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    硝苯地平生物黏附微球的制備及釋藥機制研究

    2012-12-03 03:35:14周曉東于立軍南京軍區(qū)南京總醫(yī)院湯山分院藥械科南京211131
    中國藥房 2012年17期
    關(guān)鍵詞:機制生物

    周曉東,于立軍(南京軍區(qū)南京總醫(yī)院湯山分院藥械科,南京211131)

    難溶性藥物經(jīng)胃腸道給藥面臨的難題在于如何提高其生物利用度,通過改善難溶性藥物從制劑中溶出的速度和藥物的溶解度,進而提高生物利用度,已成為藥學工作者研究和關(guān)注的焦點[1,2]。生物黏附給藥系統(tǒng)(Bioadhesive drug deliverysysterms,BDDS)是利用載藥材料對生物黏膜表面的黏附性能,使給藥系統(tǒng)在生物膜的特定部位滯留時間延長,或達到藥物在特定部位吸收的目的[3,4]。微球(Microsphere)是指藥物溶解或分散在載藥材料基質(zhì)中形成粒徑為1~40 μm的微小球狀實體,是近年來制劑研究的新熱點[5,6]。本文以難溶性藥物硝苯地平(Nifedipine,NFP)為模型藥物,利用BDDS技術(shù)制備NFP生物黏附微球,考察其體外黏附性能和釋藥行為,并對其釋藥機制進行研究,探討制備難溶性藥物生物黏附微球的方法。

    1 儀器與材料

    1.1 儀器

    ALC-210.4分析天平(德國Sartorius公司);752紫外分光光度計(上海精密科學儀器有限公司);ZRS-8 G型智能藥物溶出儀(天津天大天發(fā)儀器有限公司);恒溫水浴箱(常州國華電器有限公司)。

    1.2 材料

    乙基纖維素水分散體(商品名:Surelease?,上??房蛋录夹g(shù)有限公司);卡波姆934(簡稱CP,北京佳福晨康藥用輔料有限公司);NFP原料藥(武漢遠城國際集團,批號:20100901,純度:99.6%);NFP對照品(中國食品藥品檢定研究院,批號:100338,純度:99.5%);聚乙烯醇(PVA,上海強順化學試劑有限公司);其他試劑均為分析純。

    透析袋(天長市康鴻塑業(yè)有限公司,截留分子量:1000)。

    2 方法與結(jié)果

    2.1 NFP生物黏附微球的制備

    取處方量的NFP溶于適量丙酮溶液中,混合均勻,磁力攪拌下將上述溶液加入分散介質(zhì)司盤80中分散,攪拌1~2h。依次加入適量戊二醛(交聯(lián)劑)和硫酸(固化劑),使之交聯(lián)成球。減壓抽去溶劑,依次用丙酮和水各洗滌3遍,取微球置于干燥器中干燥過夜。收集制得的微球,用Surelease?和CP混合液包黏附衣層,包衣溫度60℃,包衣干燥時間4 h,包衣增重15%,干燥后貯存,即可得到NFP生物黏附微球;同法制備不含包衣層的微球。

    2.2 NFP含量測定方法學考察

    精密稱取干燥至恒重的NFP 30 mg,用少許甲醇溶解后再以乙醇定容至100 mL,作為貯備液。精密吸取貯備液1、2、3、4、5、6mL置于50mL棕色量瓶中,以0.5%十二烷基硫酸鈉(SDS)水溶液定容至刻度,制備成硝苯地平濃度分別為6、12、18、24、30、36 μg·mL-1的系列標準溶液;以0.5%SDS水溶液為空白,在333 nm波長下測定吸光度。以濃度(x)為橫坐標,吸光度(y)為縱坐標,進行線性回歸處理,得回歸方程為y=0.0115 x+0.0015(r=0.9993),結(jié)果,NFP檢測濃度線性范圍為6~36 μg·mL-1。分別進行低、中、高濃度(10、20、30 μg·mL-1)的回收率試驗和精密度試驗,結(jié)果低、中、高濃度的平均回收率為99.5%(RSD=1.8%),日內(nèi)RSD分別為2.3%、1.5%、2.2%,日間RSD分別為2.4%、1.8%、2.0%,表明方法的準確度和精密度均符合要求。

