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    百合多糖的分離純化及結(jié)構(gòu)表征

    2012-10-08 02:55:24何純蓮
    關(guān)鍵詞:糖醛酸葡聚糖分子量

    吳 雄,何純蓮,陳 蓉

    (湖南師范大學(xué)醫(yī)學(xué)院,湖南 長沙 410006)

    百合是傳統(tǒng)藥食兼用佳品,具有多種藥理活性成分,其中多糖的含量高達(dá)6%[1]?,F(xiàn)代醫(yī)學(xué)研究表明百合多糖具有降血糖、抗腫瘤、抗氧化、抗疲勞、免疫調(diào)節(jié)等藥理作用[2-6]。通過對百合多糖結(jié)構(gòu)分析,從構(gòu)效關(guān)系對百合多糖的藥理活性進(jìn)行系統(tǒng)研究,因此對百合多糖的純化及結(jié)構(gòu)表征具有重要的應(yīng)用價(jià)值。

    近年來國內(nèi)外學(xué)者對百合多糖的研究已逐步開展起來,提取方法和條件已較為成熟,但是對其化學(xué)結(jié)構(gòu)的研究仍然比較少,大多數(shù)對百合多糖的研究報(bào)道缺乏詳盡的結(jié)構(gòu)信息。本文采用水提醇沉,Sevag試劑脫蛋白法[7]得到百合多糖粗品;采用DEAE-52纖維素柱層析[8-9]、Sephadex G-100凝膠層析[10]純化分離得到三種多糖,并應(yīng)用HPLC法[11]對其分子量進(jìn)行測定、應(yīng)用紅外光譜分析法[12]對其結(jié)構(gòu)進(jìn)行表征,旨在為百合多糖藥理活性的深入研究和功能性食品的開發(fā)提供理論基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 主要儀器與試劑

    紫外可見分光光度計(jì)(北京萊伯泰科儀器有限公司,BlueStar);高效液相色譜儀 (日本島津,LC-2010A HT);蒸發(fā)光散射器(天津埃文森科技有限公司,ELSD800);傅里葉紅外光譜儀(北京第二光學(xué)儀器廠,WQF-310)。 百合 (湖南省龍山縣提供);DEAE-52 纖維素 (Whatman);Sephadex G-100(Pharmacial);甲醇(色譜純);咔唑、半乳糖醛酸標(biāo)準(zhǔn)品、葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品、無水乙醇、95%乙醇、冰醋酸、無水乙醚、丙酮、氯仿、正丁醇、苯酚等均為國藥集團(tuán)化學(xué)試劑。

    1.2 百合多糖的提取分離純化

    1.2.1 百合多糖粗品提取工藝

    新鮮百合→洗凈切碎、稱重→水提取→離心、過濾→4℃醇沉過夜→離心、過濾→復(fù)溶→Sevag法脫蛋白→ 醇沉、過濾→無水乙醇、無水乙醚、丙酮洗滌→烘干、得多糖粗品。

    1.2.2 DEAE 52-纖維素柱層析

    采用2.0×55cm層析柱,填料高度35cm,上樣濃度8mg/mL,用250mL去離子水、250mL0.04MNaCl溶液、300mL0.1MNaOH溶液依次進(jìn)行洗脫,10mL每管收集洗脫液。用苯酚-硫酸法在490nm下測定收集樣中的糖含量,作出洗脫曲線圖。根據(jù)洗脫曲線圖,將各洗脫峰樣品收集合并,經(jīng)濃縮、透析后,加乙醇至70%沉淀后過濾得到三種多糖,烘干備用。

    1.2.3 百合多糖的Sephadex G-100柱層析純化

    百合多糖I:采用2.0×55cm層析柱,填料高度36.5cm,流速 3min/ml,5ml每管收集;上樣百合多糖I,用0.1M NaCl溶液進(jìn)行洗脫。百合多糖II:采用1.0×58cm層析柱,填料高度33cm,流速2min/ml,3ml每管收集;上樣百合多糖 II,用 0.1M NaCl溶液進(jìn)行洗脫。百合多糖III:采用2.0×55cm層析柱,填料高度38cm,流速3min/ml,5ml每管收集;上樣百合多糖III;用0.1M NaCl溶液進(jìn)行洗脫。用苯酚-硫酸法在490nm下進(jìn)行檢測,以洗脫管數(shù)為橫坐標(biāo),吸光值為縱坐標(biāo)作圖。

