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    磁性殼聚糖微球固定化米糠內(nèi)源酶的研究

    2013-09-07 10:37:02張媛媛錢海峰齊希光
    食品與機(jī)械 2013年3期
    關(guān)鍵詞:脫羧酶戊二醛米糠

    張媛媛 張 暉 王 立 錢海峰 齊希光

    (江南大學(xué)食品學(xué)院,江蘇 無錫 214122)

    谷氨酸脫羧酶(GAD)作為米糠內(nèi)源酶,可以專一的催化谷氨酸或其鈉鹽脫羧轉(zhuǎn)化為γ-氨基丁酸(GABA)。而γ-氨基丁酸作為一種重要的中樞神經(jīng)系統(tǒng)抑制劑,具有多種重要的生理功能[1],如降血壓、治癲癇、抗衰老、調(diào)節(jié)激素等。鑒于游離酶不便于重復(fù)利用,而與游離酶相比,固定化酶便于回收以重復(fù)利用,且相對容易分離,故越來越多的研究轉(zhuǎn)向固定化酶。如今,固定化酶的技術(shù)迅速發(fā)展,在多個領(lǐng)域都得到了較為廣泛的應(yīng)用,如食品、醫(yī)藥、化工等[2,3]。磁性殼聚糖微球作為固定化酶的一種載體,現(xiàn)已被用于果膠酶、谷氨酰胺酶、漆酶、褐藻酸酶、乳糖酶、辣根過氧化物酶、脂肪酶等的固定化[4,5]。

    關(guān)于谷氨酸脫羧酶的固定化,已有的報道[6,7]多是以海藻酸鈉、殼聚糖作為載體,使得制備的GABA溶液中鹽含量較高,且需離心操作,分離較繁瑣,后期的純化工作復(fù)雜,故尋找更好的固定化酶載體成為人們研究的熱點。用磁性殼聚糖微球作為載體,可以利用外界磁場的作用,簡單分離,重復(fù)利用,以有效的避免上述問題。然而目前還沒有用磁性殼聚糖固定化谷氨酸脫羧酶的報道。

    本試驗以Fe3O4作為磁性內(nèi)核,殼聚糖作為外殼,采用乳化交聯(lián)法來制備磁性殼聚糖微球,以此為載體來固定化谷氨酸脫羧酶,并研究固定化谷氨酸脫羧酶的酶學(xué)性質(zhì),旨在尋求一種能方便有效、且成本低廉或適中的固定化谷氨酸脫羧酶的方法,為更好的利用GAD的酶活力提供相關(guān)的理論分析和數(shù)據(jù)參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    1.1.1 主要材料與試劑

    新鮮米糠:無錫市蘇惠米業(yè)有限公司;

    Fe3O4:北京德科島金科技有限公司;

    PLP、PMSF、GABA:美國Sigma公司;

    2-巰基乙醇、殼聚糖:中國醫(yī)藥(集團(tuán))上?;瘜W(xué)試劑公司;

    磁鐵:友磁實業(yè)有限公司。

    1.1.2 主要儀器設(shè)備

    超低溫冰箱:FORMA 702型,美國 Thermo life Sciences公司;

    冷凍干燥機(jī):LGJ-10型,北京四環(huán)科學(xué)儀器廠;

    高速冷凍離心機(jī):CR21GⅢ型,日本Hitachi Koki公司;

    定時恒溫磁力攪拌器:90-2型,上海滬西分析儀器廠;

    傅里 葉 變 換 紅 外 光 譜 儀 (Nicolet Nexus FT-IR spectrometer):470FT-IR型,美國 Thermo Electron公司;

    高速臺式離心機(jī):TGL-IGC型,上海安亭科學(xué)儀器廠;

    超級恒溫水?。篗P-501A型,上海市實驗儀器廠;