    2.3 正交試驗設(shè)計優(yōu)化生物黏附微球處方工藝

    在前期單因素考察的基礎(chǔ)上,設(shè)計制備微球,總處方量為5mL,分別對影響微球質(zhì)量的因素進行考察:加熱溫度(A,℃)、PVA用量(B,g)、司盤濃度(C,%)、戊二醛用量(D,mL)。每個因素選取3個水平,選用L9(34)正交設(shè)計表,以藥物24 h累積釋藥率為評價指標,優(yōu)化微球處方。L9(34)正交試驗設(shè)計因素和水平見表1,正交試驗結(jié)果見表2,方差分析見表3。

    表1 因素和水平Tab 1 Factor and levels

    表2 正交試驗結(jié)果Tab 2 Design and results of orthogonal design

    表3 方差分析結(jié)果Tab 3 Result of variance analysis

    由直觀分析可知,各因素對藥物釋放的影響大小順序為因素C>D>B>A。通過方差分析可知,D因素的變化有統(tǒng)計學差異,故優(yōu)選D2,而A、B、C因素的變化無統(tǒng)計學差異,綜合考慮,確定處方優(yōu)選結(jié)果為D2A2B2C2,即加熱溫度為60℃,PVA用量為0.6 g,司盤濃度為5%,戊二醛用量為0.6 mL。以此制備3批樣品,進行質(zhì)量考察。

    2.4 微球的質(zhì)量考察

    2.4.1 載藥量、包封率的測定。取微球加入研缽中研磨,精密稱量50 mg,置于25 mL量瓶中,加入適量0.5%SDS溶液后,超聲溶解,定容,搖勻,靜置。濾過,取續(xù)濾液備用。精密量取續(xù)濾液1 mL置于100 mL量瓶中,加入0.5%SDS溶液稀釋至刻度,搖勻。取以相同方法制備的空白微球溶液和對照品溶液,于333 nm波長處測定吸光度。每批微球測定3次,由外標法計算藥物濃度,根據(jù)下列公式計算微球包封率和載藥量[7]:包封率(%)=(微球中的含藥量/微球與介質(zhì)中的總藥量)×100%,載藥量(%)=(微球中NFP質(zhì)量/微球總質(zhì)量)×100%。結(jié)果平均載藥量約為15%,包封率約為85%,詳見表4。

    表4 3批微球載藥量及包封率測定結(jié)果Tab 4 Results of drug-loading amount and encapsulation efficiency of 3batches of microspheres

    2.4.2 微球粒徑的測定。取微球適量,分散于適量水中,超聲震蕩15 min后,均勻涂布于載玻片上,采用光學顯微觀察微球的粒徑及分布。根據(jù)公式D=∑(nd)/∑n(D:平均粒徑;n:微球個數(shù);d:統(tǒng)計范圍內(nèi)微球等價粒徑的平均值)計算800個微球的粒徑得平均粒徑,再根據(jù)800個微球粒徑的統(tǒng)計結(jié)果,分析微球粒徑的分布范圍[7],結(jié)果見圖1。

    圖1 微球粒徑分布圖Fig 1 The particle size distribution of microspheres

    從圖1可見,本法制備的微球平均粒徑約為20μm,其粒徑85%均勻分布在16~20μm左右,可知粒徑分布均勻。

    2.4.3 體外黏附性能的評價。采用自制的體外黏附力測定裝置[8]。試驗時用502膠水將適量生物黏附微球的一側(cè)固定于2 cm×2 cm背面帶掛鉤的聚氯乙烯薄片B上,備用;將已準備的大鼠胃組織剪成小片,用502膠水固定于相同規(guī)格的薄片A上。滴加生理鹽水5滴于微球表面潤濕10 min后與固定于薄片A的胃組織接觸,并給予500 g壓力,施壓時間5 min,將薄片A掛鉤垂直固定,在薄片B掛鉤上掛系一塑料袋,以8~10 mL·min-1的速度向袋中注水,直至微球下側(cè)與黏膜分離,記錄塑料袋、水及薄片B的重量(g),即得體外最大黏附力。測定3批微球的最大體外黏附力并與未包衣的微球比較,結(jié)果見表5。

