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    蜂膠毛膠中總黃酮、高良姜素和白楊素含量分析△

    2013-09-27 01:00:53夏正燕馮瑛潘建明
    中國現(xiàn)代中藥 2013年8期
    關鍵詞:高良姜蜂膠項下

    夏正燕,馮瑛,潘建明

    (浙江省中藥研究所,浙江 杭州 310012)

    蜂膠毛膠中總黃酮、高良姜素和白楊素含量分析△

    夏正燕*,馮瑛,潘建明

    (浙江省中藥研究所,浙江 杭州 310012)

    目的:建立蜂膠毛膠中總黃酮以及高良姜素、白楊素含量測定方法,測定不同基原毛膠中上述各指標的含量。方法:以蘆丁為對照品,采用UV法測定總黃酮含量,檢測波長為415 nm;用HPLC同時測定高良姜素、白楊素含量,采用Welchrom C18柱,以甲醇-0.15%磷酸溶液梯度洗脫,檢測波長為268 nm。結果:總黃酮在0~1.248 mg線性關系良好,r=0.999 9(n=6),平均回收率為98.82%,RSD=1.45%。高良姜素、白楊素分別在0.089~0.445 0,0.115~0.580 μg線性關系良好,r均達到1.000,平均回收率分別為99.03%、99.32%,RSD分別為1.10%、1.72%。結論:該方法準確、可靠、簡便易行,可用于蜂膠毛膠的定量分析,為蜂膠毛膠、其提取物以及蜂膠制品的質量評價和控制提供了依據(jù)。

    蜂膠毛膠;總黃酮;高良姜素;白楊素;基原;含量分析

    蜂膠是蜜蜂采集植物莖、腋芽的樹脂并混入花粉、自身分泌物和蜂蠟,混合而成的一種具芳香氣味的膠狀固體物,其主要化學成分為黃酮類、萜烯類、酚酸類化合物等,其中黃酮類成分含量高達10%。從生物學活性角度看,蜂膠具有廣譜抗菌、抗氧化、抗腫瘤、調節(jié)血脂血糖等十分廣泛的生物學作用[1],故而成為獨特而寶貴的純天然保健食品資源和藥源,具有廣闊的應用前景。

    黃酮類成分是蜂膠品質的主要評價指標,而高良姜素、白楊素只有在天然原生蜂膠中才含有,《中國藥典》關于蜂膠功效成分檢測,將其作為含量測定項目[2]。為此,筆者進行了本項研究[3-5],以總黃酮、高良姜素和白楊素的含量來綜合評價蜂膠的質量,可用于蜂膠的定量分析,為蜂膠、其提取物以及蜂膠制品的質量控制和評價提供了依據(jù)。

    1 儀器與材料

    1.1 儀器

    Agilent 1100高效液相色譜儀,DAD檢測器;Shimadzu UV-2550紫外-可見分光光度計;KQ-100DB型數(shù)控超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司)。

    1.2 材料

    蘆丁、高良姜素、白楊素對照品(批號分別為0080-9504,111699-200501,111701-200501,均購自中國食品藥品檢定研究院);甲醇為色譜純,其他試劑均為分析純。

    蜂膠購自吉林、浙江、安徽、山東等地蜂農,經(jīng)浙江省中藥研究所楊蘇蓓教授鑒定為蜂膠。

    2 方法與結果

    2.1 樣品的提取

    取藥材粉末(過65目篩)約0.3 g,精密稱定,置具塞錐形瓶中,精密加入95%乙醇50 mL,稱重,50 ℃超聲提取2次,每次30 min,放冷,稱重,以95%乙醇補足原重,搖勻,濾過,即得。

    2.2 總黃酮含量測定[6]

    2.2.1 對照品溶液的配制 精密稱取蘆丁對照品適量,加無水乙醇溶解配成濃度為0.2 mg·mL-1的溶液,即得。

    2.2.2 標準曲線的制備 分別精密吸取2.2.1項下的對照品溶液0,1,2,3,4,5,6 mL,置50 mL量瓶中,加95%乙醇至總體積為15 mL,依次加入硝酸鋁溶液(0.1 g·mL-1)1 mL,醋酸鉀溶液(9.8 g·L-1)1 mL,加水至刻度,搖勻,靜置1 h。于415 nm處,以試劑空白為參比,測定吸光度。以總黃酮含量為橫坐標(X),吸光度為縱坐標(Y),繪制標準曲線,得回歸方程Y=0.615 2X-0.000 2,r=0.999 9,線性范圍為0~1.248 mg。

