李瑞文 ,林亞秋 ,鄭玉才 ,張潤(rùn)鋒 ,宮佳琦 ,晁珊珊
1.西南民族大學(xué) 生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,四川 成都 610041;2.成都市第九人民醫(yī)院·成都市婦產(chǎn)科醫(yī)院 生殖與不孕研究所,四川 成都 610091;3.湖北師范學(xué)院 生命科學(xué)學(xué)院,湖北 黃石 435002
過(guò)氧化物酶體增殖物激活受體γ輔助活化因子1α(peroxisome proliferator-activated receptor γ co?activator-1α,PGC-1α)屬于與能量代謝關(guān)系最密切的PGC-1轉(zhuǎn)錄輔助活化因子家族,最早在酵母雙雜交體系中作為調(diào)控脂肪細(xì)胞分化的核受體PPARγ的輔激活因子被發(fā)現(xiàn)[1]。PGC-1α主要在能量代謝旺盛或富含線粒體的組織如心臟、肝臟、肌肉、腦、腎和棕色脂肪中表達(dá),具有明顯的組織特異性[2-3]。同時(shí),寒冷、禁食、鍛煉和激素等因素刺激可誘導(dǎo)PGC-1α表達(dá),然后與不同的轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合,在不同組織和生物反應(yīng)過(guò)程中發(fā)揮其多種功能。因PGC-1α在機(jī)體諸多代謝過(guò)程,如肌纖維類(lèi)型轉(zhuǎn)化、線粒體生成、氧化代謝、適應(yīng)性產(chǎn)熱、葡萄糖代謝和肥胖及相關(guān)疾病治療[4-7]等中發(fā)揮重要作用,所以成為近年來(lái)備受關(guān)注的核受體轉(zhuǎn)錄輔助激活因子。關(guān)于PGC-1α的研究多集中于陸生動(dòng)物,在水生動(dòng)物中的研究報(bào)道較少[8-9]。有報(bào)道顯示,PGC-1α在魚(yú)類(lèi)和陸生動(dòng)物某些方面的調(diào)控作用存在差異,如線粒體生成和對(duì)溫度的敏感性方面[8-10]。因此,為了解析PGC-1α在魚(yú)類(lèi)和陸上動(dòng)物中存在的差異,需要首先闡明該基因在魚(yú)類(lèi)中的序列特征。
齊口裂腹魚(yú)是我國(guó)青藏高原特有的冷水性魚(yú)類(lèi),屬鯉形目-鯉科-裂腹魚(yú)亞科-裂腹魚(yú)屬。其肉質(zhì)細(xì)嫩、味道鮮美,賴(lài)氨酸含量極為豐富,可作為賴(lài)氨酸的天然強(qiáng)化食品,在我國(guó)西部及東北地區(qū)的冷水養(yǎng)殖中具有很大的發(fā)展?jié)摿蛷V闊的市場(chǎng)養(yǎng)殖前景。我們以齊口裂腹魚(yú)肌肉組織為研究對(duì)象,通過(guò)克隆得到PGC-1α基因編碼區(qū)序列,檢測(cè)了其在基礎(chǔ)狀態(tài)和禁食狀態(tài)下在白肌和紅肌中的表達(dá)情況,為研究PGC-1α在齊口裂腹魚(yú)肌肉中的調(diào)控作用提供了基礎(chǔ)資料。
齊口裂腹魚(yú)(500±12 g)購(gòu)自四川省雅安市蘆山養(yǎng)殖場(chǎng),運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室后,在養(yǎng)殖單位為300 L的水族箱內(nèi)用海大牌鯉魚(yú)飼料飼養(yǎng)1周后開(kāi)始正式實(shí)驗(yàn)。實(shí)驗(yàn)用水為曝氣后自來(lái)水(pH6.5),實(shí)驗(yàn)期間控制水溫為20±1℃,水體溶氧保持在5.0 mg/L以上。實(shí)驗(yàn)分2組,對(duì)照組飼喂商業(yè)飼料,實(shí)驗(yàn)組2周未飼喂任何飼料,2周后取對(duì)照組和實(shí)驗(yàn)組齊口裂腹魚(yú)的紅肌和白肌組織,置液氮內(nèi)備用。
大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞、pMD-18T載體、反轉(zhuǎn)錄試劑盒、SYBR Premix Ex Taq(2×)染料、Taq DNA聚合酶購(gòu)自大連TaKaRa公司;DNA回收試劑盒購(gòu)自博大泰克公司。
