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    北方三省(區(qū))牛副流感病毒3型的血清學調查

    2012-06-29 09:01:10霍志云胡嘉欣
    動物醫(yī)學進展 2012年9期
    關鍵詞:細胞培養(yǎng)滴度牛群

    霍志云,童 欽,胡嘉欣,王 煒*

    (1.華威特(北京)生物科技有限公司,北京 100085;2.中國農業(yè)科學院特產研究所,吉林 長春 130122)

    牛副流感病毒3型(Bovine parainfluenza virus type 3,BPIV3)屬于單分子負鏈 RNA 病毒目(Mononegavirles)副黏病毒科(Paramyxoviridae)副黏病毒亞科(Paramyxovirinae)呼吸道病毒屬(Respirovirus)的成員[1],又稱為運輸熱病毒,是引起牛羊呼吸系統(tǒng)疾病的病毒之一[2]。牛副流感病毒在世界各國普遍存在,呈現(xiàn)不同的流行程度,人及其他動物體內均發(fā)現(xiàn)BPIV3的抗體。檢測方法主要有病毒中和試驗、酶聯(lián)免疫吸附試驗、間接免疫熒光及血凝抑制試驗等,其中病毒中和試驗是經典的鑒定BPIV3的血清學檢測方法,該方法敏感性強、特異性高,具有很高的應用價值,許多新建立的方法必需以該方法作為標準進行比較。鑒于3型牛副流感給肉牛和奶牛產業(yè)造成的巨大經濟損失,因此對該病應引起足夠重視。本試驗采用病毒中和試驗方法對中國北方部分地區(qū)牛場的血清樣品進行BPIV3的血清學調查,以掌握牛群中的BPIV3的分布情況,為其防治和凈化提供一定的科學依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 血液樣本的采集 自內蒙古、吉林、山西采集血液樣本482份,均未免疫接種BPIV3疫苗。

    1.1.2 試劑和器材 BPIV3標準株,陰性血清,陽性血清,MDBK細胞,由中國農業(yè)科學院特產研究所人獸共患病實驗室保存;聚苯乙烯管,單道自動移液器,漩渦振蕩器,CO2培養(yǎng)箱,生物安全柜,離心機,水浴鍋,滅菌槍頭。

    1.2 方法

    1.2.1 血清收集 采集10mL血液樣本離心(1500r/min,15min),收集血清,于-20℃保存。

    1.2.2 血清滅活 試驗時,將血清至于水浴鍋中,56℃滅活30min。

    1.2.3 血清稀釋 用PBS將血清兩倍倍比稀釋,從1∶2稀釋至1∶4096,每份血清樣品做一個重復。

    1.2.4 中和用病毒的稀釋 用DMEM將已知毒價的PI3標準毒進行稀釋,稀釋完成后取100μL加到稀釋好的100μL的血清中,此時標準毒的終濃度應為50TCID50/100μL~300TCID50/100μL。在37℃、體積分數(shù)為5%CO2培養(yǎng)箱中孵育1h。

    1.2.5 細胞接種 將96孔細胞培養(yǎng)板培養(yǎng)24h的細胞,棄去生長培養(yǎng)基,每孔加100μL培養(yǎng)基洗板。從培養(yǎng)箱中取出中和1h的培養(yǎng)板,用12道移液器吸取100μL病毒血清中和混合物每列對應加到細胞培養(yǎng)板中。

    1.2.6 回滴 利用最終確定的中和用病毒進行回滴試驗,取一新的細胞培養(yǎng)板用稀釋液將中和用病毒1∶1稀釋,與血清病毒中和板一同置于37℃、體積分數(shù)為5%CO2培養(yǎng)箱中孵育,1h后將上述稀釋好的病毒做10倍倍比稀釋,從10-1稀釋到10-3,將長滿單層的細胞培養(yǎng)板棄去培養(yǎng)基,每孔加100μL DMEM洗板,將待回滴的病毒懸液100μL/孔加到細胞培養(yǎng)板,每個稀釋度8孔。從較低濃度到較高濃度添加,并做好空白對照,回歸滴度在同一板在上作1個重復。3d~5d后觀察結果。

    1.2.7 記錄與計算 記錄試驗結果,通過Spearman-Karber方法計算血清效價和回歸滴度。

    1.2.8 數(shù)據(jù)的統(tǒng)計學分析 所得數(shù)據(jù)用SAS進行分析。

    2 結果

    2.1 結果判定條件

    陰性細胞對照無CPE;陽性對照血清效價在2倍于其確定的平均值之內;陰性血清對照效價<2,被檢血清效價≥2判定為陽性。

    2.2 BPIV3的血清學調查結果

    采用病毒中和試驗的方法對采自吉林、內蒙、山西的482份血清,進行BPIV3抗體檢測,檢出陽性血清439份,陽性率為91.08%,不同地區(qū)BPIV3清學調查結果見表1。

    表1 北方三省(區(qū))部分地區(qū)牛血清BPIV3抗體檢測結果Table1 A serological survey of antibodies against bovine parainfluenza virus type 3in three regions of north China

    吉林、內蒙、山西BPIV3流行率、標準誤及95%的可信區(qū)間分別為97.35%、2.25、79.31% ~89.31%,84.31%、1.67、91.88% ~98.42% 及95.15%、1.51、94.40%~100%(表2)。

    表2 BPIV3血清陽性率的標準誤和95%置信區(qū)間Table2 Standard error and 95%confidence interval for BPIV3seropositive rate