    2.2.3 供試品溶液的測定

    2.2.3.1 供試品溶液的制備 精密吸取2.1項下濾液1 mL,置50 mL量瓶中,加95%乙醇至總體積為15 mL,按2.2.2項下制備。

    2.2.3.2 空白試驗 精密吸取2.1項下濾液1 mL,置于50 mL量瓶中,加95%乙醇至總體積為15 mL,加水稀釋至刻度,搖勻。

    2.2.3.3 測定 以空白試驗作參比,在415 nm處測定吸光度,以蘆丁計算其總黃酮的含量。

    2.2.4 精密度試驗 吸取對照品溶液6份,每份3 mL,按照2.2.2項下操作,分別測定吸光度(A)值,計算得RSD=1.03%。

    2.2.5 穩(wěn)定性試驗 取同一供試品(河南產),按2.2.3項下操作,每隔20 min測定1次吸光度值,連續(xù)測定100 min,計算得A值的RSD=1.57%。表明供試品溶液的A值在100 min內穩(wěn)定。

    2.2.6 重復性試驗 取同一供試品(河南產)6份,按2.2.3項下操作,分別測定A值,得總黃酮含量的RSD=1.46%。

    2.2.7 加樣回收率試驗 取藥材粉末(過65目篩)約0.15 g,精密稱定,置具塞錐形瓶中,分別精密加入蘆丁對照品溶液(3.20 mg·mL-1)5 mL,按2.1及2.2.3項下操作,平行測定6份,計算得總黃酮平均回收率為98.82%,RSD=1.45%。

    2.2.8 各基原蜂膠中總黃酮的測定 取各基原樣品粉末(過65目篩)約0.3 g,精密稱定,按2.1項下提取后,按2.2.3項下操作,計算總黃酮含量。結果見表3。

    2.3 HPLC測定高良姜素和白楊素的含量

    2.3.1 色譜條件 色譜柱:Welchrom C18柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動相:以甲醇為流動相A,以0.15%磷酸溶液為流動相B,按表1規(guī)定進行梯度洗脫;檢測波長:268 nm;流速:1 mL·min-1;柱溫:30 ℃。在上述條件下,高良姜素、白楊素的保留時間分別為18,22 min,理論塔板數(shù)不低于3 000,高良姜素、白楊素與其他組分達到基線分離,見圖1。

    表1 流動相梯度洗脫時間表

    1.白楊素 2.高良姜素圖1 對照品(A)和河南蜂膠供試品(B)HPLC圖

    2.3.2 對照品溶液的制備 精密稱取高良姜素、白楊素對照品適量,加甲醇溶解,制成每1 mL分別含約18,23 μg的混合溶液,作為對照品溶液;另取白楊素對照品,精密稱定,加甲醇溶解制成每1 mL約含30 μg,作為白楊素對照品溶液。

    2.3.3 供試品溶液的制備 取2.1項下的濾液,精密吸取2.5 mL,置10 mL量瓶中,加95%乙醇定容至刻度,搖勻,靜置,用0.45 μm微孔濾膜過濾,取續(xù)濾液,即得。

    2.3.4 線性范圍考察 精密吸取高良姜素、白楊素混合對照品溶液5.0,10,15,20,25 μL進樣,以峰面積積分值為縱坐標(Y),分別以高良姜素、白楊素對照品量為橫坐標(X,μg),繪制標準曲線,分別得回歸方程為Y=3 288.9X-21.8,r=1.000;Y=4 674.2X-13.718,r=1.000。結果表明高良姜素、白楊素分別在0.089~0.445 0 μg,0.115~0.580 μg呈良好的線性關系。

    2.3.5 精密度試驗 取同一對照品溶液重復進樣5次,測定高良姜素及白楊素峰面積值,其RSD分別為0.54%,0.44%,結果表明儀器精密度良好。

    2.3.6 重復性試驗 按擬定的方法對同一樣品(河南產)進行6次平行測定,結果表明,高良姜素、白楊素含量的RSD分別為0.72%、0.56%。

    2.3.7 穩(wěn)定性試驗 取樣品(河南產)適量,按上述方法制成供試品溶液,放置0,2,4,8,12,24 h,分別進行測定,結果高良姜素、白楊素含量的RSD分別為0.70%、0.89%(n=6),表明樣品溶液放置24 h內穩(wěn)定。

    2.3.8 加樣回收率試驗 精密稱取已知含量的樣品(河南產)6份,分別精密加入高良姜素、白楊素混合對照品(濃度為2.90,3.00 mg·mL-1)1.0 mL,按樣品測定方法制成供試品溶液,依法進行測定,計算回收率,結果見表2。

    表2 高良姜素、白楊素回收率試驗

    2.3.9 樣品含量測定 取樣品,按供試品溶液制備方法制備供試液,依上述色譜條件測定。各基原蜂膠樣品測定結果見表3。

    表3 不同基原蜂膠樣品總黃酮、高良姜素及白楊素含量(n=3) /mg·g-1

    3 討論

    實驗曾考察了不同的提取溶媒:甲醇、丙酮、95%乙醇、80%乙醇、65%乙醇,結果顯示95%乙醇提取效果最好。

    曾對超聲、回流、索氏提取方法進行了比較,結果表明超聲法提取較完全,且超聲提取2次,每次30 min較為合適。

    曾對流動相的比例進行過考察,發(fā)現(xiàn)以甲醇-0.15%磷酸(64∶36)為流動相,分離較好且峰形佳,但分析周期較長;而采用梯度洗脫,能大大地縮短分析時間,節(jié)省了人力、物力。