    高效液相色譜儀(配有可變波長紫外檢測器):Agilent 1100型,美國Agilent公司。

    1.2 試驗方法

    1.2.1 米糠谷氨酸脫羧酶的制備 參照文獻(xiàn)[8],以料液比1∶4(m∶V)用緩沖液在4℃下提取米糠谷氨酸脫羧酶1h。其中,緩沖液為含有2mmol/L EDTA-二鈉、2mmol/L 2-巰基乙醇、1mmol/L PLP、1mmol/L PMSF 和 10% 甘 油 的0.05mol/L(pH=5.6)Na2HPO4-NaH2PO4緩沖液。采用硫酸銨沉淀法從提取液中得到谷氨酸脫羧酶,之后在標(biāo)準(zhǔn)緩沖液中透析至無NH+4,冷凍干燥后凍藏備用。

    1.2.2 米糠谷氨酸脫羧酶活性的測定 用0.05mol/L(pH=5.6)PBS緩沖液對谷氨酸脫羧酶進(jìn)行復(fù)溶,制備蛋白含量約為1mg/mL的酶液,加入0.05mol/L谷氨酸鈉作為底物,40℃下反應(yīng)2h,在90℃下滅酶5min,離心取上清液測定產(chǎn)物GABA的含量。其中GABA含量用高效液相色譜法[9]測定。以每30min生成1μmol的GABA作為一個酶活力單位。

    1.2.3 米糠谷氨酸脫羧酶活力回收率的計算

    1.2.4 磁性殼聚糖的制備及表征 參考文獻(xiàn)[10],取0.5g Fe3O4微粒與20mL 2.5%殼聚糖乙酸溶液混合,超聲使其充分混勻,然后在攪拌下緩慢加入到80mL液體石蠟和4mL Span-80混合溶液中,常溫攪拌30min后,加入10mL 8%戊二醛,40℃恒溫水浴中攪拌1h,用1mol/L氫氧化鈉溶液將pH調(diào)至9~10,70℃恒溫水浴中繼續(xù)攪拌2h,用磁鐵吸出微球,并先后用石油醚、丙酮、蒸餾水反復(fù)洗滌,冷凍干燥得到磁性殼聚糖微球。采用激光粒度分析儀來測定磁性微球的粒徑,而采用KBr粉末壓片,用紅外光譜儀測定其官能團(tuán)的特征吸收。

    1.2.5 磁性微球固定化米糠谷氨酸脫羧酶的基本方法 取0.05g制備的磁性殼聚糖微球,加入到25mL錐形瓶中,用不同pH的磷酸鹽緩沖液溶脹過夜,加入一定濃度的戊二醛溶液進(jìn)行交聯(lián),用磁鐵吸出磁性殼聚糖微球,用磷酸鹽緩沖液清洗至檢測不出戊二醛。加入一定濃度的谷氨酸脫羧酶液,在4℃下固定一定時間,用磁鐵吸出磁性殼聚糖微球后,再用磷酸鹽緩沖液將微球充分洗滌。得到的固定化谷氨酸脫羧酶于4℃下保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2.6 磁性微球固定化米糠谷氨酸脫羧酶的條件優(yōu)化研究

    (1)緩沖液pH:控制戊二醛濃度為2%,交聯(lián)時間為4h,固定時間為3h,考察pH 為4.8,5.2,5.6,6.0,6.4時的酶活力回收率。

    (2)戊二醛濃度:控制緩沖液pH為5.6,交聯(lián)時間為4h,固定時間為3h,考察戊二醛濃度為 1.0%,1.5%,2.0%,2.5%,3.0%時的酶活力回收率。

