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    紅小豆粉液化及糖化條件研究

    2013-09-22 13:46:02孟芮羽杜雙奎
    中國釀造 2013年6期
    關(guān)鍵詞:紅小豆糖化酶淀粉酶

    胡 靜,孟芮羽,張 盈,孫 琳,杜雙奎*

    (西北農(nóng)林科技大學 食品科學與工程學院,陜西 楊凌 712100)

    紅小豆(Vigna angularis)為豆科植物赤豆的種子,外被赤褐色或紅色外衣包裹,又名赤小豆、紅豆。因其富含淀粉,可為人類提供膳食能量,所以又稱之為“飯豆”。紅小豆,全國各地都有栽培,每年產(chǎn)量為20~40萬t,主要分布于華北、東北地區(qū),南方部分地區(qū)也有少量種植[1]。據(jù)報道,每100g紅小豆中除含有糖類58.5g、蛋白質(zhì)20.0g、脂肪0.5g、粗纖維4.9g以及微量元素外,還含有色素、三菇皂甙、植物甾醇等有效成分。國內(nèi)外研究表明,紅小豆具有補脾、補血、生津、益氣、益腎、補肝等保健功能,在糖尿病、腫瘤等疾病的預(yù)防和控制方面具有一定的作用[2-4]。紅小豆豆皮中含有的多酚類物質(zhì)具有抗氧化作用[2]。紅小豆除直接食用外,常加工成豆沙或豆餡[5],近年來也相繼開發(fā)了紅豆奶、紅豆冰激淋、紅豆酸奶等相關(guān)產(chǎn)品[6-7]。韓濤等[8]對紅小豆種皮中紅色素的理化性質(zhì)進行研究,高群玉等[9-10]對紅小豆淀粉理化特性研究,何梅等[11]對紅小豆膳食纖維開展了研究,YOUSIF AM等[12]研究了貯藏對紅小豆蛋白質(zhì)和淀粉性質(zhì)的影響。由此可見,對紅小豆的加工利用、性質(zhì)研究越來越深入,但涉及發(fā)酵研究鮮見報道。紅小豆中含有豐富的淀粉,可經(jīng)糊化、液化、糖化處理后成為可發(fā)酵性糖,從而為發(fā)酵微生物所用。本研究以紅小豆為試驗材料,對紅小豆粉液化、糖化工序進行研究,探討液化、糖化條件,以期為紅小豆的深加工、紅小豆發(fā)酵食品的開發(fā)奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    紅小豆:購于陜西楊陵大型超市,籽粒飽滿,色澤正常,符合NY/T 599-2002。

    DNS試劑(稱取3.25g 3,5-二硝基水楊酸溶于少量蒸餾水中,移入500mL容量瓶,加2mol/L氫氧化鈉溶液162.5mL,再加入22.5g丙三醇,搖勻,定容至500mL,貯存于棕色瓶放置7d后備用);α-淀粉酶(活力≥3700U/g)、糖化酶(活力≥100000 U/g):北京奧博星生物技術(shù)有限公司;HCl溶液、NaOH溶液等。

    1.2 儀器與設(shè)備

    UV-1200分光光度計:上海光譜儀器有限公司;SHA-C恒溫振蕩器:常州國華電器有限公司;KDC-40低速離心機:科大創(chuàng)新股份有限公司中佳分公司;S-3400N型掃描電子顯微鏡:株式會社日立制作所(HITACHI);MSP-1S型離子濺射儀:日本真空裝置有限公司;FW100高速萬能粉碎機:天津泰斯特儀器有限公司;DHG-9146A型電熱恒溫鼓風干燥箱:上海精宏實驗設(shè)備有限公司。

