許青蓮,邢亞閣*,車振明,李 可,張麗珠,羅建峰,盧 靖
(1.西華大學(xué) 生物工程學(xué)院 食品生物技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,四川 成都 610039;2.理縣塔斯酒莊有限公司,四川 阿壩藏族羌族自治州 623104)
冰葡萄酒是在-7℃的氣溫條件下,將葡萄掛在枝頭上并通過低溫自然冷凍和風(fēng)干,使果實(shí)中的糖度及其他內(nèi)容物得到高濃度濃縮,然后在低溫結(jié)冰的狀態(tài)下采摘,立即進(jìn)行壓榨、低溫保糖發(fā)酵釀造而成的葡萄酒。釀造冰酒的葡萄酒品種有威達(dá)爾(Vidal)、雷司令(Riesling)、長相思(Sauvigon Blance)、貴人香(I-talian Riesling)等[1]。近年來,川西高原藏區(qū)阿壩州理縣以其特殊的氣候條件,開發(fā)研制了威代爾等系列冰葡萄酒,不僅酒體口感好,味道獨(dú)特,而且很受當(dāng)?shù)厝说南矚g。在冰葡萄酒生產(chǎn)中,由于影響葡萄酒品質(zhì)的關(guān)鍵因素是其中的發(fā)酵微生物,而酵母菌作為主要的發(fā)酵微生物不僅對葡萄酒產(chǎn)量、質(zhì)量和發(fā)酵生產(chǎn)管理影響很大,而且對葡萄酒特色和風(fēng)格的形成也至關(guān)重要[2]。真正優(yōu)良的葡萄酒酵母,應(yīng)該具備起酵快,能耐乙醇、高SO2、低溫等優(yōu)點(diǎn)[2-4]。
利用基因測序通過對威代爾冰葡萄汁發(fā)酵過程中的主要酵母菌之一的異常畢赤酵母(Pichia anomala)菌株進(jìn)行了分離鑒定,并進(jìn)一步研究了Pichia anomala菌株的耐溫性能、耐酸堿性能、耐乙醇、SO2和糖等性能,為川西藏區(qū)冰葡萄酒擴(kuò)大生產(chǎn)提供了一定的技術(shù)支持,對川西高原冰葡萄酒行業(yè)的發(fā)展具有十分重要的意義。
1.1.1 材料
冰葡萄發(fā)酵汁,由四川阿壩州理縣塔斯酒莊提供;乙醇、亞硫酸、甘油、氯化鎂等化學(xué)試劑均由成都科龍化工廠提供;酵母菌18S rDNA PCR和電泳檢測試劑,膠回收和連接試劑,酶切試劑等由成都東盛公司提供。
1.1.2 培養(yǎng)液、培養(yǎng)基的制備[4-7]
酵母浸出粉胨葡萄糖瓊脂(yeast extractpeptone dextrose,YPD)培養(yǎng)基:酵母粉1%,蛋白胨2%,葡萄糖2%,瓊脂2%。
馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)培養(yǎng)液:馬鈴薯20%,葡萄糖2%,瓊脂1.5%~2.0%。
虎紅瓊脂培養(yǎng)基:蛋白胨0.5%,磷酸二氫鉀0.1%,硫酸鎂0.05%,葡萄糖1.0%,瓊脂2.0%,0.1%孟加拉紅溶液:0.33%,氯霉素:0.01%。
DHP-9052型電熱恒溫培養(yǎng)箱:上海益恒實(shí)驗(yàn)儀器公司;SHA-B型恒溫振蕩箱:金壇市富華儀器有限公司;pHS-25精密pH計(jì):上海精科雷磁儀器廠;721分光光度計(jì):上海精密科學(xué)儀器有限公司;DYY-8C型雙定時(shí)電泳儀:鄭州朋來儀器有限公司。
1.3.1 菌株分離
從酒莊運(yùn)至實(shí)驗(yàn)室的威代爾冰葡萄進(jìn)行榨汁處理,用虎紅培養(yǎng)基從葡萄汁中篩選出生長旺盛且特征明顯的1株菌,通過平板劃線分離出該株菌的單菌落,挑取單菌落在液體PDA培養(yǎng)液中培養(yǎng)后用甘油保存菌株,放置在-20℃?zhèn)溆肹4,8-10]。
1.3.2 菌株分子鑒定
采用18S rDNA序列分析法對分離出的菌種進(jìn)行分子鑒定。采用玻璃珠法[1]提取基因組總DNA:聚合酶鏈反應(yīng)(polymerase chain reaction,PCR)體系:30μL重蒸水(ddH2O),5μL 10×PCR 擴(kuò)增緩沖液(Reaction Buffer)(Mg2+Free),6μL MgCl2(25mmol/L),4μL 三磷酸脫氧核苷酸(dNTP)(2.5mmol/L),引物NSl(5’-GTAGTCATATGCTTGTCTC-3’)和NS8(5’-TCCGCAGGTTCACCTACGGA-3’)各1μL,1μL Taq聚合酶(2.5U/μL),2μL總DNA模板,PCR程序[4,11-13]簡述如下:95℃預(yù)變性5min;95℃變性1min,50℃退火1min,72℃延伸2min,經(jīng)30個(gè)循環(huán)后最終72℃保持10min,然后電泳和溴化乙錠(ethidium bromide,EB)染色檢測目標(biāo)產(chǎn)物有無及效果。