夠顯著增加處理量[7],這樣可極大地提高檢測(cè)效率,進(jìn)一步降低檢測(cè)成本。
SmartAmp作為一種新的DNA等溫?cái)U(kuò)增技術(shù),由于其具有簡單、快速、特異性強(qiáng)、靈敏度高[1,3,5]的特點(diǎn),目前已在感染性疾病診斷、基因快速篩查、個(gè)體化用藥等方面得到日益廣泛的應(yīng)用。
SmartAmp技術(shù)能夠用于細(xì)菌、病毒等病原體的快速檢測(cè)。依據(jù)其具有識(shí)別出單個(gè)核苷酸差異的能力,不同型別的菌毒株和耐藥的變異菌毒株也都能同時(shí)被快速檢測(cè)出來[6]。日本學(xué)者Kawai等在2009年將一步法RT-SmartAmp技術(shù)運(yùn)用到當(dāng)年大流行的甲型流感H1N1病毒的檢測(cè)中[3],并與廣泛使用的流感快速診斷試驗(yàn)進(jìn)行了比較,顯示SmartAmp方法在疾病早期即能檢出病毒,可同時(shí)區(qū)分2009年甲流毒株H1N1和季節(jié)性H1N1毒株,并且靈敏度高,有較好的特異性,是用于臨床H1N1流感病毒快速檢測(cè)的有效手段。
表1 病原體不同檢測(cè)方法比較
我們知道肥胖、心臟疾病、慢性炎性疾病等與患者的基因多態(tài)性有關(guān),SmartAmp技術(shù)可以分析這些基因標(biāo)志,臨床的起始材料可以是血樣、口腔拭子或指甲屑等。一旦知道了基因標(biāo)志,SmartAmp技術(shù)就是一種非常簡單、準(zhǔn)確度高、成本低的快速基因篩查方法[8]。目前將SmartAmp技術(shù)應(yīng)用到此方面的研究相對(duì)較多[19-22],如2009年Toyoda等用此方法分析發(fā)現(xiàn)了ABCC11基因野生型538G的等位基因538G>A和耳垢類型、腋臭、肺癌風(fēng)險(xiǎn)有關(guān)[19];2011年,Azuma等利用此方法對(duì)人CYP2A6基因進(jìn)行了分型,這種基因的多態(tài)性被認(rèn)為是日本男性吸煙者發(fā)生煙草相關(guān)肺癌的決定性因素[22]。
患者的遺傳學(xué)特征可決定機(jī)體對(duì)于藥物和臨床治療的反應(yīng)。檢測(cè)患者疾病相關(guān)基因的多態(tài)性,而后據(jù)此制定個(gè)體化治療方案,是現(xiàn)代醫(yī)學(xué)的發(fā)展方向[6]。然而,目前多數(shù)檢測(cè)技術(shù)因?yàn)榉治鏊俣嚷?、成本高而在臨床應(yīng)用上處在瓶頸期。SmartAmp作為一種廉價(jià)快速的技術(shù),對(duì)此領(lǐng)域起到了極大的推動(dòng)作用[23-24]。例如,2009年Mitani等用此方法分析了CYP2C9*2、CYP2C9*3和VKORC1-1639G>A基因的攜帶情況,這3種基因的多態(tài)性對(duì)華法林(一種廣泛使用的抗凝血藥)的藥代動(dòng)力學(xué)有重要影響,對(duì)它們進(jìn)行分析有助于指導(dǎo)調(diào)整臨床用藥劑量[5]。2010年,Okada等對(duì)血樣進(jìn)行了谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶M1、T1的分型,為臨床上評(píng)估與此相關(guān)的藥物誘發(fā)肝臟毒性的易感性提供了幫助[25]。又如,ABCC4基因中攜帶2269G>A等位基因的患者使用含硫代嘌呤藥物容易誘發(fā)造血系統(tǒng)毒性,攜帶此等位基因的患者須相應(yīng)地減少此類藥物的使用。2011年Aw等用此方法檢測(cè)了279名日本患者該等位基因的攜帶情況,指導(dǎo)了臨床用藥[23]。以上這些研究均證實(shí)了SmartAmp技術(shù)用來分析基因多態(tài)性的有效性。2008年Tatsumi等用SmartAmp技術(shù)檢測(cè)了原癌基因第12個(gè)密碼子的變異,以快速檢測(cè)胰腺癌的微小轉(zhuǎn)移灶,檢測(cè)在60 min內(nèi)完成,據(jù)此指導(dǎo)化療,能夠在很大程度上改善預(yù)后[26]。
SmartAmp作為一種新的DNA等溫?cái)U(kuò)增技術(shù),自2007年開發(fā)以來,已在個(gè)體化治療、快速基因篩查、感染性疾病診斷等領(lǐng)域中顯現(xiàn)出了其實(shí)際應(yīng)用價(jià)值,并證明了其具有操作簡便、用時(shí)少、成本低、靈敏度高、特異性強(qiáng)、能夠抑制背景影響等優(yōu)勢(shì)。而在食物、環(huán)境中病原體檢測(cè)方面,雖然尚未見相關(guān)研究報(bào)道,但SmartAmp方法的原理同樣適用,再加上其獨(dú)特的優(yōu)點(diǎn),使得它在這一領(lǐng)域也呈現(xiàn)出廣闊的應(yīng)用前景。隨著相應(yīng)試劑盒的開發(fā),SmartAmp技術(shù)有望成為一種簡易快速的常規(guī)檢測(cè)手段,具有廣闊的市場(chǎng)潛力。
[1]Mitani Y,Lezhava A,Kawai Y,et al.Rapid SNP diagnostics using asymmetric isothermalamplification and a new mis?match-suppression technology[J].Nat Methods,2007,4(3):257-262.