    表5 2種微球體外黏附力測定結(jié)果Tab 5 The adhesive ability of 2kinds of microspheres in vitro

    由表5可知,黏附微球體外黏附力明顯高于未包衣微球,前者具有較好的黏附效果。

    2.4.4 體外釋放性考察。以900 mL 0.5%SDS溶液為釋放介質(zhì),保持溫度在(37±1)℃。精密稱取適量微球,置于透析袋中,將透析袋放入釋放杯中,開啟攪拌(100 r·min-1)。分別于0、1、2、4、8、12、14、18、24 h取樣5 mL(同時在溶出杯中補入相同體積的新鮮釋放介質(zhì))。濾過,精密量取續(xù)濾液1 mL,置于25 mL量瓶中,加入0.5%SDS溶液至刻度,搖勻。取相同方法制備的空白微球溶液和對照品溶液,于333 nm波長處測定吸光度。按外標法計算各點的藥物濃度,求算3批微球的累積釋藥率,繪制體外釋藥曲線,見圖2。

    圖2 微球的體外釋藥曲線(n=3)Fig 2 Drug release curves of microspheres in vitro(n=3)

    由圖2可見,微球可持續(xù)24 h釋藥;體外釋藥曲線分別按零級、一級、Higuchi方程擬合,結(jié)果顯示所制微球數(shù)據(jù)符合Higuchi釋藥動力學方程(r>0.9900),具有較好的體外緩釋性能。

    2.5 釋藥機制研究

    根據(jù)藥物從骨架中釋放機制的Ritger-Peppas方程[9]可知:Mt/M∞=ktn。式中:Mt/M∞為藥物在某一時間的累積釋藥率;t為釋放時間;k為常數(shù),該常數(shù)隨不同藥物或不同處方以及不同釋放條件而變化,表示釋放速率大小的重要參數(shù);n為釋放參數(shù),為Ritger-Peppas方程中表示釋放機制的特征參數(shù)(當n<0.45時,服從Fick擴散;當n>0.89時,為骨架溶蝕機制;當0.45<n<0.89時,為非Fick擴散機制,藥物釋放機制為混合型,即藥物釋放為藥物的擴散和骨架溶蝕雙重機制[9])。

    結(jié)果,Ritger-Peppas擬合方程為:lnQ=0.7512 t+2.0821(r=0.9978),其中n=0.7512(0.45<n<0.85),為非Fick擴散機制,表明NFP從自制黏附微球中以擴散和骨架溶蝕2種途徑釋放。

    3 討論

    本試驗中采用乙基纖維素水分散體Surelease?和CP混合作為外層黏附衣層,一方面可以通過Surelease?適當?shù)哪た子行д{(diào)節(jié)NFP的釋放行為,另一方面可以借助CP的黏附性能使微球較長時間地黏附于胃腸黏膜[10],增加藥物吸收,以期提高難溶性藥物的生物利用度。

    生物黏附微球的制備過程中可變因素較多,本文在單因素考察的基礎(chǔ)上通過正交設(shè)計優(yōu)化處方工藝,分別考察了加熱溫度等各因素對微球釋藥的影響,最終以優(yōu)選處方工藝連續(xù)制備3批樣品并評價其質(zhì)量。結(jié)果顯示所制微球具有緩釋性,其釋藥機制符合非Fick擴散機制,藥物以溶蝕和擴散2種模式釋放。

    本研究建立的體外黏附力的測定可在一定程度上反映制劑體內(nèi)的黏附性能,但準確度仍需進一步探明。同時,NFP生物黏附微球體內(nèi)釋藥行為及體內(nèi)吸收的相關(guān)性等仍有待于進一步研究。

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