李晉菊, 丁碧藍(lán), 許曉玲, 張劍凱, 黃 穎, 李 濤, 吳柱國△
(廣東醫(yī)學(xué)院 1兒科專業(yè)碩士研究生, 2第二臨床學(xué)院, 3廣東省醫(yī)學(xué)分子診斷重點(diǎn)實驗室, 廣東 東莞 523808)
胰島素樣生長因子I通過改善線粒體功能保護(hù)新生大鼠心肌細(xì)胞免于凋亡*
李晉菊1#, 丁碧藍(lán)2, 許曉玲2, 張劍凱3, 黃 穎3, 李 濤3, 吳柱國2△
(廣東醫(yī)學(xué)院1兒科專業(yè)碩士研究生,2第二臨床學(xué)院,3廣東省醫(yī)學(xué)分子診斷重點(diǎn)實驗室, 廣東 東莞 523808)
目的探討線粒體機(jī)制在胰島素樣生長因I(IGF-I)保護(hù)心肌細(xì)胞中的作用。方法體外培養(yǎng)新生大鼠心肌細(xì)胞,過氧化氫處理誘導(dǎo)凋亡,JC-1線粒體膜電位檢測法和透射電鏡觀察心肌細(xì)胞線粒體膜電位和形態(tài)的改變,Annexin V-FITC/PI雙染色法、caspase-3活性測定、DNA-ladder分析和Hoechst 33258染色方法觀察心肌細(xì)胞凋亡的情況。結(jié)果過氧化氫可誘導(dǎo)心肌細(xì)胞凋亡,siRNA下調(diào)Kruppel 樣因子9(KLF9)48 h后,心肌細(xì)胞線粒體膜電位下降率明顯降低,由對照組的(24.0±1.6)%,降為IGF-I處理組的(18.3±1.2)%和KLF9下調(diào)組的(15.2±1.2)%;線粒體形態(tài)明顯改善;DNA片段化改善;caspase-3活性降低,與對照組相比IGF-I處理組降低(1.30±0.28)倍,KLF9下調(diào)組降低(1.31±0.43)倍;Annexin V-FITC/PI雙染法顯示細(xì)胞凋亡率對照組為(42.5±1.8)%,IGF-I處理組為(22.4±4.2)%,KLF9下調(diào)組為(32.5±3.5)%;Hoechst 33258染色結(jié)果顯示凋亡小體減少,KLF9下調(diào)組與IGF-I的抗心肌細(xì)胞凋亡效果相似。結(jié)論IGF-I通過下調(diào)KLF9表達(dá)改善線粒體功能,保護(hù)心肌細(xì)胞免于凋亡。
心肌細(xì)胞; 胰島素樣生長因子I; Kruppel 樣因子9; 線粒體; 細(xì)胞凋亡
胰島素樣生長因子I(insulin-like growth factor I, IGF-I)是一類無論在結(jié)構(gòu)和功能上都與胰島素比較相似的生長因子。大量體內(nèi)、外實驗研究表明,IGF-I可以保護(hù)心肌細(xì)胞免于凋亡[1-2],而且在心肌梗死的患者體內(nèi)IGF-I濃度降低[3]。線粒體在細(xì)胞凋亡的過程中扮演重要角色,線粒體是細(xì)胞內(nèi)還原性氧自由基(reactive oxygen species,ROS)的主要來源,通過細(xì)胞色素C向胞內(nèi)的釋放、電子傳遞的改變以及膜電勢和通透性的改變參與細(xì)胞凋亡的過程[4]。我們的前期研究發(fā)現(xiàn),IGF-I可以通下調(diào)Kruppel樣因子9 (Kruppel-like factor 9,KLF9)從而進(jìn)一步下調(diào)細(xì)胞色素C家族的P4501A1 (cytochrome P450 1A1,CYP1A1),保護(hù)心肌細(xì)胞免于凋亡[5]。細(xì)胞色素C從線粒體的釋放正是細(xì)胞凋亡的標(biāo)志之一[6]。作為體內(nèi)從不休息的細(xì)胞,心肌細(xì)胞的線粒體含量最為豐富[7],那么IGF-1保護(hù)心肌細(xì)胞免于凋亡的同時是否也可以恢復(fù)線粒體功能,這一問題的回答將使我們進(jìn)一步明確IGF-I保護(hù)心肌細(xì)胞免于凋亡的機(jī)制。因此本文觀察了利用KLF9特異性siRNA下調(diào)KLF9基因表達(dá)以后,誘導(dǎo)凋亡狀態(tài)下新生大鼠心肌細(xì)胞線粒體功能的恢復(fù)情況,及其與凋亡的相關(guān)性。