    (3)交聯(lián)時間:控制緩沖液pH為5.6,戊二醛濃度為2%,固定時間為3h,考察交聯(lián)時間為2,3,4,5,6h時的酶活力回收率。

    (4)固定時間:控制緩沖液pH為5.6,戊二醛濃度為2%,交聯(lián)時間為4h,考察固定時間為1,2,3,4,5h時的酶活力回收率。

    (5)正交試驗:以單因素試驗的研究結(jié)果為基礎(chǔ),設(shè)計L9(34)正交試驗。

    1.2.7 固定化米糠谷氨酸脫羧酶的酶學(xué)性質(zhì)研究

    (1)最適溫度:取等量的游離和固定化谷氨酸脫羧酶,加入含有底物的PBS緩沖液中,于30,35,40,45,50℃下100r/min水浴振蕩制備GABA。

    (2)熱穩(wěn)定性:取等量的游離和固定化谷氨酸脫羧酶,浸泡在PBS緩沖液中,在30,35,40,45,50,55,60,65,70 ℃精確保溫30min后,取出后迅速冷卻至室溫,換入新的含底物的PBS緩沖液,游離酶于40℃、固定化酶于45℃下100r/min水浴振蕩制備GABA。

    (3)最適pH:取等量的游離和固定化谷氨酸脫羧酶,加入含有底物的pH 為4.8,5.2,5.6,6.0,6.4的 PBS緩沖液中,于最適溫度下100r/min水浴振蕩制備GABA。

    (4)pH穩(wěn)定性:取等量的固定化谷氨酸脫羧酶,分別加入pH 為4.8,5.2,5.6,6.0,6.4的 PBS緩沖液中于4℃冰箱里放置24h,取出后對微球進(jìn)行清洗,換入新的含有底物的PBS緩沖液,于45℃下100r/min水浴振蕩制備GABA。

    (5)操作穩(wěn)定性:取固定化谷氨酸脫羧酶,加入含有底物的PBS緩沖液中,于45℃下100r/min水浴振蕩制備GABA。15h后取出微球,換入新的含有底物的PBS緩沖液,繼續(xù)反應(yīng)直至酶活力為零。

    (6)貯藏穩(wěn)定性:每天取等量的固定化谷氨酸脫羧酶,加入含有底物的PBS緩沖液中,于45℃下100r/min水浴振蕩制備GABA。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 磁性殼聚糖的表征

    圖1是殼聚糖和磁性殼聚糖微球的紅外光譜圖。殼聚糖圖譜在3 430cm-1處有紅外吸收峰,這是-NH2和-OH的伸縮振動,在2 870cm-1和2 930cm-1處有脂肪族C-H的伸縮振動吸收,在1 090cm-1處有C-O的伸縮振動吸收。與殼聚糖圖譜相比,磁性殼聚糖微球圖譜雖響應(yīng)值有所變化,但殼聚糖的特征吸收峰都得到了保留,而且在3 430cm-1處的吸收峰較寬,這表明在磁性殼聚糖微球中存在著增強(qiáng)的氫鍵作用,而在573cm-1出的紅外吸收峰應(yīng)是磁性內(nèi)核的Fe-O特征吸收峰,從而表明Fe3O4和殼聚糖之間存在著分子間的相互作用,因此認(rèn)為殼聚糖和磁性微球的乳化交聯(lián)是成功的。

    圖1 殼聚糖和磁性殼聚糖微球的紅外光譜圖Figure 1 Infrared Spectroscopy result of chitosan and magnetic chitosan microspheres

    2.2 固定化米糠谷氨酸脫羧酶的條件優(yōu)化

    考察了緩沖液pH、戊二醛濃度、交聯(lián)時間和固定時間4個因素對谷氨酸脫羧酶的固定化影響,根據(jù)單因素試驗結(jié)果,得到的正交試驗因素水平取值見表1,試驗設(shè)計及結(jié)果見表2。由表2可知,各因素對于酶活力回收率的影響順序為A>C>D>B,谷氨酸脫羧酶固定化的最優(yōu)條件為A2B2C1D3,即pH為5.2,戊二醛濃度為1.5%,交聯(lián)時間為4h,固定時間為5h。以此條件進(jìn)行驗證實驗,得到酶活力回收率為39.41%。

    表1 谷氨酸脫羧酶的固定化條件正交試驗因素水平表Table 1 Factors-levels of the orthogonal test for immobilization of GAD

