宋英健 綜述 王正 楊林 審校
根據(jù)世界衛(wèi)生組織最近公布的數(shù)據(jù),肺癌已成為目前發(fā)病率和死亡率增長最快,對人類健康威脅最大的惡性腫瘤。在我國近幾年來隨著城市空氣污染的加重,特別是PM2.5含量持續(xù)維持高位,肺癌的發(fā)病率和死亡率明顯上升[1]。估計到2025年我國肺癌年死亡人數(shù)可達100萬,將成為肺癌第一大國。隨著個體化治療的不斷深入,表皮生長因子受體(epidermal growth factor receptor,EGFR)等基因突變檢測和動態(tài)觀察成為臨床制定治療方案和預(yù)測預(yù)后的重要依據(jù)。2011年美國國立綜合癌癥網(wǎng)絡(luò)(National Comprehensive Cancer Network, NCCN)指南明確指出,對于肺腺癌、大細胞肺癌和組織學(xué)類型不明確的非小細胞肺癌(non-small cell lung cancer, NSCLC)等推薦檢測EGFR突變類型。但是由于肺癌早期發(fā)現(xiàn)率低,約70%-80%的患者確診時已為中晚期而無法取得肺癌組織標(biāo)本,也無法接受基因和病理檢測[2]。對于早期病人組織標(biāo)本獲取方法復(fù)雜,而且肺癌基因表型及分子表型可能在治療過程中發(fā)生改變,出現(xiàn)藥物耐藥[3]。目前肺癌組織的分子學(xué)檢測達不到實時、動態(tài)監(jiān)測的目的。為了提高肺癌患者的生存率,降低死亡率,優(yōu)選臨床治療方案,亟需一種手段不僅可以早期預(yù)測肺癌轉(zhuǎn)移和復(fù)發(fā),而且可以實時和動態(tài)監(jiān)測肺癌相關(guān)基因的突變類型。
1869年Ashworth[4]在1例因癌癥死亡的患者外周血中發(fā)現(xiàn)與原發(fā)腫瘤細胞體積和形態(tài)相似的細胞,從此提出了CTCs的概念。目前CTCs定義為自發(fā)或因診療操作脫離實體瘤原發(fā)灶或轉(zhuǎn)移灶進入外周血循環(huán)的一類腫瘤細胞,其極少見于正常人[5]。經(jīng)過免疫逃避未被清除的CTCs不僅在一定條件下可以發(fā)展為轉(zhuǎn)移灶[6],而且可以通過遷移、粘附、相互聚集形成循環(huán)微癌栓(circulating tumor microemboli, CTM)[7]。最新研究[8]表明這種微小癌栓還可以附著于血管內(nèi)皮,導(dǎo)致血栓形成,引起靜脈血栓栓塞(venous thromboembolism, VTE)。所以CTCs的檢測與腫瘤轉(zhuǎn)移、復(fù)發(fā)和預(yù)后評估有密切關(guān)系,而且對于晚期無法取得腫瘤組織的患者起源于實體瘤的CTCs為其靶向治療的分子學(xué)檢測開啟了一扇大門。Maheswaran等[9]利用CTCs檢測EGFR突變類型,其與原發(fā)腫瘤吻合率高達92%,而且CTCs來自于外周血,可以動態(tài)取樣,這充分說明CTCs檢測有可能作為一種基因檢測手段,用于實時動態(tài)檢測腫瘤患者的基因突變類型,指導(dǎo)臨床個體化治療。
2.1 CTCs富集技術(shù) 由于CTCs在外周血存在數(shù)量極少(1個CTC/106-107單個核淋巴細胞)[10],對于檢測方法靈敏性要求很高,由于生物技術(shù)的局限性,研究者首先嘗試將CTCs進行富集,提高其濃度,從而達到檢測的目的。
