黃生炫, 安 宇, 李 靜, 熊云彪, 許長平, 楊 恒, 楊承勇, 譚新杰, 劉窗溪
腦梗死為一臨床常見的疾病類型,目前治療方法主要有溶栓、神經(jīng)保護(hù)、康復(fù)等,但均未能從根本上解決因梗死后導(dǎo)致的神經(jīng)細(xì)胞死亡。為此,國內(nèi)外大量的學(xué)者對腦梗死后以干細(xì)胞為基礎(chǔ)的細(xì)胞修復(fù)治療展開了系列研究,譚新杰等人[1]在研究成年大鼠大腦中動脈栓塞缺血再灌注時發(fā)現(xiàn)缺氧應(yīng)激可激活神經(jīng)元前體細(xì)胞的發(fā)生,并誘導(dǎo)神經(jīng)元前體細(xì)胞朝著梗死區(qū)域遷移,但細(xì)胞在缺血灶中的遷移機制尚未明確。
了解中樞神經(jīng)系統(tǒng)中細(xì)胞在缺氧應(yīng)激過程中的遷移機制有利控制其中的調(diào)控環(huán)節(jié),增加其遷移效率,進(jìn)而促進(jìn)梗死區(qū)域的神經(jīng)細(xì)胞修復(fù)。本文以中樞神經(jīng)系統(tǒng)中常見的星形膠質(zhì)細(xì)胞為研究對象,模擬腦梗死時的缺氧環(huán)境,探討在缺氧應(yīng)激過程中HIF-1α與SDF-1α/CXCR4的調(diào)控關(guān)系,以期為腦梗死的干細(xì)胞治療提供一定的實驗依據(jù)。
1.1 實驗材料與試劑 出生24h內(nèi)的SD乳鼠由貴陽醫(yī)學(xué)院動物中心提供,DMEM/F12購自Gibco公司,胎牛血清購自杭州四季清公司,CoCl2購自Sigma公司,GFAP抗體購自北京博奧森公司,倒置相差顯微鏡及熒光顯微鏡為Olympus公司產(chǎn)品,siRNA由本研究組和大連寶生物公司共同設(shè)計合成,逆轉(zhuǎn)錄試劑盒購自Fermentas公司,ELISA試劑盒購自美國USCN公司,其余試劑均為國產(chǎn)分析純。
1.2 星形膠質(zhì)細(xì)胞的分離培養(yǎng)及鑒定 使用酶消化及機械吹打法培養(yǎng)SD乳鼠星形膠質(zhì)細(xì)胞。免疫組織化學(xué)方法對星形膠質(zhì)細(xì)胞進(jìn)行鑒定。
1.3 HIF-1α沉默表達(dá)載體構(gòu)建 由本研究組和大連寶生物公司根據(jù)NCBI大鼠HIF-1α基因序列設(shè)計合成siRNA片段及其陰性對照片段。大鼠HIF-1α基因的siRNA序列為CCAGTTACGATTGTGAAGT。其陰性對照序列為GCCTTATACGCGATTAAGA。
1.4 實驗分組
1.4.1 未沉默缺氧組 培養(yǎng)星形膠質(zhì)細(xì)胞至80% ~90%融合,以終濃度分別為 0μmol/L、50μmol/L、100μmol/L、200μmol/L 的 CoCl2處理細(xì)胞,分別在0h、4h、16h、24h、36h 提取總RNA,留存培養(yǎng)基上清于-20℃冰箱備用。
1.4.2 沉默陽性缺氧組 培養(yǎng)星形膠質(zhì)細(xì)胞至80% ~90%融合,用脂質(zhì)體2000轉(zhuǎn)染siHIF-1α質(zhì)粒48h后,以終濃度為 50μmol/L CoCl2處理細(xì)胞,分別在0h、4h、16h、24h、36h 提取總RNA,留存培養(yǎng)基上清于-20℃冰箱備用。
1.4.3 沉默陰性缺氧組 培養(yǎng)星形膠質(zhì)細(xì)胞至80%~90%融合,用脂質(zhì)體2000轉(zhuǎn)染陰性空質(zhì)粒48h后,以終濃度為50μmol/L CoCl2處理細(xì)胞,分別在0h、4h、16h、24h、36h 提取總 RNA,留存培養(yǎng)基上清于-20℃冰箱備用。以上實驗均獨立重復(fù)3次。