1動物
初生1~3 d的SD新生大鼠購自廣州中醫(yī)藥大學(xué)實驗動物中心。
2試劑與儀器
DMEM培養(yǎng)基購于邁晨公司,Lipofectamine 2000、胎牛血清和0.25%胰酶購于Invitrogen,IGF-I 由Genentech公司惠贈,KLF9 siRNA及control siRNA購自Santa Cruz,caspase-3 和DNA-ladder檢測試劑盒購自Merck, Hoechst 33258和線粒體膜電位檢測試劑盒購自碧云天生物技術(shù)公司,Annexin V-FITC/PI雙染色檢測試劑盒購于凱基公司,其它常規(guī)試劑購自Sigma。電泳儀器采用Bio-Rad的Mini-PROTEAN System。圖像采集應(yīng)用Bio-Rad的Molecular Imager VersaDoc MP Systems。透射電鏡觀察由中山大學(xué)電鏡室協(xié)助完成。
3主要方法
3.1細(xì)胞培養(yǎng)、誘導(dǎo)凋亡與轉(zhuǎn)染 將生后1~3 d的SD新生大鼠浸入裝有75%乙醇的燒杯中消毒,將消毒好的乳鼠置于大玻璃培養(yǎng)皿中(120 mm),在無菌條件下用眼科剪子及鑷子開胸取出心臟,取3個小培養(yǎng)皿,各加預(yù)先溫育的Ca2+free medium 5~10 mL,把心臟放于3個培養(yǎng)皿中漂洗3次至心臟表面無血漬,洗滌液澄清為止,把心臟放入一小玻璃培養(yǎng)皿(75 mm)中剪成小塊,一個心臟剪成5塊,將剪好的心臟轉(zhuǎn)移至預(yù)先裝有9 mL胰酶的小燒杯中,用磁力攪拌器攪拌10 min,,速度為保持轉(zhuǎn)動的最低速(約60 r/min)靜置1 min左右,待自然沉降后吸取上層混懸液丟棄,補(bǔ)充至原來體積的胰酶繼續(xù)消化10 min,靜置1 min左右,待自然沉降后吸取上層混懸液至50 mL離心管Ⅰ,輕吹打幾下使心肌細(xì)胞呈單個分散狀態(tài)后馬上850 r/min、22 ℃離心7 min,棄上清,加5 mL Ca2+DMEM重懸細(xì)胞,吸取轉(zhuǎn)移至50 mL離心管Ⅱ安放一旁,重復(fù)上步驟7~10次直至組織塊完全消化為止,將所有收集到離心管Ⅱ中的細(xì)胞懸液850 r/min、22 ℃離心7 min,棄去上清,加入20 mL DMEM輕吹打,分別裝入2個10 cm培養(yǎng)皿中,放置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)90 min后,收集培養(yǎng)液中的非貼壁細(xì)胞轉(zhuǎn)移到50 mL新離心管,850 r/min、22 ℃ 離心7 min,棄上清,吸取40 mL DMEM培養(yǎng),24 h后觀察細(xì)胞的貼壁情況, 48 h后換液。以后每2~3 d換1次。
誘導(dǎo)凋亡時,先用無血清DMEM洗細(xì)胞3次,然后換成無血清的DMEM繼續(xù)培養(yǎng)。同時分別加IGF-I 10 nmol/L和KLF9 siRNA 10 μmol/L。KLF9 siRNA轉(zhuǎn)染方法參見Lipofectamine 2000操作手冊,24 h或32 h后均加H2O2200 μmol/L,48 h后收集細(xì)胞。
3.2DNA片段化分析 每個樣品收集1×106個細(xì)胞,按照 Merck的DNA-ladder檢測試劑盒說明書操作。
3.3Caspase-3活性分析 收集1×106個細(xì)胞,做好標(biāo)記,PBS重懸細(xì)胞,以4 ℃、500×g離心5 min,棄上清。每1×106個細(xì)胞加50 μL Sample Buffer A (49 μL Sample buffer+0.1 μL PMSF+0.9 μL DTT),渦旋混合。冰上孵育10 min,4 ℃、1 000×g離心10 min。 轉(zhuǎn)移上述溶解液至96孔板上,每孔加50 μL Assay Buffer B (49 μL Assay Buffer+ 0.1 μL PMSF+0.9 μL DTT),混勻, 每孔加入10 μL caspase-3 底物,蓋上蓋,37 ℃孵育2 h,進(jìn)行酶標(biāo)儀檢測,選擇激發(fā)光波長400 nm,發(fā)射光波長550 nm,記錄熒光值,以正常心肌細(xì)胞組caspase-3熒光值為基準(zhǔn),求出各組的caspase-3相對活性,并繪制柱狀圖。
