陳 放,劉開(kāi)揚(yáng),徐 珊,李偉紅,李國(guó)立,張洪泉
(揚(yáng)州大學(xué)1.臨床醫(yī)學(xué)院眼科,2.醫(yī)藥研究所,江蘇揚(yáng)州 225001)
糖尿病性視網(wǎng)膜病變(diabetic retinopathy,DR)是糖尿病(diabetes mellitus,DM)嚴(yán)重且常見(jiàn)的微血管并發(fā)癥之一。研究發(fā)現(xiàn),糖尿病可導(dǎo)致幾乎所有類型的視網(wǎng)膜神經(jīng)細(xì)胞發(fā)生結(jié)構(gòu)和功能的改變,神經(jīng)元的凋亡、神經(jīng)節(jié)細(xì)胞的丟失、膠質(zhì)細(xì)胞的活化、神經(jīng)微絲異常以及視神經(jīng)逆向軸漿運(yùn)輸?shù)臏p慢,這一系列改變均顯示DR不僅是微血管病變,而且也是神經(jīng)元病變,有時(shí)甚至在眼底熒光血管造影等檢查尚未發(fā)現(xiàn)異常時(shí),便出現(xiàn)視網(wǎng)膜神經(jīng)元細(xì)胞的丟失[1]。核轉(zhuǎn)錄因子-κB(NF-κB)信號(hào)通路在DR發(fā)病中起重要作用。DM時(shí)多種因素導(dǎo)致氧化應(yīng)激,激活NF-κB,啟動(dòng)下游基因轉(zhuǎn)錄,上調(diào)多種與DR有關(guān)的細(xì)胞因子、炎癥因子、黏附分子的表達(dá)[2-4]。葛根素(puerarin)是從中藥豆科葛屬植物野葛〔Pueraria lobata(Willd.)Ohwi〕的根中提取的異黃酮類有效成分,化學(xué)名為8-β-D-吡喃葡萄糖-4',7'-二羥基異黃酮苷。近幾年研究表明,葛根素具有多種藥理作用,包括降血脂、抗氧化、抑制低密度脂蛋白氧化修飾、清除活性氧自由基、調(diào)節(jié)一氧化氮合酶(NOS)活性使NO增高等[5-6]。陳娟等[7]研究發(fā)現(xiàn),葛根素可顯著提高缺血再灌注細(xì)胞的存活率,降低胱天蛋白酶3的活性而抑制細(xì)胞凋亡,發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用。遇穎等[8]從形態(tài)學(xué)上證實(shí)葛根素可改善DM大鼠的病理改變,對(duì)DR具有良好的治療效果。本文采用DM大鼠模型,通過(guò)觀察早期DM大鼠視網(wǎng)膜功能、超微結(jié)構(gòu)的變化和NF-κB的表達(dá)及葛根素的干預(yù)作用,為中醫(yī)藥防治DM并發(fā)癥提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
葛根素粉末為南京正大天晴制藥公司提供,純度99.8%,使用時(shí)用滅菌水配成混懸液;鏈脲佐菌素(streptozotocin,STZ)購(gòu)自美國(guó) Sigma公司;NF-κB 檢測(cè)試劑盒購(gòu)自美國(guó)Santa Cruz公司;TUNEL檢測(cè)試劑盒購(gòu)自美國(guó)Roche公司。One Touch血糖儀及血糖試紙條為美國(guó)強(qiáng)生公司產(chǎn)品;視覺(jué)電生理檢測(cè)儀為重慶康華公司產(chǎn)品;手術(shù)顯微鏡為蘇州六六視覺(jué)公司產(chǎn)品;H-600型透射電子顯微鏡為日本日立公司產(chǎn)品。
清潔級(jí)雄性 Sprague-Dawley(SD)大鼠50只,浙江省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,許可證號(hào)SCXK(浙)2008-0033,體質(zhì)量200~230 g。除正常對(duì)照組10只SD大鼠除外,其余各組大鼠STZ誘導(dǎo)制備糖尿病大鼠模型。造模前大鼠禁食12 h,自由飲水。將STZ用pH為4.5的枸櫞酸-枸櫞酸鈉緩沖液0.1 mmol·L-1配成 1%STZ 溶液,2 μm 過(guò)濾器過(guò)濾滅菌后,于大鼠左下腹單次ip給予STZ 60 mg·kg-1。72 h后取鼠尾血測(cè)血糖,并用尿糖試紙測(cè)尿糖。隨機(jī)血糖濃度≥16.65 mmol·L-1,尿糖 ++ ~ +++ 者即為糖尿病大鼠。同齡正常大鼠同期給予pH為4.5的枸櫞酸緩沖液 0.5 ml,48 h后測(cè)量血糖 <5.6 mmol·L-1確定為正常對(duì)照組。DM大鼠再隨機(jī)分為DM模型組、葛根素 125,250和 500 mg·kg-1治療組。葛根素用滅菌水制成混懸液ig給予大鼠,每日1次,連續(xù)給藥4周。
分別于造模前及實(shí)驗(yàn)結(jié)束處死前測(cè)定閃光ERG。大鼠暗適應(yīng)30 min,ip給予3%戊巴比妥鈉40 mg·kg-1麻醉后,0.5% 托吡卡胺/去氧腎上腺素散瞳,參考電極置于兩眼連線中點(diǎn)皮下,接地電極刺入耳尖皮下。操作時(shí)白光閃耀,反應(yīng)持續(xù)200 ms,光強(qiáng)度10 cd·s-1·m-2,單次反應(yīng)。記錄暗適應(yīng)眼最大反應(yīng)的b波振幅。