    1.3 試驗方法

    1.3.1 工藝流程

    紅小豆→粉碎→加水→糊化→液化→糖化

    1.3.2 操作要點

    (1)粉碎:將紅小豆放入粉碎機中粉碎,過40目篩,收集紅小豆粉備用。

    (2)加水:取紅小豆粉,按料水比1∶4(m∶v)加入蒸餾水,為紅小豆淀粉的糊化做準備。

    (3)糊化:將紅小豆粉-水混合物沸水浴30min,使紅小豆淀粉充分吸水膨脹,發(fā)生糊化,期間不斷攪拌,有利于充分糊化。

    (4)液化:液化是將淀粉水解成為可溶性的低聚糖或糊精的過程,液化效果的好壞直接影響后續(xù)的糖化作用。α-淀粉酶可以隨機降解淀粉內(nèi)的α-1,4糖苷鍵,使淀粉水解。按試驗設(shè)計加入一定量的α-淀粉酶,控制試驗溫度、pH值,酶解30min,碘液顯色為無色,表明液化完全。

    (5)糖化:糖化是進一步將液化水解的產(chǎn)物水解成為小分子的糖的過程。糖化酶能催化水解α-1,6糖苷鍵,使淀粉水解更加徹底。在液化體系中加入一定量的糖化酶,在一定溫度、pH值條件下,糖化20h,分析糖化效果。

    1.3.3 液化工序單因素試驗

    以還原糖含量為試驗指標,以α-淀粉酶添加量(0.005%~0.065%)、溫度(40℃~80℃)、pH值(4~8)為試驗因素設(shè)計單因素試驗,分別研究液化條件對液化規(guī)律的影響,確定α-淀粉酶的酶解條件。

    1.3.4 糖化工序單因素試驗

    以還原糖含量為試驗指標,以糖化酶加量(0.1%~1.7%)、溫度(50℃~80℃)、pH值(3~7)為試驗因素設(shè)計單因素試驗,分別研究糖化因素對糖化效果的影響,確定糖化酶的酶解條件。

    1.3.5 還原糖測定

    采用DNS法測定液化液、糖化液中的還原糖含量。取適量液化液、糖化液于離心管中,于3800r/min離心30min,取上清液采用DNS法測定還原糖含量。

    1.3.6 微觀結(jié)構(gòu)觀察

    分別取少量紅小豆粉、糖化殘渣固定在掃描電子顯微鏡的樣品臺上,并進行噴金處理。經(jīng)過短暫干燥后,用掃描電子顯微鏡觀察并拍攝具有代表性的微觀結(jié)構(gòu),以觀察紅小豆的水解情況。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 紅小豆液化條件的確定

    2.1.1 α-淀粉酶加量對紅小豆液化效果的影響

    固定液化溫度為60℃,pH值為5,設(shè)置α-淀粉酶添加量分別為0.005%、0.02%、0.035%、0.05%、0.065%(以紅豆粉質(zhì)量計),液化30min,α-淀粉酶加量對紅小豆液化效果的影響見圖1。

    圖1 α-淀粉酶添加量對紅小豆液化效果的影響Fig.1 Effects of α-amylase amount on liquefaction of adzuki bean

    由圖1可以看出,隨著α-淀粉酶添加量的增加,還原糖含量呈增加趨勢。當α-淀粉酶添加量大于0.035%,還原糖含量增加趨于平緩。這可能是由于α-淀粉酶添加量達到0.035%時,α-淀粉酶與底物結(jié)合基本完全,致使還原糖含量基本保持不變。因此確定液化α-淀粉酶添加量為0.035%。

    2.1.2 液化溫度對紅小豆液化效果的影響

    控制α-淀粉酶添加量為0.035%,pH值為5,分別在40℃、50℃、60℃、70℃、80℃液化30min,液化溫度對紅小豆液化效果的影響見圖2。

    圖2 溫度對紅小豆液化效果的影響Fig.2 Effects of temperature on liquefaction of adzuki bean

    由圖2可知,隨著液化溫度的升高,還原糖含量呈先逐漸增大后減小趨勢,溫度為60℃時,還原糖含量最大。這與所選用α-淀粉酶為中溫生物酶有關(guān)。當溫度超過60℃,α-淀粉酶的活性有所減弱,液化效果下降,還原糖含量逐漸減小。所以60℃為適宜的液化溫度。

