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    蒺藜中甾體皂苷對新生隱球菌生物膜形成的抑制作用

    2011-09-11 03:33:34李秀麗田媛史玉玲顧俊瑛劉至昱李曉建高飛
    中國真菌學雜志 2011年6期
    關(guān)鍵詞:吡喃生物膜球菌

    李秀麗 田媛 史玉玲 顧俊瑛 劉至昱 李曉建 高飛

    (1.同濟大學附屬上海第十人民醫(yī)院皮膚科,上海 200072;2.第二軍醫(yī)大學藥學院生化藥學教研室,上海 200433)

    蒺藜(Tribulus terrestris)為蒺藜科蒺藜屬植物,其果實為傳統(tǒng)中藥材,具有平肝解郁、活血祛風、明目、下氣、補腎益精的功用,有降壓、利尿、抗炎、抗真菌、抗腫瘤的活性。TTS-12是從刺蒺藜中提取的甾體皂苷類化合物,結(jié)構(gòu)為替告皂苷元-3-O-β-D-吡喃木糖 (1→2)-[β-D-吡喃木糖 (1→3)]-[β-D-吡喃葡萄糖 (1→4)]-[α-L-吡喃鼠李糖(1→2)]-β-D-吡喃半乳糖苷,具有很強的抗真菌活性[1-3]。生物膜是一種附著于活組織或無活力的組織表面、由菌細胞自身產(chǎn)生的ECM(extracellularmaxtrix,細胞外多聚基質(zhì))包裹的有結(jié)構(gòu)的菌細胞群體,即由ECM以及被其黏連的菌細胞構(gòu)成。近年來隱球菌生物膜及其在隱球菌感染中的作用也越來越為人們重視。隱球菌生物膜導致其對一些臨床常用抗真菌感染藥物產(chǎn)生高度耐藥性,導致許多系統(tǒng)性、反復性臨床感染。因此,本研究觀察TTS-12對新生隱球菌生物膜形成的影響并探討其可能的作用機制,為以后的臨床治療提供依據(jù)。

    1 材料和方法

    1.1 主要試藥及儀器

    TTS-12由第二軍醫(yī)大學藥學院天然藥化教研室提供 (純度為99.6%),用 DMSO配成所需濃度。MTT(Sigma公司),2×SYBR Premix ExTaq(TaKaRa公司)。高速冷凍離心機 (Eppendorf),臺式離心機 (80-2B)(上海安亭科學儀器廠),LightCycler Nano實時定量RT-PCR儀 (上海銳賽科學儀器有限公司),GeneQuantⅡ核酸定量分析儀(上海精科實業(yè)有限公司)。

    1.2 菌株及培養(yǎng)液

    新生隱球菌標準株B3501(第二軍醫(yī)大學長征醫(yī)院真菌保藏中心)。RPMI 1640培養(yǎng)液:RPMI 1640(Gibco BRL 公司)10 g,NaHCO 32 g,嗎啡啉丙磺酸 (morpholine propanesulfonic acid,MOPS,Sigma公司)34.5 g,加蒸餾水900 mL溶解,用1 mol/L NaOH調(diào)pH至7.0,蒸餾水加至1 000 mL,濾過消毒,4℃保存。YEPD培養(yǎng)液:酵母浸膏10 g,蛋白胨20 g,葡萄糖20 g,蒸餾水加至1 000 mL,高壓滅菌后4℃保存。

    1.3 新生隱球菌生物膜的構(gòu)建[4]

    將新生隱球菌接種于YEPD培養(yǎng)基,30℃振蕩培養(yǎng)過夜(約24 h)。次日離心收集細胞,PBS洗滌3次,重懸于RPMI 1640培養(yǎng)基,以血細胞計數(shù)板計數(shù),調(diào)整細胞密度至1.0×106/mL,加入6孔培養(yǎng)板內(nèi),37℃靜置1 h,棄上清,重新加入RPMI 1640,37℃孵育48 h。根據(jù)重新加入 RPMI 1640(含或不含TTS-12)將細胞分為不同濃度TTS-12處理組和正常對照組。

