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    MRE11基因在食管鱗癌中的表達

    2012-01-23 07:02:48劉青松朱興春張均袁國華羅雄燕楊明輝唐中
    中國衛(wèi)生產業(yè) 2012年9期
    關鍵詞:端粒復合物鱗癌

    劉青松 朱興春 張均 袁國華 羅雄燕 楊明輝 唐中

    (1.川北醫(yī)學院醫(yī)學檢驗系; 2.川北醫(yī)學院附屬醫(yī)院檢驗科; 3.川北醫(yī)學院附屬醫(yī)院風濕免疫研究所 四川南充 637000)

    食管癌是全世界常見的惡性腫瘤之一。染色體基因不穩(wěn)定是人類腫瘤發(fā)生發(fā)展的中心環(huán)節(jié),而端粒通過保護染色體的完整性而維持基因組的穩(wěn)定性。端粒異常可激活毛細血管擴張性共濟失調癥突變蛋白(ATM)和共濟失調毛細血管擴張癥Rad3相關蛋白激酶(ATR)依賴的DNA損傷反應途徑導致DNA雙鏈斷裂(DSBs),并促進失去功能的端粒非同源末端融合(NHEJ)[1]。由MRE11、Rad50和Nijmegen斷裂綜合癥蛋白(Nbsl)組成的MRN復合物對DSBs和NHEJ具有保護作用[2]。MRE11具有DNA結合、雙鏈DNA3’-5’外切酶和單鏈DNA結構特異性內切酶活性等功能,這些功能對于DNA末端封閉而防止DNA末端結構融解是必需的。因此研究Mre11對于食管癌的發(fā)生機制的深入理解具有重要意義。為此,本文旨在通過實時熒光定量PCR方法檢測Mre11 mRNA在食管癌組織中的表達。

    表1 定量PCR的基因引物序列

    圖1 MRE11 PCR產物電泳圖

    圖2 MRE11 PCR產物溶解曲線圖

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 對象 收集2009年5月至2010年12月在川北醫(yī)學院附屬醫(yī)院手術的食管癌中心組織和癌旁組織22例。所有患者均為漢族人,其中男性21例,女性1例,年齡42~74歲,平均年齡62歲。所有病例通過病理組織細胞形態(tài)學加以確診。所有標本儲存在用DEPC水處理的EP管中,-80℃低溫保存?zhèn)溆?。同時詳細記錄食管癌相關記錄,如性別、年齡、病理分型、臨床分期、腫瘤大小等相關信息。其中臨床分期標準為:T1腫瘤侵犯粘膜或粘膜下層,T2腫瘤侵犯肌層,T3腫瘤侵犯外膜,T4腫瘤侵犯鄰近結構。

    1.1.2 器材與試劑 本研究涉及主要器材與試劑包括:Trizol(天根);逆轉錄試劑盒(成都博瑞克);PCR試劑(天根,2×Taq PCR Master Mix);定量PCR試劑(ABGAB); PCR儀(BIO-RAD Mycycler);定量PCR儀(ABI 7900HT);凝膠成像儀(BIO-RAD);紫外分光光度計(島津,UV-2550)。

    表2 MRE11基因在食管鱗癌組織中的表達(±s)

    表2 MRE11基因在食管鱗癌組織中的表達(±s)

    組別 例數 MRE11 t P癌中心組織22 0.14±0.12 2.90 0.006癌旁組織 21 0.29±0.22

    1.2 方法

    1.2.1 RNA抽提和逆轉錄 (1)總RNA抽提與cDNA鏈合成:剪取約100mg組織放入陶瓷碾缽中,加液氮進行碾磨成粉末,然后加Trizol試劑1mL,繼續(xù)碾磨。將碾磨液轉入1.5mL的Ep管,提取總RNA,取2μL總RNA溶于48μL經DEPC處理的水中,用紫外分光光度計測定其A260/A280值,檢測其純度和濃度。按每20μL體積加2μg RNA比例,依照逆轉錄試劑盒說明書操作合成cDNA。(2)實時定量PCR:MRE11和內參APL13A引物由上海Sangon公司合成,序列見表1。PCR反應體系總體積為20μL,各反應參數如下:2.5 Master mix 9μL;上下游引物(10μmol/L)各0.25μL,cDNA 1μL。反應條件:經50℃ 2min熱啟動和95℃5min變性后,反應體系再經40個循環(huán)的95℃ 15sec,60℃ 1min反應,并在此循環(huán)過程中收集熒光信號。同時設立無模板對照監(jiān)控反應進程。在實驗結束后進行溶解曲線分析,以鑒定產物是否單一,確保結果的準確性。(3)統(tǒng)計方法:數據采用SPSS10.0 for windows做Explore正態(tài)性分析,MRE11的表達呈正態(tài)分布,因此其表達量用(±s)表示,并進行獨立樣本t檢驗,以P<0.05為顯著差異。

    2 結果

    2.1 MRE11基因PCR產物分析

    在進行定量PCR前,我們采用普通逆轉錄PCR對MRE11基因進行了分析,以鑒定MRE11基因引物的是否可擴增出特異性MRE11基因。電泳結果顯示,該引物不僅能得到單一的PCR條帶,而且引物二聚體含量極低(圖1)。說明該引物可用于基于SBRY-Green熒光染料的實時熒光定量PCR分析。

