劉娟娟,孫 曉,李太玉,王永勝,宋現(xiàn)讓?zhuān)賯ハ?,周長(zhǎng)春,穆殿斌,周正波,李永清
(山東省腫瘤防治研究院,濟(jì)南250117)
乳腺癌前哨淋巴結(jié)活檢術(shù)(SLNB)已經(jīng)替代腋淋巴結(jié)清除術(shù)(ALND)成為臨床腋淋巴結(jié)陰性的早期乳腺癌患者的標(biāo)準(zhǔn)處理術(shù)式[1,2],前哨淋巴結(jié)(SLN)的診斷技術(shù)是SLNB的關(guān)鍵技術(shù)之一。2010年2~6月,我們應(yīng)用一步核酸擴(kuò)增(OSNA)對(duì)113例乳腺癌患者的SLN進(jìn)行檢測(cè),對(duì)照術(shù)后常規(guī)病理檢測(cè)結(jié)果,評(píng)估OSNA檢測(cè)在SLN術(shù)中的診斷價(jià)值。
1.1 臨床資料 本文共入選113例乳腺癌患者,均為女性,年齡29~82歲,中位年齡47歲。術(shù)前均病理診斷明確,符合SLNB適應(yīng)證并自愿接受SLNB。其中,浸潤(rùn)性導(dǎo)管癌69例,浸潤(rùn)性小葉癌13例,導(dǎo)管內(nèi)癌7例,其他類(lèi)型28例。按照山東省腫瘤醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn)的研究方案和赫爾辛基宣言,每例入選患者均在知情同意書(shū)上簽字。先前曾接受過(guò)新輔助化療和同側(cè)腋窩手術(shù)的患者,本項(xiàng)研究不予納入。
1.2 方法
1.2.1 SLN處理 按SLN的質(zhì)量及短軸長(zhǎng)度進(jìn)行切分,若SLN質(zhì)量小于100 mg,則不進(jìn)行切分;SLN術(shù)中同時(shí)行快速冰凍病理(FS)檢測(cè),術(shù)后行常規(guī)病理檢測(cè)。SLN質(zhì)量100~1 200 mg,則進(jìn)行切分。若SLN短軸長(zhǎng)度小于4 mm,則切分為2枚組織塊,術(shù)中均行印片細(xì)胞學(xué)(TIC)檢測(cè)后,1枚組織塊行OSNA檢測(cè),另1枚行FS檢測(cè),術(shù)后FS檢測(cè)組織塊剩余組織行常規(guī)病理檢測(cè);若短軸長(zhǎng)度在4 mm以上,則切分為4枚組織塊,術(shù)中均行TIC檢測(cè)后,奇數(shù)組織塊行OSNA檢測(cè),偶數(shù)組織塊行FS檢測(cè),術(shù)后FS檢測(cè)組織塊剩余組織行常規(guī)病理檢測(cè)。術(shù)中FS、TIC、OSNA檢測(cè)任一陽(yáng)性者,即轉(zhuǎn)行ALND。
1.2.2 OSNA檢測(cè) OSNA檢測(cè)基于逆轉(zhuǎn)錄—環(huán)狀介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增原理,通過(guò)對(duì)SLN中CK-19的測(cè)定,快速檢測(cè)大于0.2 mm的轉(zhuǎn)移灶。檢測(cè)的操作人員均參加一項(xiàng)為期2 d的培訓(xùn),在對(duì)患者的淋巴結(jié)樣品進(jìn)行檢測(cè)前,已使用Sysmex公司提供的樣本通過(guò)了熟練操作測(cè)試。先用LYNOAMP BC試劑創(chuàng)建標(biāo)準(zhǔn)曲線,后將SLN組織塊進(jìn)行勻漿,隨后將引物、CK-19、酶、CK-19陰性及陽(yáng)性質(zhì)控、淋巴結(jié)原倍及稀釋樣本放入RD-100i OSNA Assay進(jìn)行擴(kuò)增。OSNA檢測(cè)的(++)、(+)及出現(xiàn)反應(yīng)抑制結(jié)果被判定為SLN陽(yáng)性。
1.2.3 常規(guī)病理檢測(cè) 該診斷作為SLN診斷的金標(biāo)準(zhǔn),切片厚度為4~6μm,每個(gè)SLN組織塊取4張切片。本研究中,SLN中大于0.2 mm的轉(zhuǎn)移灶定義為SLN陽(yáng)性,僅有孤立腫瘤細(xì)胞團(tuán)(ITC)者定義為淋巴結(jié)陰性。采用的診斷標(biāo)準(zhǔn)為2002年第6版美國(guó)癌癥聯(lián)合委員會(huì)腫瘤分期,>2 mm的轉(zhuǎn)移灶定義為宏轉(zhuǎn)移,0.2~2 mm的轉(zhuǎn)移灶定義為微轉(zhuǎn)移,<0.2 mm的轉(zhuǎn)移灶定義為ITC。