并按照pGEM-T Easy Vector System I(Promega USA)說明將PCR產(chǎn)物連接至pGEM-T載體,并轉(zhuǎn)化至感受態(tài)細(xì)胞E.coliDH5α中,涂布于含氨芐青霉素(Amp,100μg/mL)、異丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷(IPTG,24μg/mL)和5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷(X-gal,40μg/mL)的LB平板上,篩選陽性克隆子。挑取陽性克隆子,按照Plasmid Mini Kit I(OMEGA USA)說明提取重組質(zhì)粒,應(yīng)用酶切法鑒定插入片段是否正確。酶切反應(yīng)條件[9,14]:重組質(zhì)粒2μL,EcoRI(Fermentas)1μL,10×EcoRI Buffer 1μL,重蒸水(ddH2O)6μL。經(jīng)E.coli RI酶切檢測后含有完整16S rRNA的重組質(zhì)粒采用Applied Piosystems DNASequencer(model 377)自動測序。測序結(jié)果與數(shù)據(jù)庫NCBI Blast比對后,再通過Clustal X1.8將代表序列與數(shù)據(jù)庫中所得序列進(jìn)行完全比對,測得序列提交至GenBank數(shù)據(jù)庫,獲得序列號。
1.3.3 耐受性實(shí)驗(yàn)
耐溫性分析:將實(shí)驗(yàn)菌株P(guān)ichia anomala活化后接種于帶有杜氏管的YPD培養(yǎng)基中,接種量為1.0×107CFU/mL,然后分別放于8℃、20℃、28℃、32℃和36℃條件下培養(yǎng)24h,在波長600nm條件下測其吸光度值。耐pH值、耐二氧化硫和耐糖性能分析[15]:分別采用不同的pH值(1.5、2.0、4.0、6.0、8.0、10.0、12.0)、乙醇濃度(4%vol、8%vol、12%vol、16%vol)、二氧化硫(采用亞硫酸鈉進(jìn)行二氧化硫濃度調(diào)節(jié),二氧化硫濃度采用碘吸收滴定法進(jìn)行測定[16])含量(100mg/L、200mg/L、300mg/L、400mg/L、500mg/L、600mg/L)、及蔗糖含量(15%、25%、40%、55%、70%)的帶有杜氏管的YPD培養(yǎng)基中,接種量為1.0×107CFU/mL,25℃培養(yǎng)24h,在波長600nm處測其吸光度值。
標(biāo)準(zhǔn)品基因和目的基因擴(kuò)增電泳結(jié)果分別如圖1和圖2。由圖1和圖2電泳亮斑可知,對樣本的18S rDNA基因進(jìn)行PCR擴(kuò)增,所擴(kuò)增片段的大小約為1.8kb,和真核生物的18S rRNA/DNA基因片段大小一致,因此達(dá)到了對酵母的18S rDNA基因的PCR擴(kuò)增目的。
圖1 標(biāo)準(zhǔn)品基因Fig.1 Standard gene
圖2 目的基因擴(kuò)增電泳圖瓊脂糖(1%)Fig.2 PCR electrophoretogram of objective gene (agarose 1%)
經(jīng)TaqDNA聚合酶擴(kuò)增后的PCR產(chǎn)物末端都帶有單個(gè)A。正是基于這一原理,pGEM質(zhì)粒經(jīng)EcoRⅠ切成平端后,在開口端加上一個(gè)T制成T載體,一方面避免了自身環(huán)化,另一方面由于T-A互補(bǔ),從而提高了T載體與PCR產(chǎn)物之間的連接效率。由于T-A克隆只需要純化PCR產(chǎn)物,因而操作較為簡便。pGEM-T載體含絲狀噬菌體f1的復(fù)制起始區(qū),用于產(chǎn)生環(huán)狀ssDNA;含有T7和SP6 RNA聚合酶啟動子;在多克隆區(qū)域具有編碼β-半乳糖苷酶的基因(LacZ),插入失活α-肽可在指示平板上通過藍(lán)、白菌落直接篩選重組菌落。
在實(shí)驗(yàn)中采用了內(nèi)切酶EcoRⅠ對重組后的質(zhì)粒進(jìn)行了切割,因此嵌合有18S rRNA/DNA目的基因的重組質(zhì)粒pGEM-T的酶切片段電泳亮斑應(yīng)和DNA MarkerⅦ中長度為2.0kb和1.5kb的核酸片段亮斑位置相近。如圖3,連接反應(yīng)成功的將PCR擴(kuò)增后的18S rDNA基因連接到了T-載體上,并在感受態(tài)的大腸桿菌中得到了表達(dá),形成白色菌落,通過電泳檢測到完整的18S rDNA基因,通過基因測序,鑒定出為異常畢赤酵母菌(Pichia anomala)。