密度梯度離心技術(shù)是在單個核淋巴細胞和CTCs的密度與其它血液細胞的密度不同的基礎(chǔ)上,依靠淋巴細胞分離液進行梯度離心富集單個核淋巴細胞和CTCs,從而達到提高CTCs濃度的目的。在此技術(shù)上建立的免疫梯度離心技術(shù)(RosetteSepTM)是建立在陰性選擇的基礎(chǔ)上,利用單抗混合物使非靶細胞與全血中的多個紅細胞交聯(lián),增加非靶細胞的密度,再通過密度梯度離心,去除非靶細胞,從而增加了CTCs富集的效率[11]。2000年Vona等[12]提出ISET(isolation by size epithelial tumor cells)技術(shù),主要是利用腫瘤細胞與正常細胞大小不同來分離CTCs。血液通過孔徑8 μm的濾膜過濾,使CTCs聚集于濾膜上,達到富集作用。Oncoquick離心法是在濾膜原理基礎(chǔ)上,利用一個內(nèi)置多孔屏障的專用50 mL試管進行密度梯度離心,避免了全血各個層面的交叉污染,檢出率明顯高于其它方法[13]。此類富集技術(shù)簡單、方便,可以普遍使用。適合富集任何類型腫瘤的CTCs,富集的CTCs可以繼續(xù)后續(xù)免疫學(xué)和基因檢測。但由于需要血液標(biāo)本量大,而且容易出現(xiàn)交叉污染和CTCs的丟失,限制了其進一步應(yīng)用。
免疫學(xué)富集技術(shù)是目前應(yīng)用最廣泛的CTCs富集方法。其利用上皮源性的惡性腫瘤均表達上皮粘附因子(epithelial cell adhesion molecule, EpCAM)和細胞角蛋白(cytokeratins, CK)等標(biāo)記物的特點,與連有免疫磁性微球(immunomagnetic microsphere, IMMS)的特異性單抗相結(jié)合,于外加磁場的作用下吸附復(fù)合物,達到富集靶細胞的作用[14]。Tewes等[15]利用體外和體內(nèi)試驗對比免疫磁珠技術(shù)與Oncoquick技術(shù)和RosetteSepTM技術(shù),發(fā)現(xiàn)免疫磁珠技術(shù)回收CTCs的重復(fù)性和敏感性均高于其余兩種技術(shù)。目前通過不同磁珠和外加磁場,利用陰性或陽性選擇方式建立的免疫磁珠富集方法包括MACS系統(tǒng)、Dynabeads系統(tǒng)、EasySep系統(tǒng)等[16-18]。此技術(shù)優(yōu)點為可以保持CTCs完整性,具有較高的重復(fù)性和敏感性。但是由于CTCs的異質(zhì)性,可能導(dǎo)致CTCs遺漏。研究者[14]嘗試聯(lián)合其它的生物標(biāo)記物富集CTCs,結(jié)果表明能明顯提高富集率,而后述的CTCs鑒定技術(shù)也大多采用聯(lián)合多種生物標(biāo)記物檢測的策略。
2.2 CTCs鑒別技術(shù) 隨著生物技術(shù)的進步,越來越多的技術(shù)可以直接標(biāo)記檢測、鑒定CTCs的存在和數(shù)量,根據(jù)檢測原理可分為兩大類,即細胞計數(shù)法和核酸檢測法。
2.2.1 細胞計數(shù)法 流式細胞技術(shù)(flow cytometry, FCM)是目前最常用的細胞檢測技術(shù)。其通過檢測熒光特異性抗體與腫瘤細胞特異性抗原(CK和EpCAM)結(jié)合后產(chǎn)生的熒光信號來鑒別CTCs。由于CK和EpCAM細胞在部分的血細胞中也有表達[19],所以Kerbs等[20]利用CD45標(biāo)記血細胞,通過陰性選擇將混雜的血細胞排除,達到提高特異性的目的。研究者利用生物標(biāo)記組合,通過不同的光學(xué)檢測設(shè)備設(shè)計了不同的檢測系統(tǒng),包括FAST系統(tǒng)、LSC系統(tǒng)、ACIS系統(tǒng)和ARIOL系統(tǒng)等。該方法最大的優(yōu)點是定量檢測CTCs的數(shù)量,可以對CTCs多種參數(shù)(大小形態(tài)、細胞類型、存活狀態(tài)、細胞內(nèi)外標(biāo)記物、基因突變檢測)進行分析,但檢測靈敏性較低,需要的血液標(biāo)本較多。