1.5 RT-PCR 檢測 HIF-1α、SDF-1αmRNA 表達(dá)根據(jù)SD大鼠GeneBank,各目的基因PCR引物序列由上海生工合成。HIF-1α引物序列:上游引物:5’-TGCTCATCAGTTGCCACTTC-3’;下游引物:5’-CATGGTCACATGGATGGGTA-3’,擴 增 長 度 為310bp。SDF-1α引物序列:上游引物:5’-CAGCCGTGCAACAATCTGAAG-3’;下游引物:5’-CTGCATCAGTGACGGTAAACC-3’,擴增長度為124bp。β-actin引物序列:上游引物:5’-AGGGAAATCGTGCGTGAC-3’;下游引物:5’-ACCCAGGAAGGAAGGCT-3’,擴增長度:194bp。提取總RNA并檢測其純度濃度及完整性。經(jīng)逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)、半定量分析上述基因mRNA表達(dá)。各取10μl產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳,運用Alpha Imager型圖像分析系統(tǒng)觀察電泳結(jié)果,分別測出HIF-1α、SDF-1α擴增帶的光密度值(OD值),并以β-actin擴增帶的光密度值作為參照,得出HIF-1α、SDF-1α與β-actin光密度值的相對比值。
1.6 ELISA檢測 各實驗組星形膠質(zhì)細(xì)胞培養(yǎng)基上清SDF-1α含量,按試劑盒說明書操作。
1.7 統(tǒng)計學(xué)方法 采用SPSS 18.0統(tǒng)計軟件數(shù)據(jù)統(tǒng)計多組間均數(shù)比較采用方差分析、兩組間比較采用t檢驗,P<0.05為顯著性差異。
2.1 星形膠質(zhì)細(xì)胞原代培養(yǎng)與鑒定 原代細(xì)胞成分復(fù)雜,隨著傳代次數(shù)增加,異種細(xì)胞逐漸被淘汰,于第3代可獲得形態(tài)均一的純化星形膠質(zhì)細(xì)胞,細(xì)胞呈長梭形,漩渦狀排列(見圖1);GFAP免疫熒光及DAB染色符合星形膠質(zhì)細(xì)胞特征(見圖2、3)。
2.2 星形膠質(zhì)細(xì)胞未沉默缺氧組 HIF-1α、SDF-1α mRNA表達(dá)水平及SDF-1α蛋白分泌水平經(jīng)預(yù)實驗后發(fā)現(xiàn),不同濃度CoCl2、不同處理時間刺激的星形膠質(zhì)細(xì)胞,其HIF-1α和SDF-1α mRNA表達(dá)上調(diào),且與CoCl2濃度及處理時間密切相關(guān)(其中50μmol/L的CoCl2處理其變化趨勢明顯,以下結(jié)果用該組數(shù)據(jù)說明)。以終濃度50μmol/LCoCl2處理0h、4h、16h、24h、36h 后檢測 HIF-1α 和 SDF-1α mRNA表達(dá)。CoCl2處理星形膠質(zhì)細(xì)胞后 HIF-1α和SDF-1α mRNA 表達(dá)上調(diào)(P<0.05)(見圖4、5)。ELISA檢測細(xì)胞培養(yǎng)基中的SDF-1α蛋白表達(dá)量上調(diào)(P<0.05)(見圖6)。