圖3 質(zhì)粒酶切瓊脂糖(1%)Fig.3 Plasmid enzyme digestion(agarose 1%)
在四川高原藏區(qū),冰葡萄酒的發(fā)酵溫度一般控制在10℃左右,這樣使得冰葡萄酒原料能夠在一定的低溫條件進(jìn)行緩慢長時(shí)間發(fā)酵,以期獲得較好的冰葡萄酒品質(zhì)。將分離純化得到的異常畢赤酵母菌(Pichia anomala)接種于培養(yǎng)基后在不同溫度下觀察其生長情況,結(jié)果表明(圖4),隨著溫度的增加,該酵母菌株的生長情況明顯好轉(zhuǎn),然而當(dāng)溫度超過28℃后,其生長力有所下降。由圖4可知,該酵母菌株在低溫條件下如8℃時(shí),具有一定的生長力。結(jié)果表明,該酵母菌株可以滿足冰葡萄酒的生產(chǎn)所需。
圖4 不同溫度對Pichia anomala酵母菌活性的影響Fig.4 Effect of different temperature on the activity ofPichia anomala
酵母菌的耐酸堿性能對于葡萄酒的發(fā)酵過程影響比較大,因此,本實(shí)驗(yàn)將異常畢赤酵母菌(Pichia anomala)接種于pH值分別為1.5、2.0、4.0、6.0、8.0、10.0和12.0的培養(yǎng)基中進(jìn)行培養(yǎng),結(jié)果表明(圖5),該酵母菌株隨著pH值的增加,其活菌數(shù)出現(xiàn)先增加后減少的趨勢,在pH=6.0處,生長得最好,在pH=4.0處,生長情況也比較好。在pH值為4.0和6.0時(shí),其生長情況明顯好于在其他pH值的環(huán)境中。
圖5 不同pH值對Pichia anomala酵母菌活性的影響Fig.5 Effect of different pH values on the activity ofPichia anomala
在冰葡萄酒釀造中,隨著發(fā)酵的進(jìn)行,葡萄醪中的酒精度會有一定的變化,發(fā)酵前期會有上升的趨勢。因此,在冰葡萄酒釀造過程中,對酵母菌株耐乙醇性能的研究具有一定的意義。由圖6可知,當(dāng)乙醇濃度為4%vol時(shí),該菌株的生長情況較好,而當(dāng)濃度增加8%vol時(shí),該酵母菌的生長變得緩慢,當(dāng)乙醇濃度進(jìn)一步增加,該酵母菌的存活量明顯低于其在低乙醇濃度環(huán)境下。結(jié)果表明,該酵母菌對乙醇具有一定的耐受性。
圖6 不同乙醇濃度對Pichia anomala酵母菌活性的影響Fig.6 Effect of different ethanol concentrations on the activity ofPichia anomala
在冰葡萄酒或其他類型的葡萄酒釀造中,通常在葡萄醪中添加一定亞硫酸,轉(zhuǎn)化為二氧化硫,從而起殺菌、澄清、增酸等作用。因此,在冰葡萄酒釀造過程中,對酵母菌株的耐二氧化硫能力的研究就顯得必要。由圖7可以看出,采用亞硫酸鈉調(diào)節(jié)培養(yǎng)基中SO2濃度,當(dāng)SO2含量為100mg/L時(shí),該菌株的生長情況較好,而當(dāng)濃度增加200mg/L時(shí),該酵母菌的生長明顯得到抑制。隨著SO2(亞硫酸鈉)濃度的增加,該酵母菌的存活量逐漸下降,結(jié)果表明,該酵母菌對SO2具有一定的耐受性。
圖7 不同SO2濃度對Pichia anomala酵母菌活性的影響Fig.7 Effect of different SO2 concentrations on the activity ofPichia anomala
對于冰葡萄酒而言,在發(fā)酵初期,發(fā)酵液中的含糖量是比較高的,隨著發(fā)酵的進(jìn)行,殘?zhí)堑南陆邓俣纫脖容^快,酵母菌應(yīng)具有一定的耐糖性能,才能使冰葡萄酒的發(fā)酵順利進(jìn)行。由圖8可知,當(dāng)蔗糖質(zhì)量濃度為15%時(shí),該菌株的生長情況較好,而當(dāng)質(zhì)量濃度增加為25%時(shí),該酵母菌的生長有所減緩。隨著糖質(zhì)量濃度的增加,該酵母菌的存活量逐漸下降,而當(dāng)糖的質(zhì)量濃度增加至40%時(shí),該酵母菌的生長明顯得到抑制。結(jié)果表明,該酵母菌具有較好的耐糖性能。
圖8 不同蔗糖質(zhì)量濃度對Pichia anomala酵母菌活性的影響Fig.8 Effect of different sucrose contents on the activity ofPichia anomala