3.4Hoechst 33258染色 適量細(xì)胞培養(yǎng)于6孔板中,用PBS洗3次,加入1 mL固定液,4 ℃固定過夜,去除固定液,用PBS洗2次,每次用搖床晃3 min,吸盡液體。加入1 mL Hoechst 33258染色液,染色5 min,手動晃動數(shù)次,去除染色液,用PBS洗2次,每次用搖床晃3 min,吸緊液體。加1滴抗熒光淬滅劑于6孔板內(nèi),激發(fā)波長350 nm,發(fā)射波長460 nm,熒光顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)并拍照。
3.5Annexin V-FITC/PI雙染法 按凱基公司Annexin V-FITC/PI雙染色檢測試劑盒說明書操作。(0.5~1)×105細(xì)胞加入195 μL Annexin V-FITC 結(jié)合液和5 μL Annexin V-FITC,輕輕混勻,室溫避光孵育10 min,1000×g離心5 min,棄上清,加入190 μL Annexin V-FITC 結(jié)合液輕輕重懸細(xì)胞,加入10 μL PI染色液,隨即進(jìn)行流式細(xì)胞儀檢測,Annexin V-FITC為綠色熒光,PI為紅色熒光。
3.6線粒體膜電位檢測 按碧云天公司的JC-1線粒體膜電位檢測試劑盒說明書操作。(1~6)×105細(xì)胞重懸于0.5 mL培養(yǎng)液,加入0.5 mL JC-1染色液,37 ℃孵育20 min,600×g離心3 min,用JC-1染色緩沖液洗滌2次,再用適量JC-1染色緩沖液重懸后,用流式細(xì)胞儀分析。
3.7透射電鏡的檢測 吸出細(xì)胞培養(yǎng)液,用細(xì)胞刮輕輕刮下細(xì)胞至2 mL 離心管中,4 ℃、500×g離心5 min,加入2.5%戊二醛固定液,固定5 min,4 ℃、500×g離心5 min,勿搖晃,保持標(biāo)本在4 ℃(冰盒)中,送電鏡室進(jìn)行環(huán)氧樹脂包埋,超薄切片, 鋨酸染色,在透射電鏡下觀察線粒體超微結(jié)構(gòu)并拍照。
4統(tǒng)計學(xué)處理
數(shù)據(jù)用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示,采用多組間比較的單因素方差分析,組間數(shù)據(jù)兩兩比較用Bonferroni檢驗,數(shù)據(jù)采用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
1乳鼠原代心肌細(xì)胞分離與培養(yǎng)
利用差異吸附方法,我們成功地分離了新生大鼠心肌細(xì)胞,通過倒置相差顯微鏡觀察,貼壁的心肌細(xì)胞呈梭形、菱形或多角形,可觀察到輕微搏動,心肌細(xì)胞比例占90%以上,見圖1。
Figure 1. The morphology of neonatal rat primary myocardial cells.A: phase contrast; B: HE staining.
圖1新生大鼠心肌細(xì)胞的形態(tài)
2KLF9特異性siRNA下調(diào)新生大鼠心肌細(xì)胞KLF9基因的表達(dá)
KLF9特異性siRNA轉(zhuǎn)染新生大鼠心肌細(xì)胞后,可以特異性地下調(diào)新生大鼠心肌細(xì)胞KLF9的mRNA及蛋白表達(dá),見圖2。
Figure 2.KLF9-specific siRNA inhibited KLF9 mRNA (A) and protein (B) expression in neonatal rat primary myocardial cells.Mean±SD.n=3.*P<0.05vscontrol siRNA.