2.3 建立沉默HIF-1α基因表達(dá)的星形膠質(zhì)細(xì)胞模型 用脂質(zhì)體2000將siHIF-1α陽性沉默質(zhì)粒及陰性對照空質(zhì)粒轉(zhuǎn)染星形膠質(zhì)細(xì)胞48h后檢測HIF-1α mRNA表達(dá)。結(jié)果顯示陽性沉默組HIF-1α mRNA較陰性沉默組表達(dá)明顯降低(P<0.05)(見圖7、8),說明星形膠質(zhì)細(xì)胞HIF-1α陽性沉默模型中HIF-1α基因表達(dá)受到沉默抑制。
2.4 星形膠質(zhì)細(xì)胞沉默陽性缺氧組中 HIF-1α、SDF-1α mRNA表達(dá)水平及SDF-1α蛋白分泌水平 用脂質(zhì)體2000將siHIF-1α陽性沉默質(zhì)粒轉(zhuǎn)染星形膠質(zhì)細(xì)胞48h后,以終濃度50μmol/LCoCl2處理0h、4h、16h、24h、36h 后檢測 HIF-1α、SDF-1α mRNA表達(dá)。結(jié)果顯示HIF-1α、SDF-1α mRNA變化不明顯(P>0.05)(見圖9、10)。ELISA檢測細(xì)胞培養(yǎng)基上清中 SDF-1α蛋白表達(dá)量無明顯變化(P>0.05)(見圖11)。
2.5 星形膠質(zhì)細(xì)胞沉默陰性缺氧組中HIF-1α、SDF-1α mRNA表達(dá)水平及SDF-1α蛋白分泌水平采用脂質(zhì)體2000將陰性對照空質(zhì)粒轉(zhuǎn)染星形膠質(zhì)細(xì)胞48h 后,以終濃度50μmol/L CoCl2處理0h、4h、16h、24h、36h后檢測 HIF-1α、SDF-1α mRNA 表達(dá)。結(jié)果顯示 HIF-1α、SDF-1α mRNA 表達(dá)上調(diào)(P<0.05)(見圖12、13)。ELISA檢測細(xì)胞培養(yǎng)基上清中的SDF-1α蛋白表達(dá)量上調(diào)(P<0.05)(見圖14)。
缺氧誘導(dǎo)因子-1(hypoxia-inducible factor-1,HIF-1)是體內(nèi)維持氧穩(wěn)態(tài)的重要轉(zhuǎn)錄因子,它通過結(jié)合低氧反應(yīng)基因的低氧反應(yīng)元件(hypoxia response element,HRE),參與調(diào)控缺氧誘導(dǎo)的一系列基因的表達(dá),使機體更好地適應(yīng)低氧環(huán)境[2,3]。與HIF-1不一樣,SDF-1是趨化因子CXC亞家族的一個成員。它廣泛地表達(dá)于多種細(xì)胞和組織中,并大量及選擇性地在發(fā)育的中樞神經(jīng)系統(tǒng)中表達(dá)。能與其唯一受體CXCR4相互特異性結(jié)合構(gòu)成一個與細(xì)胞間信息傳遞、細(xì)胞遷移密切相關(guān)的偶聯(lián)分子對[4]。在關(guān)于 HIF-1與 SDF-1、CXCR4關(guān)系的研究中,Schioppa T等[5]發(fā)現(xiàn)缺氧能通過HIF-1α的激活而上調(diào)人類單核細(xì)胞、巨噬細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞和腫瘤細(xì)胞上CXCR4的表達(dá),并提出缺氧-HIF-1α-CXCR4通路可能是調(diào)控缺氧條件下不同類細(xì)胞遷移的機制。