    不同基原蜂膠中總黃酮含量有差異,白楊素和高良姜素的含量差別更大,大部分蜂膠都是白楊素含量高于高良姜素,各指標與基原的相關性仍有待于進一步研究。

    [1] 朱恩圓,竇玉玲,魏東芝,等.蜂膠HPLC指紋圖譜及質量控制[J].中國中藥雜志,2005,30(18):1423.

    [2] 國家藥典委員會.中國藥典[S].一部.北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2010:336.

    [3] 王小平,林勵,陳振霖,等.HPLC法測定不同產地蜂膠中高良姜素的含量[J].中草藥,2007,30(5):560.

    [4] 黃煥婷,黃海潮.不同產地蜂膠中總黃酮的提取及含量測定[J].廣東化工,2010,37(205):215.

    [5] 曹煒,符軍放,索志榮,等.蜂膠中白楊素和高良姜素的HPLC分析[J].藥物分析雜志,2007,27(4):522.

    [6] 中華人民共和國國家質量監(jiān)督檢驗檢疫總局,中國國家標準化管理委員會.蜂膠中總黃酮含量的測定方法分光光度比色法[S].GB/T 20574-2006.北京:中國標準出版社,2006.

    關于舉辦中藥資源化學研究與資源有效利用的新思路新方法培訓班的通知

    中藥資源是中藥產業(yè)發(fā)展賴以生存的基礎,是中藥材生產與質量保證的源頭,關系到中醫(yī)藥行業(yè)的可持續(xù)發(fā)展,為了加深中醫(yī)藥行業(yè)相關從業(yè)人員和教學科研工作者對中藥資源學科建設及國家中長期發(fā)展戰(zhàn)略的認識,準確把握中藥資源學科的內涵和研究范疇,掌握中藥資源學科相關領域科研思路與方法,培養(yǎng)中藥資源學科人才隊伍,不斷提高學科的建設水平,確保中醫(yī)藥事業(yè)健康、穩(wěn)定、可持續(xù)發(fā)展,由國家中醫(yī)藥管理局主辦,南京中醫(yī)藥大學承辦的國家級中醫(yī)藥繼續(xù)教育項目“中藥資源化學研究與資源有效利用的新思路新方法暨中藥資源與開發(fā)專業(yè)系列規(guī)劃教材培訓學習班”(項目編號2013100104062)將于2013年11月22日~25日在南京舉行。此次培訓對象包括中醫(yī)藥行業(yè)中藥士、中藥師、工程師、農藝師、生產技術人員,各大專院校及科研院所從事中藥資源及相關專業(yè)的教學、科研工作人員等,參會代表可獲國家級Ⅰ類繼續(xù)教育學分證書(10分)。具體會議內容詳見http://yxy.njutcm.edu.cn/show.asp?cid=12&id=21172046。

    聯(lián)系人:嚴輝13512537853 劉圣金13770653305

    傳真:025-85811524報名郵箱: tryw2010@126.com

    通信地址:南京市仙林大學城仙林大道138號4號信箱郵編:210023

    DeterminationofTotalFlavonoids,GalanginandChrysininPropolisofDifferentOrigins

    XIA Zheng-yan*,FENG Ying,PAN Jian-ming

    (ZhejiangResearchInstituteofTraditionalChineseMedcine,Hangzhou310023,China)

    Objective: To establish UV and HPLC methods for determination of total flavonoids,galangin and chrysin in Propolis.Methods: UV method was used to determine total flavonoids,and the detection wavelength was 415 nm.The analysis of Galangin and Chrysin was performed on a Welchrom C18column with a gradient solvent system of methanol-0.15% phosphoric acid solution,and the detection wavelength was 268 nm.Results: The linear range of rutin was 0~1.248 mg(r=0.999 9),and the average recovery was 98.82% with RSD 1.45%.The linear range of galangin and chrysin in propolis were 0.089~0.445 0 μg and 0.115~0.580 μg,both with good correlation(r=1.000).The average recovery were 99.03% for galangin and 99.32% for chrysin,and RSD were 1.10% and 1.72%,respectively(n=6).Conclusion:The methods are simple and reliable for quantitative analysis of propolis,its extracts and products,and can be used for quality control and evaluation.

    Propolis;Total flavonoids;Galangin;Chrysin;Origin;Content determination

    2013-01-09)

    浙江省分析測試科技計劃項目(2011C37066)

    *

    夏正燕,E-mail:xzhengyan@gmail.com

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