圖2KLF9特異性siRNA抑制新生大鼠心肌細(xì)胞KLF9mRNA和蛋白的表達(dá)
3KLF9基因表達(dá)下調(diào)可以改善新生大鼠心肌細(xì)胞的凋亡
由圖3A可見,IGF-I刺激或用特異性siRNA阻斷KLF9表達(dá),均可改善由過氧化氫處理導(dǎo)致細(xì)胞凋亡引起的DNA片段化。流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果顯示,IGF-I刺激或用特異性siRNA阻斷KLF9表達(dá),均使心肌細(xì)胞的凋亡率下降,對照組為(42.5±1.8)%,IGF-I處理組為(22.4±4.2)%,KLF9siRNA組為(32.5±3.5)%,差異顯著,見圖3B。Hoechst 33258染色結(jié)果顯示(圖3C),KLF9 siRNA組和IGF-I組較control siRNA組相比較,凋亡小體較少。Control siRNA組caspase-3活性(圖3D)為正常未處理組細(xì)胞的(1.98±0.39)倍, IGF-I組與KLF9 siRNA組分別為(1.30±0.28)倍及(1.31±0.43)倍,IGF-I組與KLF9 siRNA組caspase-3活性較control siRNA組均有下降,差異顯著(P<0.01)。
Figure 3. Cardiomyocyte apoptosis after down-regulation ofKLF9 expression. A: DNA-ladder;B: Annexin V-FITC/PI C: Hoechst 33258 staining; D: caspase-3 activity.1: normal; 2: 10 nmol/L IGF-I+200 μmol/L H2O2; 3: control siRNA+200 μmol/L H2O2; 4:KLF9 siRNA+200 μmol/L H2O2.Mean±SD.n=3.*P<0.05vscontrol siRNA.
圖3下調(diào)KLF9表達(dá)后心肌細(xì)胞凋亡的情況
4KLF9基因表達(dá)下調(diào)可以改善新生大鼠心肌細(xì)胞線粒體膜電勢
Control siRNA組線粒體膜電位下降(24.0±1.63)%,而IGF-I處理組和KLF9 siRNA組線粒體膜電位下降分別為(18.3±1.2)%和(15.2±1.2)%,IGF-I組和KLF9 siRNA組線粒體膜電位較control siRNA組有明顯改善,見圖4。以上結(jié)果說明KLF9基因表達(dá)下調(diào)可以改善由過氧化氫引起的心肌細(xì)胞線粒體損傷。
5KLF9基因表達(dá)下調(diào)可以改善新生大鼠心肌細(xì)胞線粒體形態(tài)
Control siRNA組線粒體腫脹,線粒體膜結(jié)構(gòu)不完整,而IGF-I處理或用特異性siRNA阻斷KLF9表達(dá),仍有線粒體的腫脹,但與control siRNA組相比,線粒體形態(tài)明顯改善,見圖5。
IGF-I可以通過調(diào)控心肌細(xì)胞的基因表達(dá)而保護(hù)心肌細(xì)胞免于凋亡[8],并且可以保護(hù)低溫誘導(dǎo)的心臟損傷[9]。在我們的前期工作中發(fā)現(xiàn)IGF-I可以下調(diào)心肌細(xì)胞KLF9的表達(dá),由于KLF9是一個轉(zhuǎn)錄因子,因此其表達(dá)發(fā)生改變以后會進(jìn)一步影響受其調(diào)控的基因的表達(dá)。目前研究發(fā)現(xiàn)KLF9主要調(diào)控細(xì)胞色素C家族成員的表達(dá)[10-12],而細(xì)胞色素C主要存在于線粒體當(dāng)中。線粒體功能不全與心血管疾病的發(fā)生密切相關(guān)[13],在重癥休克時,線粒體功能不全使平滑肌細(xì)胞中ATP生成減少,它是引起血管收縮反應(yīng)下降和頑固性低血壓的原因之一[14]。在某些因素誘導(dǎo)下,線粒體結(jié)構(gòu)發(fā)生破壞,膜通透性增加,細(xì)胞色素C外流,這是細(xì)胞凋亡的重要原因[15]。細(xì)胞色素C是催化細(xì)胞內(nèi)ROS產(chǎn)生的主要酶類,下調(diào)其表達(dá)會導(dǎo)致ROS產(chǎn)生減少,從而保護(hù)由ROS引起的細(xì)胞凋亡。在肝細(xì)胞中下調(diào)CYP2E1和1A1表達(dá),對細(xì)胞凋亡有明顯的保護(hù)作用[16-17]。本研究在前期工作的基礎(chǔ)上,發(fā)現(xiàn)IGF-I可以通過下調(diào)KLF9的基因表達(dá),部分恢復(fù)過氧化氫誘導(dǎo)下心肌細(xì)胞的線粒體功能,這種恢復(fù)作用是通過下調(diào)細(xì)胞色素C的基因表達(dá)來實現(xiàn)的[5],而且這種保護(hù)與心肌細(xì)胞的凋亡密切相關(guān)。這一發(fā)現(xiàn)進(jìn)一步強(qiáng)調(diào)了線粒體在心肌細(xì)胞凋亡中的作用,揭示了IGF-I保護(hù)心肌細(xì)胞免于凋亡的新機(jī)制,為心臟病的防治提供新的依據(jù)。