Ceradini DJ等[6]在研究低氧環(huán)境中的局部損傷組織時發(fā)現(xiàn),低氧可激活對缺氧敏感的轉(zhuǎn)錄因子HIF-1,調(diào)控SDF-1表達(dá)使其增多,并形成適合干細(xì)胞存在及生長的微環(huán)境,通過SDF-1促進(jìn)CXCR4陽性的干細(xì)胞黏附、遷移和歸巢到缺氧部位,參與血管形成,這說明SDF-1基因啟動子區(qū)內(nèi)含有低氧反應(yīng)元件,HIF-1與HRE結(jié)合而激活SDF-1的表達(dá)。李梅等[7]在研究低氧對大鼠肺動脈內(nèi)皮細(xì)胞HIF-1α及SDF-1表達(dá)影響時,證實HIF-1與SDF-1存在信號調(diào)節(jié)關(guān)系,在介導(dǎo)祖細(xì)胞遷移和黏附至肺動脈內(nèi)皮細(xì)胞的過程中起重要作用。在中樞神經(jīng)組織中是否也存在缺氧-HIF-1-SDF-1/CXCR4通路,本文就此展開初步研究。
我們利用CoCl2中Co2+可以取代氧感受器血紅蛋白卟啉環(huán)中的Fe2+,Co2+對氧的親和力較低,使血紅蛋白不能與氧結(jié)合,從而誘導(dǎo)促紅細(xì)胞生成素及其他對低氧敏感基因表達(dá)增加,這樣就模擬了細(xì)胞的缺氧狀態(tài)[8]。本研究采用 50μmol/L CoCl2刺激星形膠質(zhì)細(xì)胞模擬缺氧,在處理4h后,細(xì)胞中HIF-1α及SDF-1α mRNA表達(dá)開始上升并達(dá)到峰值,隨著時間推移,HIF-1α及SDF-1αmRNA表達(dá)下降呈下降趨勢。該結(jié)果從轉(zhuǎn)錄水平說明星形膠質(zhì)細(xì)胞缺氧應(yīng)激過程中HIF-1α mRNA表達(dá)增加,可以推測此時HIF-1α與HRE結(jié)合而激活SDF-1α的表達(dá)。SDF-1基因啟動子區(qū)內(nèi)含有低氧反應(yīng)元件[7]。在檢測相應(yīng)標(biāo)本缺氧后不同時間點培養(yǎng)基上清中的SDF-1α蛋白時,我們發(fā)現(xiàn)缺氧16h后SDF-1α蛋白表達(dá)達(dá)一峰值,而后下降,至缺氧24h后SDF-1α蛋白表達(dá)又呈上升趨勢,并超過前一峰值。說明在SDF-1 mRNA表達(dá)上調(diào)后,其轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物也上調(diào)。但在缺氧24h后SDF-1α蛋白表達(dá)又呈上升趨勢,可能與CoCl2再次刺激HIF-1基因表達(dá)上調(diào)有關(guān)。為進(jìn)一步說明SDF-1基因啟動子區(qū)內(nèi)含有低氧反應(yīng)元件,我們根據(jù)HIF-1基因序列設(shè)計相應(yīng)的小干擾RNA(siHIF-1α),誘導(dǎo) HIF-1基因沉默,在轉(zhuǎn)染48h后用50μmol/L CoCl2處理星形膠質(zhì)細(xì)胞,分別在不同時間點檢測 HIF-1α、SDF-1α mRNA,結(jié)果顯示HIF-1α、SDF-1α mRNA變化不明顯,檢測培養(yǎng)基上清中SDF-1α中的含量,發(fā)現(xiàn)SDF-1α含量維持在較低水平,缺氧的刺激未能引起SDF-1含量的變化。這說明脂質(zhì)體2000將siHIF-1α陽性沉默質(zhì)粒轉(zhuǎn)染星形膠質(zhì)細(xì)胞后,細(xì)胞內(nèi)質(zhì)粒啟動子轉(zhuǎn)錄出的siRNA降解了HIF-1α mRNA,引起HIF-1基因表達(dá)沉默,此時無HIF-1與HRE結(jié)合而充分激活SDF-1 mRNA的表達(dá),其對應(yīng)的轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物也相應(yīng)下調(diào),以至培養(yǎng)液中的SDF-1α含量無明顯改變。