嚴(yán)格按照Invitrogen公司TRIzol試劑說(shuō)明書(shū)提取齊口裂腹魚(yú)紅肌組織的總RNA,用紫外分光光度計(jì)和瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)總RNA質(zhì)量。用1 μg總RNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,按照TaKaRa公司的RNA PCR Kit(AMV)Ver.3.0的方法,以 Oligo(dT)為引物合成cDNA第一鏈。根據(jù)GenBank中斑馬魚(yú)(Danio re?rio)PGC-1α 基 因 序 列(M_002667531,AY998087,F(xiàn)J710604,DQ017637),用Primer Premier 5.0軟件設(shè)計(jì)2對(duì)PCR引物(包括完整的開(kāi)放讀框)F1(5'-GGATGGCGTGGGACAGGTGTAATC-3')、R1(5'-GC TGGGGTGGTGCTGTCTCGTT-3)和 F2(5'-CTGAG CAAGGCGTCCTCCACTATG-3')、R2(5'-TTACCTTC TCAGGCTGTACTGGG-3'),產(chǎn)物長(zhǎng)度分別為 1343、1425 bp,克隆策略見(jiàn)圖1。25 μL PCR反應(yīng)體系包括超純水 16.375 μL、2.5 mmol/L dNTP 混合液 2 μL、PCR 緩沖液 2.5 μL、25 mmol/L MgCl21.5 μL、cDNA 1.5 μL、25 mol/L 引 物 各 0.5 μL、0.5 U/L Taq DNA聚合酶0.125 μL。PCR條件:94℃預(yù)變性5 min;95℃ 45 s,62℃ 1 min,72℃ 1.5 min,38個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min。擴(kuò)增產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),并用DNA回收試劑盒回收目的條帶,回收產(chǎn)物連接pMD-18T載體,轉(zhuǎn)化后篩選陽(yáng)性克隆,提取質(zhì)粒并由上海英駿公司完成DNA測(cè)序。測(cè)序后采用NCBI的BLAST進(jìn)行序列同源性比對(duì),用在線軟件(http://www.marksgeneticsoftware.net/)確定轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn),用MEGA軟件制作物種進(jìn)化樹(shù)。
圖1 齊口裂腹魚(yú)PGC-1α基因cDNA的克隆策略
參照1.2的方法提取對(duì)照組和禁食組齊口裂腹魚(yú)紅肌和白肌組織的總RNA并進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄。用Primer Premier 5.0軟件根據(jù)齊口裂腹魚(yú)β-actin基因 序 列(JQ013000)和 所 獲 得 的 PGC-1α 序 列(JN195738)設(shè)計(jì)特異引物βF(GATTCGCTGGAGAT GATGCT)、βR(CGTTGTAGAAGGTGTGATGCC)(長(zhǎng)度為219 bp)和 PF(GCTGCCTTGGTTGGTGAA)、PR(CCTTGCCACCTGGGTATTG)(長(zhǎng)度為 439 bp),利用半定量RT-PCR檢測(cè)PGC-1α基因在紅肌和白肌中的表達(dá)情況。PGC-1α基因和β-actin基因PCR反應(yīng)體系同PGC-1α基因的克隆測(cè)序。PCR條件:94℃ 2 min;94℃ 30 s,56.8℃ 60 s/54.5℃ 60 s,72℃ 60 s,33個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min。產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳分離,用Bio-Rad凝膠成像系統(tǒng)拍照,用Quantity one軟件分析。數(shù)據(jù)用PGC-1α與β-actin條帶的光密度比值表示。
采用SPSS 13.0軟件分析所得數(shù)據(jù),用x±s表示;采用t檢驗(yàn)進(jìn)行顯著性分析,當(dāng)P<0.05時(shí)為差異顯著,P<0.01時(shí)差異極顯著。