    1.4 光鏡觀察生物膜

    為比較正常的及經(jīng)TTS-12(4 μg/mL)處理的新生隱球菌生物膜生物膜形態(tài)差異,將新生隱球菌在培養(yǎng)板中按照生物膜形成條件培養(yǎng)72 h后光鏡觀察。

    1.5 MTT法測定生物膜的生長動力學

    采用MTT法[5]檢測新生隱球菌生物膜的生長動力學。MTT法原理為活的細胞線粒體脫氫酶能夠裂解MTT的四氮唑環(huán),使黃色的MTT變?yōu)樽仙难苌?(MTT-formazan),通過分光光度計測定MTT-formazan吸光度,反映細胞活力。

    取經(jīng) 0.5、1、2、4、8 μg/mL TTS-12 處理并培養(yǎng)72 h的新生隱球菌生物膜,PBS洗去未黏附細胞,加入含1 mg/mL MTT的基礎培養(yǎng)基,于37℃黑暗中放置4 h。加100 μL酸化異丙醇定容,用酶標儀測定波長為490 nm處生物膜每反應孔中OD值,以未加TTS-12的正常培養(yǎng)細胞作為正常對照。各孔OD值與調(diào)零孔之差代表各孔生物膜的代謝活性,用于統(tǒng)計學分析。

    1.6 實時定量RT-PCR檢測PMT4基因的表達

    采用一步法抽提經(jīng) 6 組 (分別 0、0.5、1、2、4、8 μg/mL)TTS-12處理組及對照組的生物膜72 h新生隱球菌中新生隱球菌總RNA,檢測OD260和OD280值,反轉(zhuǎn)錄成cDNA。實時定量RT-PCR循環(huán)參數(shù)為:95℃ 10 s(變性),60℃ 20 s(退火),72℃15 s(延伸),重復40個循環(huán)。熔解曲線(melting curve program)使用60~95℃,加熱速率為0.1℃/s。以 β-actin為參照,結(jié)果應用軟件LightCycler system software ver-sion 3.5(Roche Diagnostics)進行分析?;虮磉_水平用倍數(shù)變化來表示 (2-ΔCt法)。目的基因 PMT4上游引物:5'TTCTTTGGGACTTGTGGGAG 3',下游引物:5'TTGTGGCGTAAGGTGATAGTGT 3'。

    1.7 統(tǒng)計學處理

    采用SPSS 13.0統(tǒng)計軟件,計量資料以(±s)表示。實驗結(jié)果均來自3組平行或3次重復實驗。組間比較采用兩兩比較t檢驗。

    2 結(jié) 果

    2.1 新生隱球菌生物膜的形態(tài)觀察

    光鏡觀察示:經(jīng)4 μg/mL TTS-12處理后生物膜明顯受到抑制,結(jié)構(gòu)疏松(見圖1~2)。

    2.2 MTT 結(jié)果

    結(jié)果顯示(見表1):隨著TTS-12濃度的增加,其對生物膜形成的抑制能力增強,第一組0.5 μg/mL TTS-12對生物膜無明顯抑制作用 (P<0.01)。對照組與實驗組 (2,3,4,5組)之間及5個實驗組之間相比較有明顯劑量依賴性抑制作用(P<0.01)。

    2.3 新生隱球菌PMT4基因的表達結(jié)果

    實時定量RT-PCR檢測結(jié)果(見圖3)表明:與正常對照組 (0 μg/mL)相比,0.5、1、2、4、8 μg/mL TTS-12處理組新生隱球菌PMT4基因mRNA表達水平明顯下降,差異具有顯著統(tǒng)計學意義(P<0.01),且抑制作用具有劑量依賴性。

    表1 不同TTS-12濃度處理的新生隱球菌生物膜MTT值Tab.1 MTT value of Cryptococcus neoformans biofilm treated with different concentrations of TTS-12

