劉巧榮,孫 明,喬明明,楊 璐,申屠芬琴,馬永纓,曹 振,田克恭,陳西釗,
(1.北京世紀(jì)元亨動(dòng)物防疫技術(shù)有限公司,北京 100085;2.中國(guó)動(dòng)物疫病預(yù)防控制中心,北京 100094)
研究意義:干擾素(interferon,IFN)是一種多效性細(xì)胞因子,主要由活化的 T淋巴細(xì)胞產(chǎn)生,具有廣泛抗病毒、抗腫瘤及免疫調(diào)節(jié)功能。根據(jù)產(chǎn)生干擾素的細(xì)胞來(lái)源、理化性質(zhì)及生物學(xué)活性的差異,哺乳動(dòng)物的干擾素可分為 5類,即 α、β、τ、ω及γ[1]。與其它型比,IFN-γ除具有抗病毒活性和抗腫瘤活性外,還有更強(qiáng)的免疫調(diào)節(jié)活性,能促進(jìn)MHC II類抗原表達(dá)、增強(qiáng)抗原提呈細(xì)胞(antigen presenting cell,APC)與 T細(xì)胞的相互作用、增強(qiáng)輔助性T細(xì)胞活性和細(xì)胞毒性T細(xì)胞產(chǎn)生的能力等,是機(jī)體發(fā)揮免疫功能,清除體內(nèi)病原體不可缺少的成分,因此,IFN-γ成為現(xiàn)代分子生物學(xué),免疫學(xué)和臨床醫(yī)學(xué)研究的熱點(diǎn)之一。
前人的研究進(jìn)展:Douglas等(1986)首先對(duì)BovIFN-γ進(jìn)行了原核表達(dá),發(fā)現(xiàn)重組 BovIFN-γ蛋白在MDBK細(xì)胞系上的活性為 1.15×105U/m L。此后,國(guó)內(nèi)外學(xué)者用大腸桿菌、畢赤酵母、皰疹病毒和桿狀病毒等表達(dá)載體對(duì)其進(jìn)行了表達(dá)研究[2-6]。研究表明,BovIFN-γ在抗水泡性口炎病毒、口蹄疫病毒、牛病毒性腹瀉病毒、牛呼吸道合胞體病毒、牛白血病病毒以及副流感-3型病毒的試驗(yàn)中均取得了良好效果。另外,通過(guò)檢測(cè)牛血液中的 IFN-γ用于診斷牛結(jié)核病,目前已經(jīng)有BovIFN-γ檢測(cè)試劑盒出售[7]。
本研究切入點(diǎn):本研究旨在應(yīng)用基因工程技術(shù)實(shí)現(xiàn)BovIFN-γ的高效表達(dá),鑒定其抗原活性。為制備BovIFN-γ檢測(cè)試劑盒奠定基礎(chǔ)。
1.1 載體和菌株
pGEM-T-Easy、PET-28a載體,購(gòu)自 Promega公司。
1.2 主要試劑
TaqDNA聚合酶、dNTP和膠回收試劑盒購(gòu)自Promega公司,氨芐青霉素和IPTG購(gòu)自于Sigma公司。BovigamTM牛結(jié)核分枝桿菌 γ-干擾素檢測(cè)試劑盒購(gòu)自于北京測(cè)迪公司。BovIFN-γ酶標(biāo)單克隆抗體來(lái)自BovigamTM牛結(jié)核分枝桿菌γ-干擾素檢測(cè)試劑盒。內(nèi)切酶Sal I和EcoR I為Takara公司產(chǎn)品。
1.3 目的基因克隆
參考GeneBank上BIFN-γ基因序列設(shè)計(jì)引物。上游引物:5'-AGCGAATTCATGCAGGGCCAATTTT TTAGA-3',下游引物5'-TTTGTCGACTTACGTTGAT GCTCTCCGGCCT-3'。由寶生物工程大連有限公司合成。以人工合成的BIFN-γ基因序列為模板,克隆目的基因。
PCR擴(kuò)增程序:94℃ 4 m in,94℃ 30 s,50℃30 s,72℃ 60 s,30個(gè)循環(huán),72℃10 m in。
擴(kuò)增產(chǎn)物用1% 瓊脂糖凝膠電泳鑒定并回收?;厥债a(chǎn)物與 pGEM-T-Easy載體連接(方法參照Promega的產(chǎn)品使用說(shuō)明),PCR方法鑒定重組質(zhì)粒,并命名為pGEM-T-BIFN-γ。將鑒定正確的陽(yáng)性質(zhì)粒送上海英駿生物技術(shù)有限公司測(cè)序。
1.4 重組表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建
Sal I和 EcoR I雙酶切 pGEM-T-BIFN-γ質(zhì)粒,回收目的基因,連接至經(jīng)同樣雙酶切的原核表達(dá)載體PET-28a中;轉(zhuǎn)化到 BL21/DE3感受態(tài)細(xì)胞中。用PCR方法和雙酶切鑒定重組質(zhì)粒,將重組質(zhì)粒命名為PET-28a-BIFN-γ。
1.5 誘導(dǎo)表達(dá)與純化