[2]http://www.dnaform.jp/smartamp/smartamp/index_e.html.
[3]Kawai Y,Kimura Y,Lezhava A,et al.One-step detection of the 2009 pandemic influenza A(H1N1)virus by the RT-Smart?Amp assay and its clinical validation[J].PLoS One,2012,7(1):1-12.
[4]http://www.dnaform.jp/smartamp/smartamp/amplification_e.html.
[5]Mitani Y,Sakurai A,Nagakura M,et al.Rapid and cost-ef?fective SNP detection method:application of SmartAmp2 to pharmacogenomicsresearch[J].Pharmacogenomics,2009,10(7):1187-1197.
[6]Victor S T,Lezhava A,Ishidao T,et al.Isothermal single nu?cleotide polymorphism genotyping and direct PCR from whole blood using a novel whole-blood lysis buffer[J].Mol Diagn Ther,2009,13(6):383-387.
[7]Lezhava A,Ishidao T,Ishizu Y,et al.Exciton primer-mediat?ed SNP detection in SmartAmp2 reactions[J].Hum Mutat,2010,31:208-217.
[8]http://www.dnaform.jp/smartamp/smartamp/application_e.html.
[9]劉巍,毛新亮.LAMP技術(shù)及其在人類傳染病病原體檢測(cè)的研究進(jìn)展[J].應(yīng)用預(yù)防醫(yī)學(xué),2007,13(4):247-250.
[10]路超,王長印,董振芳,等.環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)的應(yīng)用[J].分子診斷與治療雜志,2011,3(2):138-144.
[11]尹兵.實(shí)時(shí)熒光定量PCR的原理及應(yīng)用研究進(jìn)展[J].科技信息,2010,17:30-59.
[12]紀(jì)東,辛紹杰.實(shí)時(shí)熒光定量PCR的發(fā)展和數(shù)據(jù)分析[J].生物技術(shù)通訊,2009,20(4):598-600.
[13]陳彬,黃曉蓉,湯敏英,等.基因探針法快速檢測(cè)食品中金黃色葡萄球菌的研究[J].現(xiàn)代預(yù)防醫(yī)學(xué),2007,34(6):1017-1021.
[14]陳昱,潘迎捷,趙勇,等.基因芯片技術(shù)檢測(cè)3種食源性致病微生物方法的建立[J].微生物學(xué)通報(bào),2009,36(2):285-291.
[15]何勇琴,郭桂萍.ELISA法篩查食源性致病菌特異性抗體的影響因素探討及其應(yīng)用[J].免疫學(xué)雜志,2010,26(10):897-901.
[16]胡珂文,王劍平,蓋鈴,等.電化學(xué)方法在微生物快速檢測(cè)中的應(yīng)用[J].食品科學(xué),2007,28(12):526-530.
[17]董亞俊,鄭秀云.噬菌體法檢測(cè)結(jié)核分枝桿菌的臨床應(yīng)用[J].標(biāo)記免疫分析與臨床,2011,18(6):362-365.
[18]夏凡,楊麗君,王靜,等.病原性海洋弧菌致病機(jī)理及其快速檢測(cè)方法研究進(jìn)展[J].食品工業(yè)科技,2011,32(1):366-376.
[19]Toyoda Y,Sakurai A,Mitani Y,et al.Earwax,osmidrosis,and breast cancer:why does one SNP(538G>A)in the hu?man ABC transporter ABCC11 gene determine earwax type[J]?Faseb J,2009,23(6):2001-2013.
[20]Inoue Y,Mori T,Toyoda T,et al.Correlation of axillary osmi?drosis toaSNP intheABCC11genedeterminedbythe Smart smplification process(SmartAmp)method[J].J Plast Re?constr Aesthet Surg,2010,63(8):1369-1374.
[21]Ota I,SakuraiA,Toyoda Y,etal.Association between breast cancer risk and the wild-type allele of human ABC transporter ABCC11[J].Anticancer Res, 2010,30(12):5189-5194.
[22]Azuma K,Lezhava A,Shimizu M,et al.Direct genotyping of Cytochrome P450 2A6 whole gene deletion from human blood samples by the SmartAmp method[J].Clin Chim Acta,2011,412(13-14):1249-1251.
[23]Aw W,Lezhava A,Hyashizaki Y,et al.A new trend in per?sonalized medicine:rapid setection of SNPs in drug transport?er genes by the SmartAmp method[J].Clin Pharmacol Ther,2011,89(4):617-620.
[24]Lezhava A,Hayashizaki Y.Detection of SNP by the isother?mal smart amplification method[M]∥Komar A A.Single nucle?otide polymorphisms:methods and protocols.2nd Ed.Totowa:Humana Press Inc,2009:437-451.
[25]Okada R,Ishizu Y,Endo R,et al.Direct and rapid genotyp?ing ofglutathione-S-transferase M1 and T1 from human blood specimens using the SmartAmp2 method[J].Drug Metab Dispos,2010,38(10):1636-1639.
[26]Tatsumi K,Mitani Y,Watanabe J.et al.Rapid screening as?say for KRAS mutations by the modified smart amplification process[J].Mol Diagn,2008,10(6):520-526.