    3 討論

    牛呼吸系統(tǒng)疾病使肉牛業(yè)和奶牛業(yè)蒙受巨大經濟損失[3]。病毒感染是引起疾病的主要因素,而BPIV3是引起牛呼吸系統(tǒng)疾病最重要的病毒之一。本病很少引起動物的死亡,細菌激發(fā)感染后,引起伴隨肺炎的二重感染。副黏病毒具有潛在的種間傳播的能力。盡管BPIV3有感染人的潛能,但通常認為BPIV3并不是嚴重的人畜共患病[4]。

    歐美國家對BPIV3進行了大量的流行病學調查,Intisar K S等[5]采用 BPIV3ELISA 試劑盒,對采自不丹各地的495份駱駝的血清進行抗體檢測,結果發(fā)現(xiàn)血清陽性率平均值為82.2%,血清陽性率最高可達92.6%。H?gglund S等[6]對病毒引起的呼吸道系統(tǒng)疾病進行了6年的研究發(fā)現(xiàn),BPIV3在牛群中每年都會造成感染,并且具有很高的感染水平,Solís-Calderón JJ等[7]調查發(fā)現(xiàn)墨西哥肉牛BPIV3血清陽性率為85.6%。芬蘭進行的牛血清學調查發(fā)現(xiàn)80%的血清樣本呈BPIV3陽性[8]。采用間接ELISA試劑盒對伊朗的馬什哈德地區(qū)奶牛進行BPIV3的血清陽性進行調查,結果90%的血清呈陽性[9]。但我國尚未對BPIV3流行病學進行大量的調查,因此,對BPIV3流行情況了解甚微。

    本研究采用病毒中和的試驗方法,對我國吉林、內蒙和山西的部分牛群進行了BPIV3抗體檢測,血清陽性率分別為97.35%、84.31%、95.15%;與國外近幾年進行的BPIV3血清學調查結果相符和,試驗結果進一步證實BPIV3在牛群中廣泛存在。造成BPIV3血清陽性率高的原因可能有以下幾個方面,首先本病毒是一種高度接觸性傳染病,可以通過呼吸道傳播;其次,動物飼養(yǎng)密度大,一旦引進一頭患病動物,病毒將會在畜群中快速傳播。最后,本病通常引起輕微的臨床癥狀,易被忽視,因此沒有及時采取防控措施,使疾病得有效的控制。

    本研究對北方三?。▍^(qū))的牛群進行抽樣調查,計算各地流行率的平均值、率的標準誤及可信區(qū)間,率的標準誤小,說明抽樣誤差小,表示樣本率對總體率的代表性好,反之,率的標準誤大,樣本對總體率的代表性差。

    另外,從BPIV3陽性血清中隨機抽取169份,進行了抗體滴度的測定,山西的BPIV3陽性血清的抗體滴度主要分布在1∶32~1∶64之間,占山西陽性血清樣品數(shù)的91.3%;吉林陽性血清抗體滴度主要集中于1∶16~1∶32,占吉林陽性血清樣品數(shù)的70.1%;內蒙陽性血清抗體滴度主要集中于1∶128,占內蒙陽性血清樣品數(shù)的67.9%(數(shù)據(jù)未顯示),抗體的存在表明牛群目前或近期接觸過病毒,但并不能代表其具有了抵抗力。從北方三省(區(qū))調查數(shù)據(jù)可見,BPIV3在我國吉林、內蒙、山西牛群中普遍存在,為更詳細的了解本病在我國的流行情況,在全國范圍內進行全面的BPIV3流行病學調查是十分必要的。另外,應增加對本病的關注,采取有效的防控措施,降低病毒在牛群中的傳播水平,保護畜群健康安全。

    [1]Karron R A,Collins P L.Parainfluenza viruses[J].J Fields Virology,2007,1497-526.

    [2]Svensson C,Liberg P.The effete of group size on health and growth rate of Swedish dairy calves housed in pens with automatie milk feeders[J].J Prev Vet Med,2006,73(1):43-53.

    [3]Lekeaux P.Bovine respiratory disease complex:A European perspective[J].J Bov Pract,1995,29:71-75.

    [4]Karron R A,Collins P L.Parainfluenza viruses[J].J Fields Virol,2007,1:1497-1526.

    [5]Intisar K S,Ali Y H,Khalafalla A I,et al.Respiratory infection of camels associated with parainfluenza virus 3in Sudan[J].J Virol Meth,2010 ,163(1):82-86.

    [6]H?gglund S,Hjort M,Graham D A,et al.Six-year study on respiratory viral infections in a bull testing facility[J].J Vet,2007,173(3):585-593.

    [7]Solís-Calderón J J,Segura-Correa J C,Aguilar-Romero F,et al.Detection of antibodies and risk factors for infection with bovine respiratory syncytial virus and parainfluenza virus-3in beef cattle of Yucatan,Mexic[J].J Prev Vet Med,2007,82(1-2):102-110.

    [8]H?rtel H,Nikunen S,Neuvonen E,et al.Viral and bacterial pathogens in bovine respiratory disease in finland[J].J Acta Vet Scand,2004,45(4):193-200.

    [9]Roshtkhari F,Mohammadi G,Mayameei A.Serological evaluation of relationship between viral pathogens(BHV-1,BVDV,BRSV,PI-3V,and Adeno3)and dairy calf pneumonia by indirect ELISA[J].J Trop Anim Health Prod,2011,25:191-199.

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