將PCR和酶切鑒定為陽(yáng)性的菌在LB/AMP中37℃培養(yǎng),當(dāng)菌搖至 A600=0.8~1.0時(shí),加入 IPTG至終濃度為1 mmol/L,37℃誘導(dǎo)培養(yǎng)4 h,離心收集菌體。菌體經(jīng)過(guò)超聲波破碎,收集沉淀和上清液。沉淀用0.1%Triton X-100洗滌后,再用包涵體溶解液溶解。Ni-NTA親和層析法和電洗脫方法純化表達(dá)的重組蛋白。
1.6 SDS-PAGE和WesternBlot鑒定
將誘導(dǎo)菌液經(jīng)SDS-PAGE電泳分離后,轉(zhuǎn)印到硝酸纖維素膜(NC膜)。5%脫脂奶粉封閉過(guò)夜,PBST洗滌3次,用辣根過(guò)氧化酶標(biāo)記的抗BovIFN-γ單抗37℃孵育1h,洗滌3次后用二氨基聯(lián)苯胺(3,3'-diam inobenzidine,DAB)顯色液顯色1~5 min,觀察結(jié)果。
1.7 ELISA檢測(cè)鑒定
將純化的BovIFN-γ重組蛋白作相應(yīng)倍數(shù)稀釋,作為待檢抗原和 γ-干擾素檢測(cè)試劑盒的標(biāo)準(zhǔn)品分別加入到預(yù)先包被BovIFN-γ抗體的酶標(biāo)板中,溫育1 h,洗滌3次,再加入酶標(biāo)抗 BovIFN-γ的單克隆抗體,溫育1 h,洗滌3次。加入底物顯色10 min,再加入終止液。450 nm波長(zhǎng)下測(cè)定A值,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)品和樣品的A值,判定陰陽(yáng)性。
2.1 目的基因擴(kuò)增
以合成的BovIFN-γDNA序列為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增。擴(kuò)增的基因大小與預(yù)期大小一致(圖1)。測(cè)序結(jié)果顯示,克隆的基因片段大小為 429 bp,與M29867的序列完全相同。
圖1 BovIFN-γ的PCR結(jié)果1.Bov IFN-γgene;2:Negative control;M:DL 2000 markerFig.1 PCR products of BovIFN-γ
2.2 表達(dá)載體構(gòu)建
BovIFN-γ與表達(dá)載體 PET-28a連接轉(zhuǎn)化到BL21/DE3感受態(tài)細(xì)胞中。菌液PCR鑒定(圖2)顯示擴(kuò)增的基因大小與目的基因大小一致,重組質(zhì)粒PET-28a-BIFN-γ酶切結(jié)果見(jiàn)圖3。片段大小與預(yù)期結(jié)果一致,表明成功構(gòu)建原核表達(dá)載體。
2.3 PET-28a-BIFN-γ的誘導(dǎo)表達(dá)、純化及WesternBlot鑒定
圖2 PET-28a-BIFN-γ菌液PCR鑒定M:DL 2000 marker;1:PET-28a-BIFN-γbacilli; 2:Negative controlFig.2 PCR identification of PET-28a-BIFN-γ
牛干擾素在 PET-28a中的表達(dá)情況以及Western Blot鑒定結(jié)果分別見(jiàn)圖4和圖5。結(jié)果顯示重組質(zhì)粒在 E.coli BL21/DE3中實(shí)現(xiàn)了高效表達(dá),分子量約為17 kDa左右。目的蛋白以包涵體和可溶性兩種形式存在,且以可溶性表達(dá)為主。經(jīng)Alpha成像儀掃描分析,表達(dá)蛋白約占菌體總蛋白的32%。菌體裂解上清經(jīng)Ni-NTA親和層析和電洗脫方法純化后得到純度較高的重組蛋白,濃度分別為0.56 mg/m L和2.6 mg/m L。Western blot鑒定結(jié)果表明兩種方法純化的牛干擾素蛋白均可和酶標(biāo)BovIFN-γ單克隆抗體反應(yīng)(圖5),具有很好的抗原反應(yīng)活性。
圖3 PET-28a-BIFN-γ酶切鑒定M:DL 2000 marker;1:Recombinantplasmids of PET-28a-BIFN-γ;Fig.3 Restriction enzyme digestion of PET-28a-BIFN-γ
圖4 PET-28a-r-BIFN表達(dá)情況M:Low molecular weight protein marker;1:Control without induction;2:Expressions of recombinant plasmid induced by IPTG;3:Products of bacterial lysate supernatant;4:Products of bacterial lysate precipitation;5:Affinity chromatography purfied protein;6:Electroelution purfied proteinFig.4 SDS-PAGE analysis of PET-28a-r-BIFN protein expressed in BL21