按照?qǐng)D1的克隆策略,采用RT-PCR方法對(duì)齊口裂腹魚(yú)紅肌中的PGC-1α基因進(jìn)行擴(kuò)增,均獲得2條特異區(qū)帶,與預(yù)期片段大小一致(圖2)。獲得的特異擴(kuò)增序列經(jīng)膠回收和雙向測(cè)定后,拼接得到其cDNA序列2633 bp(GenBank登錄號(hào)為JN195738),其中開(kāi)放讀框(ORF)為2631 bp,編碼876個(gè)氨基酸殘基。轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)分析表明,該序列包括MyOD、CREB和C/EBP等結(jié)合位點(diǎn)。氨基酸序列分析發(fā)現(xiàn)N端含有LXXLL(142~146殘基)轉(zhuǎn)錄激活區(qū),C端含有一個(gè)RNA結(jié)合區(qū)域(755~822殘基)和富含絲氨酸/精氨酸的結(jié)構(gòu)域(SR結(jié)構(gòu)域)(646~677殘基)(圖3)。BLAST比對(duì)結(jié)果顯示齊口裂腹魚(yú)的PGC-1α氨基酸序列同GenBank登錄的人、小鼠、大鼠、牛、豬、雞、斑馬魚(yú)、草魚(yú)、虹鱒、金體美鳊、弓鰭魚(yú)、金魚(yú)和線翎電鰻的PGC-1α氨基酸序列的同源性為49%~93%,繪制的進(jìn)化樹(shù)見(jiàn)圖4。
圖2 齊口裂腹魚(yú)肌肉組織組織PGC-1α基因的RT-PCR結(jié)果
取對(duì)照組和禁食處理2周的實(shí)驗(yàn)組齊口裂腹魚(yú)的紅肌和白肌,用半定量RT-PCR檢測(cè)PGC-1α mRNA表達(dá)水平的變化。結(jié)果表明,在基礎(chǔ)狀態(tài)下,PGC-1α在紅肌中的表達(dá)顯著高于白肌中(P<0.05),與對(duì)照組相比,在禁食誘導(dǎo)2周的情況下,PGC-1α mRNA在紅肌和白肌中的表達(dá)水平顯著升高(P<0.05)(圖5)。這一結(jié)果證明通過(guò)禁食誘導(dǎo)可以顯著提高PGC-1α在肌肉中的表達(dá)水平。
PGC-1家族包括PGC-1α、PGC-1β和PGC-1相關(guān)輔激活因子(PGC-1-related coactivator,PRC)等3個(gè)成員,是迄今與能量代謝關(guān)系最為密切的轉(zhuǎn)錄因子家族[2],在許多脊椎動(dòng)物如靈長(zhǎng)類(lèi)、嚙齒動(dòng)物、反芻動(dòng)物、鳥(niǎo)類(lèi)、兩棲類(lèi)和魚(yú)類(lèi)中都存在[11]。但關(guān)于PGC-1α在魚(yú)類(lèi)中的序列特征分析尚缺乏。本研究獲得了齊口裂腹魚(yú)PGC-1α基因的cDNA序列,轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)分析發(fā)現(xiàn)齊口裂腹魚(yú)具有其他哺乳動(dòng)物所有的MyOD、CREB、C/EBP等結(jié)合位點(diǎn),但不存在MEF-2和胰島素應(yīng)答序列(IRS)結(jié)合位點(diǎn)。PGC-1α蛋白質(zhì)序列與其他脊椎動(dòng)物具有相似的典型結(jié)構(gòu)域,即N端含有LXXLL轉(zhuǎn)錄激活區(qū),C端含有RNA結(jié)合區(qū)和SR結(jié)構(gòu)域。蛋白質(zhì)同源性分析發(fā)現(xiàn),齊口裂腹魚(yú)的PGC-1α與同鯉科的草魚(yú)、金魚(yú)和斑馬魚(yú)的同源性較高,分別為93%、91%和88%,但與陸生動(dòng)物的同源性較低。以上數(shù)據(jù)提示PGC-1α可能在魚(yú)類(lèi)和陸生動(dòng)物中存在相同和不同的作用。
為了研究PGC-1α在齊口裂腹魚(yú)肌肉中的調(diào)控作用,我們用半定量RT-PCR方法檢測(cè)了其在齊口裂腹魚(yú)白肌和紅肌中的表達(dá)水平,發(fā)現(xiàn)在基礎(chǔ)狀態(tài)下,PGC-1α在紅肌中的表達(dá)顯著高于白肌中。這與PGC-1α的組織表達(dá)特異性相符,因?yàn)榕c白肌相比,紅肌富含線粒體。Tiraby等也指出,PGC-1α在新生兒及哺乳動(dòng)物的棕色脂肪細(xì)胞中的表達(dá)量顯著高于白色脂肪細(xì)胞[12],與本實(shí)驗(yàn)結(jié)果相一致。對(duì)陸上動(dòng)物,多采用體外誘導(dǎo)PGC-1α表達(dá)來(lái)研究該基因在肌肉中的功能,如通過(guò)運(yùn)動(dòng)、溫度等探討其對(duì)肌肉線粒體和肌纖維類(lèi)型轉(zhuǎn)換的影響,但這2種手段在魚(yú)類(lèi)中難以施展[8-9,13]。我們還檢測(cè)了禁食狀態(tài)下PGC-1α在紅肌和白肌中的表達(dá)情況,發(fā)現(xiàn)禁食可以顯著誘導(dǎo)該基因在齊口裂腹魚(yú)肌肉中的表達(dá)水平,提示可以通過(guò)禁食誘導(dǎo)PGC-1α表達(dá),進(jìn)而檢測(cè)與肌肉能量代謝相關(guān)基因的變化,最終闡明PGC-1α在肌肉中的調(diào)控作用。
圖3 齊口裂腹魚(yú)PGC-1α核苷酸序列和推測(cè)的氨基酸序列
圖4 齊口裂腹魚(yú)PGC-1α氨基酸序列進(jìn)化樹(shù)
圖5 PGC-1α在齊口裂腹魚(yú)紅肌和白肌中的表達(dá)