    2.3 固定化米糠谷氨酸脫羧酶的酶學(xué)性質(zhì)

    2.3.1 固定化米糠谷氨酸脫羧酶的最適溫度 由圖2可知,固定化谷氨酸脫羧酶的最適溫度由游離時的40℃向右偏移到45℃,這是因為谷氨酸脫羧酶在固定化后,載體存在著一定的傳質(zhì)阻力,而底物需要更多的能量來與谷氨酸脫羧酶結(jié)合,從而增強(qiáng)了酶的耐熱性。而后繼續(xù)升高反應(yīng)溫度時,谷氨酸脫羧酶會發(fā)生部分變性失活,從而使酶活力下降。

    表2 谷氨酸脫羧固定化條件正交試驗結(jié)果Table 2 Results of the orthogonal test for immobilization of glutamate decarboxylase

    圖2 溫度對游離及固定化的谷氨酸脫羧酶活力的影響Figure 2 Effect of temperature on the activities of free and immobilized glutamate decarboxylase

    2.3.2 固定化米糠谷氨酸脫羧酶的熱穩(wěn)定性研究 由圖3可知,當(dāng)處理溫度低于45℃時,隨著處理溫度的升高,游離酶和固定化酶的酶活力回收率都增大。這與前人的研究結(jié)果[11]——當(dāng)植物受到外界的刺激,比如溫度升高時,體內(nèi)谷氨酸脫羧酶活力會有所提升相一致。而隨著溫度繼續(xù)升高,由于谷氨酸脫羧酶發(fā)生部分熱變性,即便之后在相同的溫度下制備GABA,其酶活力都相應(yīng)的逐漸降低。

    2.3.3 固定化米糠谷氨酸脫羧酶的最適pH 由圖4可知,游離酶的最適pH為5.6,而固定化后,酶的最適pH向左移動至5.2,這可能是因為磁性殼聚糖微球表面的帶電基團(tuán)與谷氨酸脫羧酶的結(jié)合,導(dǎo)致其微環(huán)境遭到改變,從而影響了固定化谷氨酸脫羧酶的最適pH,使其更適合酸性環(huán)境,這樣可以相對減少在制備GABA的過程中微生物對反應(yīng)的影響。

    圖3 不同溫度處理對游離及固定化的谷氨酸脫羧酶活力的影響Figure 3 Effect of different temperature treatment on the activities of free and immobilized glutamate decarboxylase

    圖4 pH對游離及固定化的谷氨酸脫羧酶活力的影響Figure 4 Effect of pH on the activities of free and immobilized glutamate decarboxylase

    2.3.4 固定化米糠谷氨酸脫羧酶的pH穩(wěn)定性研究 由圖5可知,游離谷氨酸脫羧酶隨著處理pH值的增大,其酶活力回收率有先增大后降低的趨勢,而固定化后其酶活力回收率一直降低,這說明固定化后谷氨酸脫羧酶的耐酸能力變強(qiáng)。這可能是因為磁性殼聚糖微球作為固定化的載體,能為谷氨酸脫羧酶營造一個較為穩(wěn)定的微觀環(huán)境,且殼聚糖帶有大量的氨基和羧基等基團(tuán),對酸和堿有一定的緩沖作用,兩方面的共同作用使固定化谷氨酸脫羧酶的耐酸能力增強(qiáng)。

    圖5 不同pH處理對固定化谷氨酸脫羧酶活力影響Figure 5 Effect of different pH treatment on the activities of immobilized glutamate decarboxylase

    2.3.5 固定化米糠谷氨酸脫羧酶的操作穩(wěn)定性研究 由圖6可知,固定化谷氨酸脫羧酶活力的衰減速度較快,其半衰期約為50h,與王筱婧等[12]用海藻酸鈉固定化米糠中谷氨酸脫羧酶的半衰期結(jié)果相一致。這可能是因為在每次反應(yīng)結(jié)束后的清洗過程中,容易造成酶活力的損失。因此可適當(dāng)增加每次反應(yīng)的時間,或者進(jìn)行連續(xù)反應(yīng),以最大程度的利用固定化谷氨酸脫羧酶。