2.4 ELISA
用γ-干擾素檢測(cè)試劑盒分別檢測(cè)兩種純化的PET-28a-BIFN-γ重組蛋白。結(jié)果見(jiàn)表1,由表看出,電洗脫和親和層析純化的 BovIFN-γ濃度分別大于或等于0.13μg/m L和0.0056μg/m L時(shí)為陽(yáng)性。
表1 電洗脫與親和層析純化抗原ELISA檢測(cè)A450結(jié)果Tab.1 ELISA results of purfied protein determined by electroelution and affinity chromatography
圖5 Western Blot1:Protein purified by electroelution 2:Protein purified by affinity chromatographyFig.5 Western blot results
BovIFN-γ可用于牛的一些病毒性疾病的防治,也可用于牛結(jié)核病的診斷[7,11]。牛結(jié)核病的 IFN-γ診斷法是1990年由Wood等建立,其原理是將試驗(yàn)牛的血液淋巴細(xì)胞培育,加入特異性抗原(如牛結(jié)核菌素,ESAT-6等)一起孵育16~24 h,感染牛結(jié)核的淋巴細(xì)胞釋放多量 IFN-γ,未感染牛結(jié)核的淋巴細(xì)胞不釋放或釋放少量 IFN-γ,通過(guò)檢測(cè)淋巴細(xì)胞培養(yǎng)上清中IFN-γ量的變化來(lái)診斷牛結(jié)核病。2000年世界牛分枝桿菌會(huì)議后,IFN-γ檢測(cè)方法在許多國(guó)家推廣使用,且己有檢測(cè)試劑盒出售。這種方法的敏感性和特異性較高,其敏感度可達(dá)93.6%,遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于傳統(tǒng)的皮內(nèi)試驗(yàn)65.6%的靈敏度[12],且能檢測(cè)出早期感染牛分枝桿菌的牛,降低了傳染的風(fēng)險(xiǎn)[13]。可見(jiàn)IFN-γ檢測(cè)方法具有良好的應(yīng)用前景。
目前國(guó)內(nèi)外用于診斷牛結(jié)核病的檢驗(yàn)方法分為三類:第一類是細(xì)菌學(xué)方法,如涂片鏡檢、細(xì)菌培養(yǎng)等。鏡檢簡(jiǎn)便、快速,檢測(cè)的靈敏度低;細(xì)菌培養(yǎng)耗費(fèi)時(shí)間,檢測(cè)陽(yáng)性率低。第二類是免疫學(xué)方法,包括結(jié)核菌素變態(tài)反應(yīng)(TST)、ELISA和 γ干擾素檢測(cè)法等。TST是臨床上應(yīng)用最廣的方法,也是國(guó)際獸醫(yī)局推薦的牛結(jié)核病診斷的唯一方法。ELISA和γ干擾素實(shí)驗(yàn)法通過(guò)檢測(cè)結(jié)核菌的特異性抗體或細(xì)胞因子等,可檢出處于不同感染時(shí)期(潛伏感染期、疾病期)的牛,簡(jiǎn)便快速、檢測(cè)陽(yáng)性率較高。第三類是分子生物學(xué)方法,如PCR、核酸探針、基因芯片等,檢測(cè)的陽(yáng)性率高于細(xì)菌學(xué)方法,但檢出的病牛也已處于傳染期。故應(yīng)用 ELISA技術(shù)檢測(cè)BovIFN-γ以鑒定牛結(jié)核病的感染情況不失為一種快速、有效的方法。
本研究表達(dá)的重組蛋白主要以可溶性形式存在于菌體裂解上清中。試驗(yàn)用親和層析和電洗脫兩種方法純化重組蛋白,純化蛋白均能與試劑盒中的BovIFN-γ單克隆抗體發(fā)生特異性反應(yīng)。ELISA試驗(yàn)結(jié)果顯示Ni-NTA親和層析純化的BovIFN-γ與BovIFN-γ單克隆抗體的反應(yīng)活性明顯高于電洗脫方法純化的蛋白。如濃度為0.056 ug/m l親和層析法純化的BovIFN-γ仍與BovIFN-γ單克隆抗體呈強(qiáng)陽(yáng)性反應(yīng)(A450值 =1.924),而相當(dāng)濃度(0.065 μg/m L)的電洗脫方法純化的蛋白與BovIFN-γ單克隆抗體呈陰性反應(yīng)(A450值 =0.120)。
本研究在大腸桿菌中成功表達(dá)了BovIFN-γ,純化的蛋白能被 BovIFN-γ單克隆抗體識(shí)別,其中 Ni-NTA親和層析純化蛋白的活性明顯高于電洗脫方法純化蛋白的活性。為制備抗 BovIFN-γ的單克隆抗體以及建立BovIFN-γ檢測(cè)試劑盒奠定了基礎(chǔ)。