本研究從四川藏區(qū)高原威代爾冰葡萄果實(shí)中分離純化出了異常畢赤酵母菌(Pichia anomala)菌株,采用18S rDNA D1/D2序列進(jìn)行了基因鑒定,并通過耐性實(shí)驗(yàn)分析,結(jié)果顯示鑒定出的異常畢赤酵母分別在28℃、pH=4.0或6.0條件下,生長情況較好,在低溫8℃條件下具有一定的生存力。并對乙醇、二氧化硫和糖均有一定的耐受性。此研究對篩選川西冰葡萄酒產(chǎn)區(qū)特色酵母菌,構(gòu)建冰葡萄酒發(fā)酵微生物資源庫和豐富其種質(zhì)資源具有重要意義。但是,由于形成冰葡萄酒特有風(fēng)味品質(zhì)的發(fā)酵微生物菌群十分復(fù)雜,我們的研究也仍將繼續(xù),以期為川西藏區(qū)冰葡萄酒標(biāo)準(zhǔn)化生產(chǎn)提供技術(shù)支持。
[1]張 彥.冰葡萄酒[J].釀酒,2007,34(5):89-90.
[2]崔 艷.菌種選育技術(shù)在葡萄酒釀造中的應(yīng)用與發(fā)展[J].食品研究與開發(fā),2011,32(9):171-175.
[3]程 雷.葡萄自然發(fā)酵過程中酵母的分離鑒定及優(yōu)良葡萄酒酵母篩選[D].哈爾濱:東北林業(yè)大學(xué)碩士論文,2010.
[4]王國平.寧夏御馬葡萄酒廠野生酵母菌株的分離篩選及分子鑒定[J].中國釀造,2009,28(8):38-41.
[5]王鳳梅.土默川平原葡萄酒相關(guān)酵母的分離與鑒定[J].四川食品與發(fā)酵,2008,44(5):62-64.
[6]MERIN M G,MENDOZA L M,FARIAS M E,et al.Isolation and selection of yeasts from wine grape ecosystem secreting cold-active pectinolytic activity[J].Int J Food Microbiol,2011,147(2):144-148.
[7]楊雪峰.利用WL 營養(yǎng)培養(yǎng)基鑒定葡萄酒中的相關(guān)酵母菌[J].中外葡萄和葡萄酒,2006(4):4-7.
[8]王 慧.產(chǎn)地葡萄酒優(yōu)良酵母菌株的篩選及鑒定[J].釀酒科技,2007(9):29-34.
[9]楊美景.赤霞珠葡萄自然發(fā)酵過程中酵母菌的分離與鑒定[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2011,37(7):22-27.
[10]薛軍俠.WL 培養(yǎng)基在釀酒酵母篩選中的應(yīng)用[J].中國釀造,2007,26(9):36-39.
[11]NAUMOVA ES,NAUMOV GI,MICHAILOVA YV,et al.Genetic diversity study of the yeastSaccharomyces bayanusvar.uvarum reveals introgressed subtelomericSaccharomyces cerevisiaegenes[J].Res Microbiol,2011,162(2):204-213.
[12]AUNG W,WATANABE Y,HASHINAGA F.Isolation and phylogenetic analysis of two thermotolerant,fermentative yeast strains from liquid tape ketan(indonesian rice wine)[J].Food Sci Technol Res,2012,18(2):143-148.
[13]張志華.核酸序列直接分析在真菌鑒定方面的應(yīng)用[J].華南熱帶農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2006,12(2):39-43.
[14]RODRIGUEZ M E,INFANTE J J,MOLINA M,et al.Using RFLPmtDNA for the rapid monitoring of the dominant inoculated yeast strain in industrial wine fermentations[J].Int J Food Microbiol,2011,145(1):331-335.
[15]趙祥杰,涂國全.一株桑椹果酒酵母的分離篩選及耐性測定[J].釀酒科技,2007(1):28-32.
[16]何紅梅,薛則堯,曹小彥.碘吸收滴定法測定食品中二氧化硫殘留量[J].食品與機(jī)械,2006,22(3):142-143.