2.2.2 核酸檢測法 逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)(reverse transcription polymerase chain reaction, RT-PCR)是目前最常用的核酸檢測方法,由于特異性的mRNA通常不在正常外周血細胞中表達,而且外周血中存在RNA酶,原發(fā)腫瘤組織分泌mRNA進入血液中都被降解。因此我們可以推測外周血中檢測到這些特異性mRNA全部來自于CTCs,間接提示CTCs的存在[21]。而定量RT-PCR(RT-qPCR)技術(shù)和多重RT-qPCR技術(shù)是在原有的基礎(chǔ)上通過增加內(nèi)參基因,利用靶基因的組合提高CTCs檢測的特異性[22]。該方法的優(yōu)點是具有高特異性、定量、快速,而且需要的血液較少。但是值得注意的是由于mRNA易降解、擴增效率和非特異性擴增的影響,會出現(xiàn)假性結(jié)果,該方法也破壞細胞的形態(tài)和功能,中斷了繼續(xù)分析的可能[22-24]。
2.3 富集和鑒定結(jié)合的技術(shù) 隨著對CTCs研究的不斷深入,單個技術(shù)檢測CTCs的敏感性和特異性已不能滿足研究者需求,研究者開始嘗試?yán)酶患夹g(shù)和鑒定技術(shù)相結(jié)合的方法,提高CTCs檢測的敏感性和特異性。
AdnaTest系統(tǒng)[25]通過免疫磁珠技術(shù)將EpCAM標(biāo)記的CTCs進行富集,然后通過RT-PCR檢測腫瘤細胞特異性表達的mRNA,達到檢測CTCs的目的,該方法具有高特異性,便于發(fā)現(xiàn)和鑒別惡性腫瘤的特異性靶標(biāo)。但是方法較為復(fù)雜,而且無法擺脫核酸檢測技術(shù)的缺陷,破壞了細胞結(jié)構(gòu),無法進行后續(xù)研究。
CellSearch系統(tǒng)是目前唯一通過美國食品和藥物管理局(Food and Drug Administration, FDA)批準(zhǔn)用于臨床的CTCs檢測技術(shù),已被應(yīng)用預(yù)測轉(zhuǎn)移性乳腺癌、結(jié)直腸癌和前列腺癌患者的無進展生存率(progression free survival,PFS)和總生存率(overall survival, OS),其富集方法與AdnaTest系統(tǒng)相似。首先利用免疫磁珠技術(shù)將EpCAM標(biāo)記的CTCs從血液樣本中富集出來,然后通過特殊的生物標(biāo)記或化學(xué)染色(CK8/18/19和DAPI陽性、CD45陰性)準(zhǔn)確識別CTCs[25,26]。Βalic等[27]利用CellSearch技術(shù)和Oncoquick技術(shù)同時檢測61個腫瘤轉(zhuǎn)移患者的CTCs,發(fā)現(xiàn)CellSearch技術(shù)無論敏感性和回收率都高于Oncoquick技術(shù)。