    圖6 固定化谷氨酸脫羧酶的操作穩(wěn)定性Figure 6 Operation stability of immobilized glutamate decarboxylase

    2.3.6 固定化米糠谷氨酸脫羧酶的貯藏穩(wěn)定性研究 對固定化谷氨酸脫羧酶的貯藏穩(wěn)定性進(jìn)行了研究,由圖7可知,固定化谷氨酸脫羧酶在經(jīng)過30d的貯藏后,其酶活力回收率依舊能保持在原來的70%左右。這說明經(jīng)過固定化后,谷氨酸脫羧酶在低溫(4℃)貯藏的狀態(tài)下,其酶活力穩(wěn)定性能保持較高水平。

    圖7 固定化谷氨酸脫羧酶的貯藏穩(wěn)定性Figure 7 Storage stability of immobilized glutamate decarboxylase

    3 結(jié)論

    本試驗考察了磁性殼聚糖微球固定谷氨酸脫羧酶時緩沖液pH、戊二醛濃度、交聯(lián)時間和固定時間等因素對固定化效果的影響。研究得到固定谷氨酸脫羧酶的最優(yōu)條件:在pH為5.2的緩沖液中充分溶脹后,加入1.5%的戊二醛溶液交聯(lián)3h后,加入酶液固定4h,得到固定化酶活力回收率為39.41%。通過對固定化酶的酶學(xué)性質(zhì)的研究,得到固定化后,谷氨酸脫羧酶的耐酸性和耐熱性得到了提高,貯藏穩(wěn)定性也能在一定時間內(nèi)保持較高水平。

    本法較之前的固定方法,制備工藝簡單,具備工業(yè)化應(yīng)用的前景;且固定化酶在制備GABA時能簡單分離,方便重復(fù)利用,后期的純化工藝也相對簡單。但要連續(xù)反應(yīng)需進(jìn)一步研究其再生方法,從而進(jìn)一步提高酶的催化反應(yīng)效率。

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    2 張黎黎,隆泉,付仁春,等.微膠囊固定化酶的制備及應(yīng)用[J].云南大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版),2003(S1):246~250.

    3 毛跟年,李麗維,齊鳳.固定化酶應(yīng)用研究進(jìn)展[J].中國釀造,2009(8):17~20.

    4 劉穎,王鑫,岳文靜,等.磁性殼聚糖固定化轉(zhuǎn)谷氨酰胺酶的研究[J].現(xiàn)代食品科技,2011(9):1 081~1 083.

    5 縱偉,劉艷芳,趙光遠(yuǎn).磁性殼聚糖微球固定化脂肪酶的研究[J].食品與機(jī)械,2008(1):13~15.

    6 喬春楠,劉萍,孫君社.海藻酸鈉法固定化谷氨酸脫羧酶的研究[J].中國生化藥物雜志,2008(1):16~18.

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    8 張暉.米胚谷氨酸脫羧酶性質(zhì)及其富集γ-氨基丁酸研究[D].無錫:江南大學(xué),2004.

    9 馬曉博.利用米糠谷氨酸脫羧酶富集γ-氨基丁酸及其分離與純化[D].無錫:江南大學(xué),2008.

    10 龍勝亞.磁性殼聚糖微球的制備及其在漆酶固定化中的應(yīng)用[D].武漢:武漢理工大學(xué),2005.

    11 Scott-Taggart C P,Van Cauwenberghe O R,Mclean M D,et al.Regulation ofγ-aminobutyric acid synthesis in situ by glutamate availability[J].Physiologia Plantarum,1999,106(4):363~369.

    12 王筱婧,王立,馬曉博,等.利用海藻酸鈉固定化米糠制備γ-氨基丁酸的研究[J].食品工業(yè)科技,2009(4):222~224.

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