1.2.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS13.0統(tǒng)計(jì)軟件,不同檢測(cè)方法之間診斷效率差異采用χ2檢驗(yàn)。P≤0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
113例患者中,37例常規(guī)病理檢測(cè)陽(yáng)性,43例OSNA檢測(cè)陽(yáng)性。11例OSNA檢測(cè)假陽(yáng)性病例,5例假陰性病例。OSNA的準(zhǔn)確性為85.8%(97/113),其敏感性、特異性、陽(yáng)性預(yù)測(cè)值、陰性預(yù)測(cè)值分別為 86.5%(32/37)、85.5%(65/76)、74.4%(32/43)、92.9%(65/70)。
FS的準(zhǔn)確性為95.6%(108/113),其敏感性、特異性分別為86.5%(32/37)、100%(76/76);TIC的準(zhǔn)確性為92.0%(104/113),其敏感性、特異性分別為 91.9%(34/37)、92.1%(70/76)。OSNA 的敏感性與 FS(P=1.00)及 TIC(P=0.454)相似。
對(duì)于SLN宏轉(zhuǎn)移患者,OSNA的敏感性則為90.6%(29/32),F(xiàn)S和 TIC 的敏感性分別為 90.6%(29/32)和 96.9%(31/32),三者表現(xiàn)相似(P=0.161)。對(duì)于SLN微轉(zhuǎn)移患者,OSNA和TIC的敏感性均為60.0%,顯著高于 FS(0)(P=0.038)。
SLN的術(shù)中診斷可使SLN陽(yáng)性患者通過(guò)一次手術(shù)完成ALND,避免二次手術(shù),降低了二次手術(shù)的風(fēng)險(xiǎn)和費(fèi)用。當(dāng)前,SLNB已成為除炎性乳腺癌以外的臨床腋淋巴結(jié)陰性的浸潤(rùn)性乳腺癌患者的標(biāo)準(zhǔn)手術(shù)方式[3],其適應(yīng)證的擴(kuò)大對(duì)術(shù)中診斷提出了更高的要求。目前國(guó)際上和國(guó)內(nèi)普遍使用FS和TIC作為術(shù)中診斷的檢測(cè)方法[4]。FS和TIC的主觀性較強(qiáng),當(dāng)存在微轉(zhuǎn)移時(shí)容易漏診。van de Vrande等[5]報(bào)道,F(xiàn)S對(duì)大體轉(zhuǎn)移和微轉(zhuǎn)移的敏感性分別為84%和61.1%。薈萃分析顯示,TIC對(duì)二者的敏感性分別為81%和22%[6]。本研究FS和TIC的敏感性分別為86.5%和91.9%,二者對(duì)微轉(zhuǎn)移的敏感性分別為0和60.0%。相對(duì)于傳統(tǒng)的將SLN切分為二進(jìn)行檢測(cè)的方法,本研究采用的方法顯著提高了FS和TIC的敏感性,這是本研究FS及TIC的敏感性高于文獻(xiàn)報(bào)道水平的重要原因。
CK-19是上皮細(xì)胞的標(biāo)志基因,可作為乳腺癌在淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的標(biāo)志物,OSNA檢測(cè)基于逆轉(zhuǎn)錄環(huán)狀介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增原理,快速檢測(cè)淋巴結(jié)中CK-19的表達(dá),該技術(shù)具有無(wú)需mRNA純化、應(yīng)用6個(gè)引物提高特異性的優(yōu)勢(shì)。Tsujimoto等[7]的研究首先顯示,OSNA檢測(cè) SLN的準(zhǔn)確性為96.4%,CK-19是OSNA檢測(cè)的最佳基因,可根據(jù)其閾值進(jìn)行半定量檢測(cè)。Visser等[8]的研究顯示,OSNA檢測(cè)的準(zhǔn)確性、敏感性和特異性分別為 96.8%、94.7%、97.1%。本研究結(jié)果與文獻(xiàn)報(bào)道相似。