CellSearch技術(shù)具有高敏感性和特異性,由于形成了固定的系統(tǒng),并經(jīng)過FDA認(rèn)證,具有自動化、高效性、高重復(fù)性的特點,而且所需血液樣本量少,易于重復(fù)檢測;缺點為仍存在漏診和誤診的情況,且檢測費用較高,使其在臨床上廣泛應(yīng)用受限,而且通過系統(tǒng)處理的CTCs回收困難,阻礙了CTCs的后續(xù)分析[26,27]。為了進一步提高CTCs檢測效率,Hou等[28]將ISET技術(shù)和CellSearch技術(shù)結(jié)合使用,輔以核染色的方法,不僅準(zhǔn)確檢測出CTCs,還證明了CTM的存在,但仍無法擺脫臨床應(yīng)用的局限性。
2.4 其它檢測方法 2007年馬薩諸塞州總醫(yī)院開發(fā)了第一代CTC芯片(CTC-Chip),其在微流體學(xué)的CTCs檢測技術(shù)基礎(chǔ)上,采用微流芯片的技術(shù),利用包被抗體的位點叢捕獲流過芯片的CTCs,達到檢測CTCs的目的。Nagrath等[29]利用CTC-Chip技術(shù),通過EpCAM抗體篩選CTCs,篩選出的細胞再通過CK/DAPI/CD45來驗證,發(fā)現(xiàn)該技術(shù)具有高敏感性和特異性。但是這種芯片不僅制造相對困難、成本昂貴,且顯微位點周圍的血流通暢性限制了與抗體覆蓋位點接觸的CTCs數(shù)量。而第二代CTC-Chip芯片(microvortex-generating herringbone-chip,HΒ-Chip)通過一種小室流動槽,使樣品快速混合,增加了血液的通過量和效率;并通過安裝標(biāo)準(zhǔn)載玻片,利用標(biāo)準(zhǔn)的病理檢測方法對癌細胞進行鑒別,提高檢測的準(zhǔn)確性,捕獲的CTCs還可用于其它檢測或培養(yǎng)。研究證實HΒ芯片在CTC芯片的基礎(chǔ)上提高了25%的癌細胞捕獲率,可捕捉血液樣本中超過90%的癌細胞,研究中從幾個患者的血液樣本中捕捉出4到12個循環(huán)腫瘤細胞群組成的CTM,其可能成為研究和檢測CTM的新方法。CTCChip技術(shù)通過模擬生物微環(huán)境篩選CTCs,保持CTCs活性,具有高敏感性和特異性,可以繼續(xù)后續(xù)的形態(tài)學(xué)和分子學(xué)的檢測,并且需要的血液標(biāo)本較少,易于重復(fù)測量。由于仍局限于EpCAM篩選CTCs,可能會產(chǎn)生假性結(jié)果[30]。
研究者[31]還利用酶聯(lián)免疫斑點法(enzyme linked immunospot assay, ELISPOT)來檢測乳腺癌和前列腺癌患者血液中CTCs的存在,通過檢測CTCs分泌的相關(guān)蛋白-上皮特異性粘蛋白和前列腺特異性抗原,判斷CTCs存在。此技術(shù)可以驗證CTCs的活性,還能檢測到腫瘤形成過程中細胞表達分泌的重要蛋白,對于CTCs與腫瘤轉(zhuǎn)移復(fù)發(fā)的相關(guān)性研究具有重要意義。但是該方法檢測靈敏度較低,而且目前無法估計CTCs的數(shù)量,應(yīng)用于CTCs檢測的可行性還需要進一步研究證實。
目前普通的血液學(xué)檢測和高分辨率的影像學(xué)檢測仍然無法準(zhǔn)確的診斷和預(yù)測肺癌患者轉(zhuǎn)移、復(fù)發(fā)和預(yù)后,也無法實時、動態(tài)選擇個體化治療方案,而與轉(zhuǎn)移和復(fù)發(fā)有密切關(guān)系的CTCs恰恰彌補了這些不足。