    1.3 百合多糖理化性質(zhì)及紅外、紫外分析

    1.3.1 理化性質(zhì)分析

    溶解性:取少量多糖樣品于10mL的水、熱水、乙醇、丙酮等溶劑中,2h后觀察其溶解情況。

    碘-碘化鉀反應(yīng):于百合多糖溶液((1mg/mL)中加人碘-碘化鉀溶液,觀察顏色變化。以蒸餾水作陰性對照,淀粉溶液(1mg/mL)作陽性對照。

    糖醛酸含量分析:采用咔唑-硫酸法測定多糖中糖醛酸含量。取8支具塞比色管,各加入12ml濃硫酸,置于冰水浴中,冷卻依次加入濃度為0μg/mL、10μg/mL、20μg/mL、30μg/mL、40μg/mL、50μg/mL、60μg/mL、70μg/mL 的半乳 糖醛 酸標(biāo)準(zhǔn) 溶液2mL,充分混合后,再置冰水浴中冷卻。然后在沸水浴中加熱10min冷卻到室溫,各加入0.15%咔唑無水乙醇溶液lmL,搖勻,在室溫下暗處放置2h,測定吸光度(A),建立線性回歸方程,取樣品液1mL,用同樣的方法進(jìn)行測定,通過線性計(jì)算糖醛酸含量。

    1.3.2 紅外分析

    1.3.3 紫外分析

    1.4 百合多糖分子量的測定

    采用高效液相色譜法(HPLC)對百合多糖I、II、III進(jìn)行分子量的測定。 色譜柱為TSK gelG2000SWXL柱,以超純水為流動相,流速1.0mL/min,進(jìn)樣量 10μL。

    建立回歸方程:將系列葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)品6000,11800,37500,112000,212000,402000 分 別配成濃度為0.2%的溶液,以1gMr(分子量對數(shù))對TR(保留時(shí)間)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到線性回歸方程,計(jì)算其分子量。

    2 結(jié)果

    圖1為百合多糖的DEAE52-纖維素柱洗脫曲線,用250mL去離子水洗脫得百合多糖I,后用250mL 0.04mol/L NaCl洗脫得百合多糖II,再用300mL 0.1mol/L NaOH洗脫得到百合多糖III。

    2.1 百合多糖的分級純化

    圖1 百合多糖的DEAE52-纖維素柱洗脫曲線

    由圖 1 可知, 水、0.04mol/L NaCl、0.1 mol/L NaOH的洗脫曲線均為單一峰形,分別收集各洗脫峰主峰位置的洗脫液。重復(fù)上樣,將收集到的樣品濃縮、醇沉,獲得多糖樣品。

    2.2 百合多糖的葡聚糖純化

    下圖為經(jīng)葡聚糖柱洗脫后所得三種多糖的葡聚糖G-100洗脫曲線

    圖2 百合多糖Ⅰ的葡聚糖G-100洗脫曲線

    圖3 百合多糖Ⅱ的葡聚糖G-100洗脫曲線

    圖4 百合多糖Ⅲ的葡聚糖G-100洗脫曲線

    由圖2、3、4可知,三條洗脫曲線均為單一峰形,分別收集各洗脫峰主峰位置的洗脫液濃縮、醇沉得百合多糖純品。

    2.3 理化性質(zhì)

    百合多糖I為淺黃色晶體,硬度高,不易吸潮,不溶于冷水和乙醇、乙醚等有機(jī)溶劑,微溶于熱水。碘-碘化鉀測試成陰性,說明不含淀粉。由表1咔唑-硫酸法測定其糖醛酸含量為13.64%。

    百合多糖II為淺黃色晶體,硬度略低于百合多糖I,不易吸潮,不溶于乙醇、乙醚等有機(jī)溶劑,微溶于冷水,易溶于熱水。碘-碘化鉀測試成陰性,說明不含淀粉。由表1咔唑-硫酸法測定其糖醛酸含量為10.98%。

    百合多糖III為淺黃色粉末,易吸潮,不溶于乙醇、乙醚等有機(jī)溶劑,易溶于冷水,尤其易溶于熱水。碘-碘化鉀測試成陽性,說明含淀粉。由表1咔唑-硫酸法測定其糖醛酸含量為14.55%。

    表1 百合多糖中糖醛酸含量

    2.4 紅外光譜分析

    圖6 百合多糖Ⅱ紅外圖譜

    圖7 百合多糖Ⅲ紅外圖譜

    從圖5可以看出百合多糖I在3456cm-1處為-OH伸縮振動的吸收峰;1651cm-1處為C=O非對稱伸縮振動吸收峰;1100-11200 cm-1處有三個(gè)峰,為吡喃糖的特征吸收峰,則1024cm-1處為吡喃糖環(huán)的醚鍵C-O-C和-OH的變角振動的吸收峰。在700-1000 cm-1的吸收峰則是α-和β-吡喃單糖形成的特征吸收峰,則810cm-1,876cm-1處均為甘露糖殘基吸收峰。