    在定量PCR反應結束后,我們立即對產物進行解離曲線分析。發(fā)現在MRE11基因PCR產物理論TM值(84℃)出有單一峰值出現(實測值為81.5℃),且在其他溫度下無峰出現(圖2)。說明我們得到的數據為MRE11基因的真實反應,可用于下一步分析。

    2.2 MRE11在食管鱗癌組織中的表達

    我們檢測了22例食管鱗癌組織及其相應癌旁組織MRE11基因的表達。其中22例癌組織中均得到相應信號,但癌旁組織有1例沒有檢測到熒光信號。因此我們對22例癌組織標本和21例癌旁組織標本MRE11基因的表達進行了分析。與癌旁組織相比,癌組織中的MRE11基因表達顯著降低,具有統(tǒng)計學意義(P=0.006)(表2)。

    2.3 MRE11 mRNA表達與食管鱗癌臨床病理關系

    為了明確MRE11的表達在食管鱗癌的發(fā)生發(fā)展中的意義,我們對其表達與食管鱗癌的臨床病理進行了進一步分析。結果發(fā)現,MRE11 mRNA的表達與年齡、分化程度、有無淋巴結轉移以及有無吸煙、飲酒史均無關,但與臨床分期和腫瘤生長速度有關。數據顯示,T1和T2期患者的MRE11 mRNA的表達顯著低于T3和T4期患者(P=0.000),腫瘤生長較慢的患者MRE11 mRNA的表達也低于生長較快的患者(P=0.012)。

    3 討論

    有研究發(fā)現,食管鱗癌存在很高的染色體畸變率[3]。染色體畸變引起的染色體基因組不穩(wěn)定是人類腫瘤發(fā)生發(fā)展的中心環(huán)節(jié),維持適當的端粒是全基因組穩(wěn)定的關鍵。哺乳動物端粒由TTAGGG重復片段組成,并與端粒保護蛋白復合體(shelterin)結合。端粒的磨損或shelterin脫帽可引起DNA損傷反應和無功能端粒末端融合[4],從而導致基因組DNA的不穩(wěn)定性。DNA損傷反應是一個包含信號轉導、細胞周期調節(jié)和DNA修復的功能網絡。由MRE11組成的MRN復合物是DNA損傷反應的關鍵調節(jié)復合物。研究表明,MRN復合物在維持端粒、細胞周期檢查點信號系統(tǒng)、DNA復制和DSBs過程都是必需的[5]。

    MRN復合物作為DNA DSBs的感應元件,位于斷裂位點并重征ATM[5]。MRE11是MRN復合物的重要成員之一,具有DNA結合、雙鏈DNA3’-5’外切酶和單鏈DNA結構特異性內切酶活性等功能。Deng[1]等研究表明,MRN復合物是細胞傳感端粒酶異常的物質,MRE11核酸酶的活性可能導致端粒3’端失去融合染色體的能力。當MRN復合物感應有端粒磨損,端粒保護功能喪失時,MRE11核酸酶活性在3’端端粒懸凸消除,從而促進端粒融合,導致染色體基因組不穩(wěn)定性。此外,MRE11還能保護端粒重復片段。結果表明,MRE11 mRNA在食管鱗癌組織中的表達相比癌旁組織顯著降低??梢?MRE11降低可能是食管鱗癌發(fā)生的重要內因。

    進一步分析MRE11 mRNA和食管鱗癌臨床病理特征關系時發(fā)現,MRE11 mRNA在食管鱗癌組織中的表達與年齡、分化程度、有無淋巴結轉移以及有無吸煙、飲酒史均無關,但與臨床分期和腫瘤生長速度有關。結果表明,在臨床分期較低患者(T1和T2期)MRE11 mRNA的表達顯著低于臨床分期較高(T3和T4期)患者,腫瘤生長較慢的患者MRE11 mRNA的表達也低于生長較快的患者。這可能是因為MRE11表達的降低影響MRN復合物形成,導致細胞周期檢查點信號系統(tǒng)紊亂,從而影響腫瘤細胞的生長速度??傊?我們的實驗結果表明,不管在食管鱗癌的發(fā)生,還是在食管鱗癌的生長發(fā)展過程,MRE11均具有重要作用。

    [1] Deng YB,Guo XL,Ferguson DO,et al.Multiple roles for MRE11 at uncapped telomeres[J].Nature,2009,460(7257):914~918.

    [2] Yang YG,Saidi A, Frappart PO,et al. Conditional deletion of Nbs1 in murine cells reveals its role in branching repair pathways of DNA double-strand breaks[J].EMBO J, 2006,25(23):5527~5538.

    [3] 康維,姚漢清,房麗麗.食管鱗癌3、8、10、20和Y染色體的非整倍性分析[J].遺傳,2009,31(3):255~260.

    [4] Palm W,de Lange T. How shelterin protects mammalian telomeres[J].Annu Rev Genet,2008,42:301~334.

    [5] Yoshihiko M, Hiroshi S, and Masaru M.Molecular mechanisms of esophageal squamous cell carcinogenesis: clues to improve treatment outcomes [J].Ann Thorac Cardiovasc Surg,2010,16(6):387~388.

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