3.1 臨床診斷和分期 由于血液系統(tǒng)是腫瘤轉(zhuǎn)移的重要途徑,CTCs存在逐漸成為診斷惡性腫瘤的潛在標(biāo)準(zhǔn)。研究[32]顯示CTCs對肺癌診斷也具有潛在的應(yīng)用價值。Βevilacqua等[33]利用CellSearch系統(tǒng)在1例肺組織穿刺活檢診斷為低分化神經(jīng)內(nèi)分泌瘤的患者外周血中檢測到EpCAM和CK陽性的CTCs,然而EpCAM通常在低分化神經(jīng)內(nèi)分泌瘤中不表達,最后在肝臟轉(zhuǎn)移灶中確診為EpCAM和CK陽性的小細胞肺癌(small cell lung cancer,SCLC)。Tanaka等[34]利用CellSearch技術(shù)比較125例肺癌患者和25例肺良性腫瘤患者的CTCs陽性率,其以1個CTC/7.5 mL作為分界點,發(fā)現(xiàn)肺癌患者陽性率(30.6%)明顯高于良性腫瘤患者陽性率(12.0%),說明CTCs對于肺癌診斷具有指導(dǎo)意義,可能成為高?;颊咴缙诤Y查協(xié)助診治的重要手段。與傳統(tǒng)診斷手段相比,CTCs在肺癌的診斷中還處于摸索階段,還需要更多臨床證據(jù)支持,但聯(lián)合CTCs檢查后的綜合診斷會提高臨床醫(yī)師診療的警惕性。
雖然血液中檢測到腫瘤細胞并不意味著一定存在轉(zhuǎn)移灶,但研究[35]認(rèn)為CTCs與腫瘤轉(zhuǎn)移有密切關(guān)系,CTCs計數(shù)越多患者面臨遠處轉(zhuǎn)移的負(fù)荷越重,未來發(fā)生轉(zhuǎn)移的病灶數(shù)也越多。Tanaka等[34]利用受試者工作特征曲線 (receiver operating characteristic curve, ROC曲線)證明了肺癌患者外周血中CTCs的含量跟肺癌進展特別是肺癌轉(zhuǎn)移具有相關(guān)性。Hou等[36]的研究同樣表明,CTCs的存在與腫瘤分期存在明顯的相關(guān)性,CTCs計數(shù)隨著疾病分期的增加而明顯增加,廣泛期患者計數(shù)明顯高于局限期;而且發(fā)現(xiàn)SCLC患者外周血中CTCs計數(shù)明顯高于其它類型的肺癌,這也驗證了臨床上SCLC患者更容易發(fā)生全身轉(zhuǎn)移。Yie等[37]應(yīng)用RT-PCR對143例NSCLC患者進行檢測,發(fā)現(xiàn)表達Survivn mRNA的CTCs與腫瘤侵犯程度和淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移狀態(tài)有關(guān)。目前CTCs可作為肺癌組織學(xué)類型及臨床分期的有益補充,其存在可被視為腫瘤TNM分期的中M分期的真實狀態(tài)。結(jié)合病理學(xué)和影像學(xué)的檢查結(jié)果,可以更準(zhǔn)確的反映患者當(dāng)前病情。
3.2 預(yù)后判斷和療效評價 肺癌患者的預(yù)后和抗腫瘤藥物的療效與多種因素有關(guān),目前眾多的研究提示CTCs可早期判斷預(yù)后,評價抗腫瘤藥物療效。一項小規(guī)模的臨床研究[38]中利用CellSearch技術(shù),以2個CTCs/7.5 mL作為分界點,發(fā)現(xiàn)復(fù)發(fā)肺癌患者比新發(fā)肺癌患者CTCs陽性率高(83% vs 78%),說明了CTCs與肺癌復(fù)發(fā)有密切關(guān)系。而且在其中12例患者的隨訪中同種方案一線化療2個療程后影像學(xué)變化與CTCs變化具有相關(guān)性,影像學(xué)中腫瘤好轉(zhuǎn)伴隨著CTCs計數(shù)的減少。雖然為小樣本的臨床實驗,但是可以看到CTCs在肺癌的預(yù)后評估和療效評價方面的重要性。