[1]劉皓,焦丹,葛繼乾.干擾素國(guó)內(nèi)市場(chǎng)的現(xiàn)狀與發(fā)展分析[J].中國(guó)藥業(yè),2001,10(10):11-13.
[2]Cerretti DP,Mckereghan K, Larsen A, et al. Cloning,sequence,and expression of bovine interferon-gamma[J].J Immunol,1986,136(12):4561-4564.
[3]Raggo C,Habemehehl M,Babiuk L A,et al.The in vivo effects of recombinant bovine herpesvirus-I expressing bovine interfemngamma[J].JGen Vinol,2000,81:2665-2673.
[4]Mutakami K,Uchiya A,Kokuho T,et al.Production of biologically active recombinant bovine interferon-gamma by two different baculovirus gene expression systems using insect cells and silkworm larvae[J].Cytokine,2001,13:18-24.
[5]史喜菊,張燦,韓春來(lái),等.牛γ-干擾素在大腸桿菌與赤酵母中的表達(dá)及抗病毒活性比較[J].農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào),2005,13(4):461-467.
[6]牛γ-干擾素基因在大腸桿菌中的克?。跩].大連輕工業(yè)學(xué)報(bào),2005,24(2):106-109.
[7]Buonavoglia D,CorrenteM ,Mosca R,et al.The diagnosis of bovine tuberculosis—preliminary results on the use of theγinterferon test[J].IIProgress Veter,1995,23:770-772.
[8]李彤,張以芳,羅佳琴.牛γ-干擾素在牛結(jié)核檢測(cè)中的研究應(yīng)用[J].中國(guó)畜牧獸醫(yī),2006,33(11):53-57.
[9]Grobler DG,Michel AL,De Klerk LM,et al.The gammainterferon test.Its usefulness in a bovine tuberculosis survey in A frican buffaloes(Syncerous caffer)in the kruger National Park[J].Onderstepoort JVet Res,2002,69:221-227.
[10]Cousins DV,F(xiàn)lorisson N.A review of tests available for use in the diagnosis of tuberculosis in non-bovine species[J].Rev Sci Tech.2005,24:1039-1059.
[11]De la Rua-Domenech R,Goodchild AT,Vordermeier HM,etal.Ante mortem diagnosis of tuberculosis in cattle:a review of the tuberculin tests,gamma-interferon assay and other ancillary diagnostic techniques[J].Res Vet Sci.2006,81:190-210.
[12]Wood PR,Corner LA,Rothel JS,et al.Field comparison of the interferon-gamma assay and the intradermal tuberculin test for the diagnosis of bovine tuberculosis[J].Aust Vet J.1991,68:286 -290.
[13]Wood PR,Rothel JS.In vitro immunodiagnostic assays for bovine tuberculosis[J].Vet Microbiol.1994,40:125-135.