也說明該脂質(zhì)體載體能夠有效地將HIF-1α特異性 siRNA導(dǎo)入星形膠質(zhì)細(xì)胞,實現(xiàn)HIF-1α的沉默。而在轉(zhuǎn)染48h用CoCl2處理24h后培養(yǎng)液中的SDF-1含量稍有升高,可能與HIF-1α的mRNA未完全沉默、再次受到缺氧刺激有關(guān)。用脂質(zhì)體2000將陰性對照空質(zhì)粒轉(zhuǎn)染星形膠質(zhì)細(xì)胞后,因空載體未插入特異性沉默HIF-1α的目的片斷,細(xì)胞內(nèi)質(zhì)粒啟動子轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物不能降解HIF-1α mRNA,HIF-1α mRNA表達(dá)不受影響。以上實驗可以明確SDF-1基因啟動子區(qū)內(nèi)含有HRE。缺氧刺激時,細(xì)胞HIF-1α mRNA表達(dá)上調(diào),HIF-1與HRE結(jié)合而激活SDF-1α mRNA表達(dá)上調(diào),其蛋白表達(dá)產(chǎn)物SDF-1α表達(dá)增加。說明缺氧-HIF-1-SDF-1/CXCR4通路在中樞神經(jīng)系統(tǒng)中確實存在。
在中樞神經(jīng)系統(tǒng)中明確該通路,有利于進(jìn)一步使用神經(jīng)干細(xì)胞治療腦梗死,如將CXCR4基因轉(zhuǎn)染到神經(jīng)干細(xì)胞中,可能使后者對梗死部位分泌的SDF-1α的趨化能力明顯增強,達(dá)到修復(fù)梗死區(qū)域的目的。再比如將HIF-1注射到梗死部位,有利于神經(jīng)干細(xì)胞遷移到修復(fù)梗死區(qū)域。盡管缺氧誘導(dǎo)因子HIF-1α與SDF-1α/CXCR4通路在中樞神經(jīng)系統(tǒng)缺氧中存在調(diào)控關(guān)系。但是還有很多問題不明確,例如SDF-1α/CXCR4通路是否能直接介導(dǎo)神經(jīng)干細(xì)胞的遷移;HIF-1α是否通過SDF-1α/CXCR4通路調(diào)控神經(jīng)干細(xì)胞的遷移;若是SDF-1α/CXCR4通路能直接介導(dǎo)神經(jīng)干細(xì)胞的遷移,其具體機制尚需進(jìn)一步研究。總之,對中樞神經(jīng)系統(tǒng)中細(xì)胞遷移機制的進(jìn)一步研究,將有利于對腦梗死后以干細(xì)胞為基礎(chǔ)的細(xì)胞修復(fù)治療。
圖1~3 星形膠質(zhì)細(xì)胞原代培養(yǎng)與鑒定結(jié)果
圖4~6 星形膠質(zhì)細(xì)胞未沉默缺氧組HIF-1α、SDF-α mRNA表達(dá)水平及SDF-α蛋白分泌水平
圖7~8 HIF-1α陽性沉默質(zhì)粒及陰性對照組空質(zhì)粒轉(zhuǎn)染星形膠質(zhì)細(xì)胞48h后情況
圖9~11 星形膠質(zhì)細(xì)胞沉默陽性缺氧組中HIF-1α陽性沉默質(zhì)粒及陰性對照組空質(zhì)粒轉(zhuǎn)染星形膠質(zhì)細(xì)胞48h后情況圖12~14 星形膠質(zhì)細(xì)胞沉默陰性缺氧組中HIF-1α陽性沉默質(zhì)粒及陰性對照組空質(zhì)粒轉(zhuǎn)染星形膠質(zhì)細(xì)胞48h后情況
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