    2.1.3 pH值對紅小豆液化效果的影響

    固定α-淀粉酶添加量為0.035%,溫度為60℃,分別在pH值為4、5、6、7、8時液化30min,pH值對紅小豆液化效果的影響見圖3。

    圖3 pH值對紅小豆液化效果的影響Fig.3 Effects of pH on liquefaction of adzuki bean

    由圖3可以看出,隨著pH值的升高,還原糖含量有先增大后減小趨勢。當pH值為5時,還原糖含量最高。這可能是由于隨著pH值的增加,接近了α-淀粉酶的最適pH值,α-淀粉酶的活力逐漸增強,還原糖含量逐漸增加。隨著pH值的繼續(xù)增大,α-淀粉酶的活力越來越弱,作用力下降,還原糖含量逐漸減小。確定選取液化最適pH值為5。

    2.2 紅小豆糖化條件的確定

    2.2.1 糖化酶添加量對紅小豆糖化效果的影響

    待液化完全后,按紅豆粉質(zhì)量分別添加0.1%、0.5%、0.9%、1.3%、1.7%(以紅豆粉質(zhì)量計)糖化酶,在60℃、pH 5的條件下糖化20h,以還原糖含量為指標,分析糖化酶添加量對紅豆糖化效果的影響,結(jié)果見圖4。

    圖4 糖化酶加量對紅小豆糖化效果的影響Fig.4 Effects of glucoamylase amount on saccharification of adzuki bean

    由圖4可知,隨著糖化酶加量的增加,還原糖含量呈不斷增加趨勢。當糖化酶添加量為0.9%時,還原糖含量最大。當糖化酶添加量超過0.9%,還原糖含量增加趨于平緩,表明糖化酶與底物已達到了飽和作用。確定糖化時的適宜加酶量為0.9%。

    2.2.2 糖化溫度對紅小豆糖化效果的影響

    控制糖化酶加量為0.9%,pH值為5,糖化溫度分別設(shè)為50℃、60℃、70℃、80℃,糖化20h,試驗結(jié)果見圖5。

    圖5 糖化溫度對紅小豆糖化效果的影響Fig.5 Effects of temperature on saccharification of adzuki bean

    由圖5可以看出,糖化溫度對還原糖含量有影響,隨著溫度的升高,還原糖含量有下降趨勢,60℃時還原糖含量最高,表明糖化酶作用效果充分;70℃、80℃時還原糖含量明顯下降,這可能與部分糖化酶失活有關(guān)。因此確定糖化時的最適溫度為60℃。

    2.2.3 pH值對紅小豆糖化效果的影響

    固定糖化酶加量為0.9%,溫度為60℃糖化20h,pH值對紅小豆糖化效果的影響見圖6。

    圖6 pH對紅小豆糖化效果的影響Fig.6 Effects of pH on saccharification of adzuki bean

    由圖6可知,隨著糖化體系pH值升高,還原糖含量呈先增大后減小趨勢。當pH值為4時,還原糖含量最大,但與pH值為3時的還原糖含量差異不顯著,pH值為7時,還原糖含量最低。這與試驗用糖化酶適宜作用pH值為3~5有關(guān)。選擇pH值為4為最佳條件。

    2.3 微觀結(jié)構(gòu)分析

    對紅小豆粉、糖化殘渣進行電鏡掃描觀察,結(jié)果見圖7。

    由圖7可以看出,紅小豆粉中的粉狀顆粒呈分散狀態(tài),淀粉顆粒比較完整,為圓形、腎形,由蛋白膜、纖維等包裹。糖化殘渣中蛋白膜展開,體系成為絮狀的團塊結(jié)構(gòu),蛋白膜上有凹陷或空洞,這可能是淀粉顆粒原來所在位置,淀粉顆?;就耆В砻鞯矸垲w?;舅馔耆?/p>

    圖7 電鏡掃描圖片(400×)Fig.7 Scanning electron microscopy images

    3 結(jié)論

    通過對紅豆粉液化與糖化條件單因素試驗分析,紅小豆粉液化時α-淀粉酶加量為0.035%,液化溫度為60℃,pH值為5,液化30min還原糖含量為35.63mg/mL。其液化液在0.9%糖化酶、60℃、pH值為4時糖化20h,還原糖含量達87.10mg/mL,還原糖含量顯著提高。對糖化殘渣進行電鏡掃描觀察,紅小豆淀粉已基本水解完全,為后續(xù)發(fā)酵的進行奠定良好的基礎(chǔ)。

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