Figure 4. The fall rate of cardiomyocyte mitochondrial membrane potential after down-regulation ofKLF9 expression.Mean±SD.n=3.*P<0.05vscontrol siRNA.
圖4下調(diào)KLF9表達(dá)后心肌細(xì)胞線粒體膜電位的變化
Figure 5. The cardiomyocyte mitochondrial morphology after down-regulation ofKLF9 expression.A:normal;B:control siRNA+H2O2; C:IGF-I+H2O2;D:KLF9 siRNA+H2O2.
圖5下調(diào)KLF9表達(dá)后心肌細(xì)胞線粒體形態(tài)的變化
[1] Wang L, Ma W, Markovich R, et al. Regulation of cardiomyocyte apoptotic signaling by insulin-like growth factor I [J]. Circ Res,1998,83(5): 516-522.
[2] Wang PH. Roads to survival: insulin-like growth factor-1 signaling pathways in cardiac muscle[J]. Circ Res,2001,88(6): 552-554.
[3] Yuan R, Tsaih SW, Petkova SB, et al. Aging in inbred strains of mice: study design and interim report on median lifespans and circulating IGF1 levels[J]. Aging Cell,2009,8(3): 277-287 .
[4] Green DR, Reed JC. Mitochondria and apoptosis[J]. Science,1998,281(5381): 1309-1312.
[5] 吳柱國,劉世明, 李 濤. 胰島素樣生長因子保護(hù)心肌細(xì)胞免于凋亡的可能新機(jī)制[J]. 中華高血壓雜志,2010,18(1): 85-90.
[6] Ekhterae D, Lin Z, Lundberg MS, et al. ARC inhibits cytochromecrelease from mitochondria and protects against hypoxia-induced apoptosis in heart-derived H9c2 cells[J]. Circ Res,1999,85(12): e70-e77.
[7] Lai HC, Liu TJ, Ting CT, et al. Insulin-like growth factor-1 prevents loss of electrochemical gradient in cardiac muscle mitochondria via activation of PI 3 kinase/Akt pathway[J]. Mol Cell Endocrinol,2003,205(1-2): 99-106 .
[8] Li T, Chen YH, Liu TJ, et al. Using DNA microarray to identify Sp1 as a transcriptional regulatory element of insulin-like growth factor 1 in cardiac muscle cells [J]. Circ Res,2003,93(12): 1202-1209 .
[9] 余國偉,陳 潔,陳瑩瑩,等. HSP90依賴的Akt線粒體轉(zhuǎn)位參與IGF-I對低溫保存心臟的保護(hù)作用[J]. 中國病理生理雜志,2012,28(10): 1773-1778.
[10] Hoffmann M, Mager WH, Scholte BJ, et al. Analysis of the promoter of the cytochrome P-450 2B2 gene in the rat[J]. Gene Expr,1992,2(4): 353-363.