在NSCLC領(lǐng)域Hofman等[39,40]認(rèn)為利用ISET技術(shù)從手術(shù)后NSCLC患者外周血中分離出的細胞為非血細胞的循環(huán)細胞(circulating non-haematological cells, CNHCs),通過對比發(fā)現(xiàn)上述患者10 mL外周血中含有50個CNHCs以上患者的OS和PFS明顯低于另一組,并且在I期+II期患者中具有較高的復(fù)發(fā)和死亡的風(fēng)險。而CNHCs中CTCs的存在可能是導(dǎo)致陽性結(jié)果的重要原因。2011年Krebs等[20]利用CellSearch技術(shù)檢測101例III期-IV期NSCLC患者CTCs數(shù)量,未化療前以5個CTCs/7.5 mL為分界點,發(fā)現(xiàn)其OS存在統(tǒng)計學(xué)差異(>5:4.3個月;<5:8.1個月);同種方案化療1周期后以2個CTCs/7.5 mL為分界點,多因素分析發(fā)現(xiàn)CTCs數(shù)量跟化療后療效和OS有關(guān),說明CTCs檢測在預(yù)測NSCLC患者化療療效和預(yù)后方面具有重要作用。
在SCLC中研究者利用CellSearch技術(shù)發(fā)現(xiàn)在50例患者中80%的患者CTCs陽性,其中在7.5 mL血液中CTCs含量>300的患者中位生存期(134天)明顯低于CTCs含量<2的患者中位生存期(443天),而且經(jīng)過1個療程一線化療后大多數(shù)患者出現(xiàn)CTCs含量下降,在22天時陽性率只有60%,說明CTCs可以反映SCLC變化和評估化療方案療效[36]。Hou等[28]在小樣本研究(97例SCLC患者)中發(fā)現(xiàn)未治療前CTCs數(shù)量和化療后CTCs變化量可以預(yù)測患者OS。而且他們認(rèn)為ISET技術(shù)和CellSearch技術(shù)篩選出的CTCs中還存在CTM和已凋亡的CTCs,他們通核染色方式將篩選出的CTCs分為單個有活性CTCs、CTM和凋亡CTCs三組,而在CTM中并未發(fā)現(xiàn)凋亡CTCs,這可能預(yù)示著CTM存在特殊的保護機制防止CTCs凋亡和化療藥物的殺傷,其可能成為肺癌治療的新靶點。
在乳腺癌領(lǐng)域2012年即將公布初步結(jié)果的SWOG S0500試驗中,隨機選取500例(≥5CTCs)乳腺癌轉(zhuǎn)移女性患者,研究其在化療3周后CTCs持續(xù)高表達(≥5CTCs)換用其他化療方案患者是否受益。其研究的主要終點為PFS和OS。利用這項實驗結(jié)果將可以明確CTCs臨床檢測和治療方案更換的意義,而這也可以預(yù)測在肺癌領(lǐng)域CTCs對于治療方案變更的價值。
目前CTCs對于肺癌預(yù)后和療效判斷的研究樣本量較少,而且肺癌CTCs的檢測方法和使用的腫瘤標(biāo)記物也不同,所以關(guān)于CTCs與肺癌預(yù)后關(guān)系的研究尚需通過大規(guī)模、多中心的隨訪研究進行驗證。