目前,多個(gè)指南均推薦將SLN切分為2 mm左右厚度的組織塊后進(jìn)行連續(xù)切片或逐層切片。美國(guó)腫瘤學(xué)會(huì)推薦對(duì)每個(gè)2 mm厚的組織塊在第1層面基礎(chǔ)上間隔 200~500μm 再切1~2個(gè)層面[9]。90%的歐洲研究機(jī)構(gòu)對(duì)SLN進(jìn)行連續(xù)切片[10]。連續(xù)切片只能評(píng)估約5%的SLN組織。受?chē)?guó)情影響,大部分國(guó)內(nèi)醫(yī)院對(duì)SLN僅行單個(gè)層面HE染色切片,容易漏診微轉(zhuǎn)移灶,具有更高的假陰性率。相比之下,OSNA可對(duì)100%的SLN組織進(jìn)行檢測(cè),克服了常規(guī)病理檢測(cè)方法存在取樣誤差的不足。同時(shí),OSNA檢測(cè)易于掌握,避免了主觀因素的干擾。
[1]Veronesi U,Paganelli G,Viale G,et al.Sentinel lymph node biopsy and axillary dissection in breast cancer:results in a large series[J].J Natl Cancer Inst,1999,91(4):368-373.
[2]Posther KE,Wilke LG,Giuliano AE.Sentinel lymph node dissection and the current status of American trials on breast lymphatic mapping[J].Semin Oncol,2004,31(3):426-436.
[3]Goldhirsch A,Ingle JN,Gelber RD,et al.Thresholds for therapies:highlights of the gallen international expert consensus on the primary therapy of early breast cancer 2009[J].Ann Oncol,2009,20(8):1319-1329.
[4]Silverstein MJ,Lagios MD,Recht A,et al.Image-detected breast cancer:state of the art diagnosis and treatment[J].JAm Coll Surg,2005,201(4):586-597.
[5]van de Vrande S,Meijer J,Rijnders A,et al.The value of intraoperative frozen section examination of sentinel lymph nodes in breast cancer[J].Eur J Surg Oncol,2009,35(3):276-280.
[6]Tew K,Irwig L,Matthews A,et al.Meta-analysis of sentinel node imprint cytology in breast cancer[J].Br J Surg,2005,92(9):1068-1080.
[7]Tsujimoto M,Nakabayashi N,Yoshidome K,et al.One-step nucleic acid amplification for intraoperative detection of lymph node metastasis in breast cancer patients[J].Clin Cancer Res,2007,13(16):4807-4816.
[8]Visser M,Jiwa M,Horstman A,et al.Intra-operative rapid diagnostic method based on CK19 mRNA expression for the detection of lymph node metastases in breast cancer[J].Int J Cancer,2008,122(11):2562-2567.
[9]Lyman GH,Giuliano AE,Somerfield MR,et al.American society of clinical oncology guideline recommendations for sentinel lymph node biopsy in early-stage breast cancer[J].JClin Oncol,2005,23(30):7703-720.
[10]Cserni G.A model for determining the optimum histology of sentinel lymph nodes in breast cancer[J].JClin Pathol,2004,57(5):467-471.