    從圖6可以看出百合多糖II在3440cm-1處為-OH伸縮振動的吸收峰,1639cm-1處為C=O非對稱伸縮振動吸收峰,1100-1200 cm-1處只出現(xiàn)兩個(gè)峰,為呋喃糖苷的特征吸收,1153 cm-1,1024cm-1處為呋喃糖環(huán)的醚鍵C-O-C和-OH的變角振動的吸收峰。900-100cm-1處的小峰為=C-H面外彎曲振動峰,1400-1485cm-1處不明顯的峰為C-H面內(nèi)彎曲振動峰。

    從圖7可以看出百合多糖III在3465cm-1處為-O-H伸縮振動的吸收峰,1454 cm-1處為C-H變角振動吸收峰,1685cm-1處為C=O伸縮振動吸收峰,是糖醛酸的特征吸收峰,也可能是有少量蛋白的殘留。1100-1200 cm-1處有明顯可見的三個(gè)峰,則1157 cm-1,1020cm-1處為吡喃糖環(huán)的醚鍵CO-C和-OH的變角振動的吸收峰,在700-1000 cm-1的吸收峰則是α-和β-吡喃單糖形成的特征吸收峰,862cm-1處的吸收峰是甘露糖殘基吸收峰。

    2.5 紫外光譜分析

    多糖在190nm-200nm有一溶劑峰,無核酸(260nm)、蛋白質(zhì)(280nm)特征峰,說明多糖中不含蛋白質(zhì)和核酸成分。

    2.6 百合多糖相對分子量的測定

    表2 不同分子量葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)品的保留時(shí)間

    圖8 分子量標(biāo)準(zhǔn)曲線圖

    圖9 百合多糖Ⅰ的液相圖譜

    圖10 百合多糖Ⅱ的液相圖譜

    圖11 百合多糖Ⅲ的液相圖譜

    由圖9可知,百合多糖I有三個(gè)峰,且峰形有所重疊,說明多糖中由不同分子量的糖組成,且分子量比較接近而無法完全分開。三個(gè)峰的保留時(shí)間依次為 9.440,10.323,11.157,其中第 1、2 峰的峰面積較小,含量較低,故忽略不計(jì)。以11.157為該多糖的分子量計(jì)算,帶入標(biāo)準(zhǔn)曲線中可得百合多糖I的分子量為97672。

    由圖10可知,百合多糖II有五個(gè)主峰,峰面積相近,且峰形重疊,表明分子量范圍比較接近而無法完全分開,因此該多糖的分子量為一定范圍內(nèi)的數(shù)值。五個(gè)峰的保留時(shí)間依次為8.207,8.573,8.907,9.273,9.623,帶入標(biāo)準(zhǔn)曲線中計(jì)算可得百合多糖II的分子量范圍為219927-465232。

    由圖11可知,百合多糖III有二個(gè)峰,其保留時(shí)間依次為10.557,11.223,其中第1個(gè)峰的峰面積較小,故忽略不計(jì)。以11.223為該多糖的分子量計(jì)算,帶入標(biāo)準(zhǔn)曲線中可得百合多糖III的分子量為94321。

    3 討論

    采用水提醇沉得到的粗多糖,經(jīng)DEAE 52-纖維素柱層析、Sephadex G-100凝膠柱層析分離純化得到三種多糖。對純化后的多糖進(jìn)行理化性質(zhì)的初步鑒定,發(fā)現(xiàn)百合多糖I為淺黃色晶體,不溶于冷水和乙醇、乙醚等有機(jī)溶劑,微溶于熱水;不含淀粉;糖醛酸含量為13.64%;百合多糖II為淺黃色晶體,不溶于乙醇、乙醚等有機(jī)溶劑,微溶于冷水,易溶于熱水;不含淀粉;其糖醛酸含量為10.98%;百合多糖III為淺黃色粉末,易吸潮,不溶于乙醇、乙醚等有機(jī)溶劑,易溶于冷水和熱水;含淀粉;糖醛酸含量14.55%。

    采用HPLC測量多糖分子量,顯示百合多糖I的平均分子量為97000,百合多糖II的平均分子量范圍220000-465000,百合多糖III的平均分子量94000。

    紅外光譜表征顯示三種多糖都有-OH、C=O、C-O-C等多糖的特征吸收。

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