    圖1 未經(jīng)4 μg/mL TTS-12處理的生物膜體外模型 圖2 經(jīng)4 μg/mL TTS-12處理后的生物膜體外模型 圖3 不同濃度TTS-12處理生物膜中新生隱球菌PMT4基因的表達結(jié)果Fig.1 Biofilm model without TTS-12 administration Fig.2 Biofilm administerled with 4 μg/mL of TTS-12 Fig.3 PMT4 gene expression of Cryptococcus neoformans biofilm treated with TTS-12 with different concentration

    3 討 論

    生物膜是微生物以某些惰性物質(zhì)或生物材料為依托產(chǎn)生的一種群體生長方式,這種生長方式有助于微生物抵御外界不利因素的影響,對抗藥物的殺傷作用,是微生物中普遍存在的生長方式。生物膜的主要特點是明顯降低抗真菌藥物的敏感性,甚至產(chǎn)生耐藥,這也是臨床上與生物膜形成有關(guān)的感染難以治療的原因之一[1-2]。近年來,從天然產(chǎn)物中尋找新的抗真菌藥物已成為重要的研究方向,我們前期研究發(fā)現(xiàn),TTS-12具有抗真菌作用,可抑制浮游型新生隱球菌生長[6-8]。

    本研究結(jié)果也顯示,TTS-12對生物膜型新生隱球菌亦具有抑制作用,且抑制作用具有劑量依賴性。

    新生隱球菌生物膜形成主要包括:黏附、生物膜生長及成熟,其中細胞的起始黏附對生物膜的形成非常重要。Pmt4蛋白對于真菌分泌蛋白和部分膜蛋白的修飾極其重要,缺乏可導致菌株生長率下降、細胞壁不穩(wěn)定。PMT4基因在新生隱球菌生物膜形成中起重要作用,PMT4值越大,生物膜形成能力越強,PMT4缺陷株生物膜的代謝活性明顯低于野生株。在新生隱球菌生物膜的形成過程中起著重要的作用,該基因的缺陷可導致生物膜性質(zhì)顯著改變[4]。本研究測定了經(jīng)不同濃度TTS-12處理的新生隱球菌生物膜的PMT4基因,PMT4基因表達水平越低,提示PMT4表達水平下降可能是TTS-12抑制新生隱球菌生物膜形成的分子機制之一。

    [1]Zhang JD,Cao YB,Xu Z,et al.In vitroandin vivoantifungal activities of the eight steroid saponins fromTribulus terrestriswith potent activity against fluconazole-resistant fungal pathogens[J].Biol Pharm Bull,2005,28(12):2211-2215.

    [2]Zhang JD,Xu Z,Cao YB,et al.Antifungal activities and action mechanisms of compounds from Tribulus terrestris L[J].J Ethno-Pharmacol,2006,103(1):76-84.

    [3]張軍東,陳海生,曹永兵,等.天然產(chǎn)物T12抗真菌作用及其機制研究[J].中國新藥雜志,2004,13(12):1110-1114.

    [4]徐瑞宏,方偉,廖萬清.新生隱球菌生物膜動物模型構(gòu)建及PMT4對生物膜形成的影響[J].中國真菌學雜志,2009,8(4):198-201.

    [5]李秀麗,仲學龍,廖萬清,等.隱球菌生物膜的構(gòu)建、結(jié)構(gòu)及影響因素的研究[J].中國麻風皮膚病雜志,2007,2(2):34-37.

    [6]Kuhn DM,George T,Chandra J,et al.Antifungal susceptibility ofCandidabiofilms:unique efficacy of amphotericin B lipid formulations and echinocandins[J].Antimicrob Agents Chemother,2002,46(6):1773-1780.

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    [8]Ramage G,Vandewalle K,Wickes BL,et al.Characteristics of biofilm formation byCandida albicans[J].RevIberoam Micol,2001,18(4):163-170.

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