[11] Imataka H, Sogawa K, Yasumoto K, et al. Two regulatory proteins that bind to the basic transcription element (BTE), a GC box sequence in the promoter region of the rat P-4501A1 gene[J]. EMBO J,1992,11(10): 3663-3671 .
[12] Foti D, Stroup D, Chiang JY. Basic transcription element binding protein (BTEB) transactivates the cholesterol 7α-hydroxylase gene (CYP7A) [J]. Biochem Biophys Res Commun,1998,253(1): 109-113 .
[13] 熊 燕,張 梅,陳 菲,等. 線粒體功能障礙與心血管疾病[J]. 中國病理生理雜志,2013,29(2): 364-370.
[14] 王興民,趙克森. 線粒體功能不全在重癥休克發(fā)生中的作用[J]. 中國病理生理雜志,2013,29(4): 757-760,768.
[15] Myasoedova KN. New findings in studies of cytochromes P450[J]. Biochemistry (Mosc),2008,73(9): 965-969.
[16] Ciolino HP, Dankwah M, Yeh GC. Resistance of MCF-7 cells to dimethylbenz(a)anthracene-induced apoptosis is due to reduced CYP1A1 expression[J]. Int J Oncol,2002,21(2): 385-391 .
[17] Jones BE, Liu H, Lo CR, et al. Cytochrome P450 2E1 expression induces hepatocyte resistance to cell death from oxidative stress[J]. Antioxid Redox Signal,2002,4(5): 701-709.
Insulin-likegrowthfactorIprotectsneonatalratcardiomyocytesfromapoptosisthroughimprovementofmitochondrialfunction
LI Jin-ju1, DING Bi-lan2, XU Xiao-ling2, ZHANG Jian-kai3, HUANG Ying3, LI Tao3, WU Zhu-guo2
(1PediatricGraduateStudent,2theSecondClinicalCollege,3GuangdongProvincialKeyLaboratoryofMedicalMolecularDiagnosis,GuangdongMedicalCollege,Dongguan523808,China.E-mail:wugdmc@126.com)
AIM: To investigate whether mitochondrial mechanism is involved in the anti-apoptotic effect of insulin-like growth factor I (IGF-I) on cardiomyocytes.METHODSPrimary neonatal rat cardiomyocytes (NRCMs) were cultured and treated with 200 μmol/L hydrogen peroxide (H2O2) to induce apoptosis. Kruppel-like factor 9 (KLF9)-specific siRNA was transfected into the cells by Lipofectamine 2000. The mitochondrial function was measured by JC-1 mitochondrial membrane potential (MMP) assay. The mitochondrial morphology was observed by transmission electron microscopy. Myocardial cell apoptosis was detected by Annexin V-FITC/PI dual staining, caspase-3 activity assay, DNA-ladder analysis and Hoechst 33258 staining.RESULTSThe apoptosis of NRCMs was induced by H2O2, with MMP decreased by (24.0±1.6)% compared with control group. The fall rates of MMP in IGF-I group andKLF9 siRNA group were (18.3±1.2)% and (15.2±1.2)%, respectively (bothP<0.01 vs H2O2group), and improved mitochondrial morphology, decreased caspase-3 activity, attenuated DNA fragmentation and reduced apoptotic bodies were also observed in these two groups. The apoptotic rates of NRCMs in IGF-I group andKLF9 siRNA group were (22.4±4.2)% and (32.5±3.5)%, respectively, both lower than that in H2O2group [(42.5±1.8)%,P<0.01]. The anti-apoptotic effect ofKLF9 silencing on NRCMs was consistent with that of IGF-I treatment.CONCLUSIONIGF-I protects NRCMs from apoptosis through down-regulatingKLF9 expression and improving mitochondrial function.
Cardiomyocytes; Insulin-like growth factor I; Kruppel-like factor 9; Mitochondria; Apoptosis
R329.21
A
1000- 4718(2013)09- 1585- 05
2013- 02- 21
2013- 07- 30
廣東省自然科學(xué)基金資助項目(No. 10152402301000009);東莞市高等院??萍加媱澲攸c(diǎn)項目(No. 201010815202)
△通訊作者 Tel: 0769-22896978; E-mail: wugdmc@126.com
# 現(xiàn)工作單位: 臨汾市人民醫(yī)院兒科
10.3969/j.issn.1000- 4718.2013.09.008