3.3 個體化治療應(yīng)用 近年來基因診斷指導(dǎo)腫瘤個體化治療的研究越來越受重視,由于晚期或非手術(shù)腫瘤患者組織標(biāo)本獲取困難,使基因檢測在一定程度上受到限制,而且研究[41]發(fā)現(xiàn)由于腫瘤的異質(zhì)性,腫瘤的演變過程中存在進化,原發(fā)部位和轉(zhuǎn)移灶可能存在基因型的改變。因此,在腫瘤個體化治療過程中實施動態(tài)監(jiān)測原發(fā)灶和轉(zhuǎn)移灶中腫瘤細胞及其基因變化成為亟需解決的問題。CTCs作為兩者之間的橋梁,能同時反映原發(fā)灶和轉(zhuǎn)移灶的性質(zhì),在個體化治療中起重要作用。
EGFR的突變可以預(yù)測肺癌對于TKI靶向藥物的療效,在肺癌的個體化治療中起著重要作用[42]。由于CTCs檢測技術(shù)的局限,研究者首先想到利用血液循環(huán)中游離的腫瘤循環(huán)DNA進行檢測肺癌EGFR突變。Kimura等[43]使用擴增阻滯突變系統(tǒng)(amplified refractory mutation system,ARMS)的方法檢測了NSCLC患者的腫瘤組織和血清的EGFR突變信息并進行對比,結(jié)果發(fā)現(xiàn)具有較高的一致率(72.7%),這可能由于血清中游離DNA主要來自CTCs的凋亡所造成的。隨著CTCs檢測技術(shù)的不斷進步,研究者開始利用CTCs自身來進行EGFR突變檢測。Maheswaran等[9]利用CTC-Chip技術(shù)將NSCLC患者血液中的CTCs收集并提取DNA,再利用ARMS法檢測其EGFR突變類型,其與原發(fā)腫瘤突變吻合率高達92%,明顯高于血漿游離DNA突變吻合率。而且在肺癌患者CTCs的基因檢測中發(fā)現(xiàn)20號外顯子T790M位點突變與TKI藥物耐藥有明顯關(guān)系,并且明顯降低了患者PFS。這充分說明CTCs的檢測可以在個體化治療的過程中動態(tài)的監(jiān)測腫瘤細胞及其EGFR基因變化。
隨著靶向基因的不斷涌現(xiàn),肺癌CTCs也可用于其他生物標(biāo)記物的檢測,優(yōu)化個體化治療方案。最近的研究[44]中,研究者利用FAST系統(tǒng)檢測晚期NSCLC患者CTCs中核苷酸切除修復(fù)交叉互補組1(excision repair cross complement group 1, ERCC1)的表達,發(fā)現(xiàn)ERCC1在NSCLC患者CTCs表達水平與鉑類藥物化療療效和生存期呈負(fù)相關(guān),提示CTCs可用于預(yù)測鉑類化療的療效和患者生存期。研究者[36]還應(yīng)用CellSearch系統(tǒng)檢測了SCLC患者外周血中的CTCs,并分析了死亡細胞血清標(biāo)記物。結(jié)果提示在局限期及廣泛期SCLC患者外周血均可檢出CTCs,并通過檢測CTCs中CD56證實其為腫瘤來源,提示CTCs及細胞死亡血清學(xué)標(biāo)記物有可能成為促進藥物開發(fā)的藥效學(xué)標(biāo)記。
CTCs對肺癌個體化治療具有潛在重大意義,可以實時、動態(tài)的檢測肺癌患者的分子學(xué)類型,反映腫瘤的生物學(xué)狀態(tài),為患者個體化治療提供理論基礎(chǔ)和臨床證據(jù)。但能否完全代替原發(fā)組織標(biāo)本指導(dǎo)分子靶向治療,尚需大規(guī)模的前瞻性研究來證實。