[1]Puigserver P,Wu Z,Park C W,et al.A cold-inducible coact?ivator of nuclear receptors linked to adaptive thermogenesis[J].Cell,1998,92(6):829-839.
[2]Handschin C.Regulation of skeletal muscle cell plasticity by the peroxisome proliferator-activated receptorγ coactivator 1α[J].J Receptors Signal Transduction,2010,3(6):376-384.
[3]吉紅,劉品,李杰,等.草魚(yú)PGC-1α基因的表達(dá)及飼喂n-3 HUFAs對(duì)其影響[J].水產(chǎn)學(xué)報(bào),2010,34(9):1327-1334.
[4]Yan Z,Okutsu M,Akhtar Y N,et al.Regulation of exer?cise-induced fiber type transformation,mitochondria biogene?sis,and angiogenesis in skeletal muscle[J].J Appl Physiol,2011,110(1):264-274.
[5]Lin J,Wu H,Tarr P T,et al.Transcriptional co-activator PGC-1a drives the formation of slow-twitch muscle fibre[J].Nature,2002,418:797-801.
[6]Ventura-Clapier R,Garnier A,Veksler V.Transcriptional con?trol of mitochondrial biogenesis:the central role of PGC-1al?pha[J].Cardiovasc Res,2008,79:208-217.
[7]Summermatter S,Troxler H,Santos G,et al.Coordinated bal?ancing of muscle oxidative metabolism through PGC-1α in?creases metabolic flexibility and preserves insulin sensitivity[J].Biochem Biophys Res Commun,2011,408(1):180-185.
[8]LeMoine C M R,Genge C E,Moyes C D.Role of the PGC-1 family in the metabolic adaptation of goldfish to diet and temperature[J].J Exp Biol,2008,21(9):1448-1455.
[9]O'Brien K M.Mitochondrial biogenesis in cold-bodied fishes[J].J Exp Biol,2011,214:275-285.
[10]McClelland G B,Craig P M,Dhekney K,et al.Temperature?and exercise-induced gene expression and metabolic enzyme changes in skeletal muscle of adult zebrafish(Danio rerio)[J].J Physiol,2006,577:739-751.
[11]Lin J,Handschin C,Spiegeman B M.Metabolic control through the PGC-1 family oftranscription coactivators[J].Cell Metab,2005,1(6):361-370.
[12]Tiraby C,Langin D.Conversion from white to brown adipo?cytes:a strategy for the control of fat mass[J].Trends Endocri?nol Metab,2003,14(10):439-441.
[13]LeMoine C M R,Craig P M,Julie K D,et al.Temporal and spatial patterns of gene expression in skeletal muscles in re?sponse to swim training in adult zebrafish(Danio rerio)[J].J Comp Physiol B,2010,180:151-160.