自從CTCs發(fā)現(xiàn)以來人們不斷研究其在腫瘤轉(zhuǎn)移和復(fù)發(fā)中的作用,F(xiàn)idler等[45]采用放射性碘標(biāo)記腫瘤細胞注入動物體內(nèi),24 h后只有0.1%的腫瘤細胞保持存活,而形成轉(zhuǎn)移的腫瘤細胞不到0.01%。為了解釋腫瘤轉(zhuǎn)移效率低這一現(xiàn)象,近年逐漸形成上皮- 間充質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelialmesenchymal transition, EMT)理論。EMT最初定義為在胚胎時期上皮細胞喪失其上皮特性而獲得間充質(zhì)細胞特性的過程,其在胚胎干細胞分化過程中起著關(guān)鍵作用[46]。研究發(fā)現(xiàn)在腫瘤患者中隨著腫瘤細胞不斷增殖,部分細胞也會出現(xiàn)EMT,導(dǎo)致上皮表型標(biāo)志E-鈣粘素表達下降,而波形蛋白、成纖維細胞特異性蛋白-1等間充質(zhì)表型特征分子上調(diào),致使細胞失去極性,粘附能力下降,運動能力增強,造成腫瘤細胞脫落于局部,一部分由于參與細胞結(jié)構(gòu)組成的上皮細胞結(jié)構(gòu)蛋白的缺失,致使細胞結(jié)構(gòu)松弛變形,然后侵入結(jié)締組織間隙并穿過基底膜進入血液循環(huán)系統(tǒng),另一部分細胞由于腫瘤擴張生長,毛細血管破裂,直接進入血液系統(tǒng),形成CTCs[47]。這就說明了腫瘤CTCs可能存在異質(zhì)性,需要更多的生物標(biāo)記物來檢測。而極少數(shù)逃過免疫反應(yīng)和凋亡的CTCs通過間充質(zhì)-上皮轉(zhuǎn)化(mesenchymal-epithelial transition, MET)重新獲得上皮表型或者通過形成CTM在毛細血管末端形成癌栓,突破血管屏障,從而形成轉(zhuǎn)移灶。De Wever等[48]研究發(fā)現(xiàn)CTCs檢測困難可能是由于EMT過程中形成間質(zhì)性CTCs,其在腫瘤轉(zhuǎn)移過程中起著重要作用。Iwatsuki等[49]利用腫瘤患者外周血中CTCs找出于5個與EMT相關(guān)的基因。這不僅可以作為一種新型檢測CTCs的基因靶點,而且也進一步驗證了EMT在CTCs形成過程中的重要性。除此之外腫瘤干細胞等理論的存在,都表明僅僅依靠上皮細胞特異的生物標(biāo)記物或者單一的生物標(biāo)記物并不能代表腫瘤CTCs的全部特征。還需要更多關(guān)于腫瘤復(fù)發(fā)、轉(zhuǎn)移的分子和遺傳機制的深入研究,以達到提高檢測技術(shù)的特異性和敏感性的目的,使其應(yīng)用于臨床。
綜上所述外周血CTCs檢測在肺癌轉(zhuǎn)移的早期診斷和預(yù)后預(yù)測方面具有重要意義,其可以指導(dǎo)分子靶向藥物的應(yīng)用、評估治療療效。雖然外周血CTCs檢測方法進步迅速,但仍有以下問題值得注意:①具有高特異性和敏感性的技術(shù)仍是應(yīng)用于臨床檢測的關(guān)鍵,臨床檢測CTCs的技術(shù)仍要改善;②更多、更特異的生物標(biāo)記物,特別是基于EMT、腫瘤干細胞和CTM等CTCs理論相關(guān)的生物標(biāo)記物的發(fā)現(xiàn),有助于提高肺癌CTCs檢測的準(zhǔn)確性和重復(fù)性;③進一步深化肺癌復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移的分子和遺傳機制研究,將有助于提高CTCs檢測的預(yù)測性和指導(dǎo)性,并有可能成為新抗肺癌藥物開發(fā)和篩選的基礎(chǔ);④在兼顧準(zhǔn)確性的同時也要選擇盡量簡單、易行、花費小的方法,將有助于CTCs盡快的進入臨床。CTCs的檢測和研究將有助于提高肺癌患者的生活質(zhì)量和生存時間,必將成為臨床肺癌診治的必要手段。