大鼠 ip給予3%戊巴比妥鈉40 mg·kg-1麻醉后,摘除雙眼眼球。一眼球2.5%中性戊二醛溶液固定12 h以上,取水平眼球赤道后視網(wǎng)膜組織1 mm ×3 mm,PBS 1 mol·L-130 min,中間換液 2 次。放入1%的四氧化鋨緩沖液固定2 h,PBS沖洗3次,逐級(jí)乙醇脫水,環(huán)氧樹(shù)脂包埋。切1 μm的半薄切片作光鏡定位,然后做超薄切片,醋酸雙氧鈾和枸櫞酸鉛雙重染色。透射電鏡觀察視網(wǎng)膜超微結(jié)構(gòu)。
將上述摘除的另一眼球用4%多聚甲醛溶液固定2 h,剔去角膜、晶狀體制成眼杯,固定4~6 h后取出眼杯依次梯度乙醇脫水,石蠟包埋、切片。石蠟切片常規(guī)脫蠟,乙醇梯度水化,用含2%H2O2的PBS于室溫反應(yīng)5 min,PBS沖洗5 min,切片上滴加54 μl末端核酸轉(zhuǎn)移酶緩沖液,置室溫1~5 min,于濕盒中孵育1 h,滴加54 μl過(guò)氧化物酶標(biāo)記的抗地高辛抗體,于濕盒中室溫反應(yīng)30 min。鏈霉親和素-生物素(SABC)法染色,二氨基聯(lián)苯胺(DAB)顯色,蒸餾水沖洗4次,每次沖洗5 min,蘇木素復(fù)染、脫水、透明后封片。以光學(xué)顯微鏡下細(xì)胞核或細(xì)胞漿呈黃色或棕黃色染色為TUNEL陽(yáng)性表達(dá)。每張切片隨機(jī)選取5個(gè)高倍視野,對(duì)陽(yáng)性細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù),得到平均陽(yáng)性細(xì)胞數(shù),計(jì)算凋亡指數(shù)(apoptosis index,AI)。AI(%)=凋亡細(xì)胞數(shù)/細(xì)胞總數(shù)×100%。
石蠟切片常規(guī)脫蠟,PBS 0.1 mol·L-1浸泡 5 min,抗原修復(fù)(PBS 0.1 mol·L-1預(yù)熱至 92 ~98℃,放入玻片,加熱 5 min,自然冷卻至室溫),PBS 0.1 mol·L-1沖洗5 min,3%過(guò)氧化氫孵育10 min,消除內(nèi)源性過(guò)氧化物酶活性,10%正常山羊血清的PBS 0.1 mol·L-1pH 7.4 稀釋,封閉游離的結(jié)合位點(diǎn),減少非特異性染色,室溫孵育15 min,傾去,分別滴加1∶20稀釋的NF-κB p65單克隆一抗,陰性對(duì)照組用PBS代替一抗,4℃過(guò)夜。PBS 0.1 mol·L-1沖洗 5 min,滴加生物素標(biāo)記的二抗 IgG,37℃孵育 15 min,PBS 0.1 mol·L-1沖洗5 min,滴加辣根酶標(biāo)記鏈霉卵白素工作液,37℃孵育 15 min,PBS 0.1 mol·L-1沖洗 5 min,SABC法染色,DAB顯色,自來(lái)水沖洗5 min,蘇木素復(fù)染后封片。以光學(xué)顯微鏡下細(xì)胞核呈棕黃色或棕褐色染色為NF-κB p65陽(yáng)性表達(dá)細(xì)胞。NF-κB p65活性(%)=陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)/細(xì)胞總數(shù)×100%
造模前各組大鼠ERG的b波振幅的差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。如表1所示,與正常對(duì)照組相比,DM模型組大鼠ERG的b波振幅明顯降低(P<0.05),與DM模型對(duì)照組相比,葛根素250和500 mg·kg-1組顯著上升(P <0.05)(表1)。
表1 葛根素對(duì)糖尿病大鼠視網(wǎng)膜電圖(ERG)的b波振幅的影響Tab.1 Effect of puerarin on b wave amplitude of the electroretinogram(ERG)of diabetic mellitus(DM)rats
在透射電鏡下可見(jiàn),正常對(duì)照組視網(wǎng)膜各層結(jié)構(gòu)清晰,細(xì)胞排列整齊,細(xì)胞核和細(xì)胞器正常,未出現(xiàn)明顯的空泡樣變性(圖1A)。DM對(duì)照組視網(wǎng)膜出現(xiàn)大量的空泡變性,外節(jié)膜盤結(jié)構(gòu)模糊,排列紊亂,腫脹變性。內(nèi)、外核層細(xì)胞內(nèi)線粒體腫脹,大量空泡樣變性(圖1B)。葛根素125和250 mg·kg-1組外節(jié)膜盤間隙較DM組縮小,排列平行度好轉(zhuǎn),內(nèi)外核層細(xì)胞線粒體空泡變性減少(圖1C,D)。葛根素150 mg·kg-1組視網(wǎng)膜超微結(jié)構(gòu)僅有少量線粒體腫脹,與正常對(duì)照組差異不大(圖1E)。DM模型組可見(jiàn),神經(jīng)節(jié)細(xì)胞層線粒體腫脹,線粒體嵴丟失,細(xì)胞核皺縮,核膜不連續(xù)、斷裂(圖2B)。葛根素125和250 mg·kg-1組外節(jié)神經(jīng)節(jié)細(xì)胞線粒體空泡樣變性的比例下降,線粒體仍有腫脹(圖2C,D)。葛根素500 mg·kg-1組視網(wǎng)膜在透射電鏡下可見(jiàn)節(jié)細(xì)胞排列緊密,未出現(xiàn)明顯的空泡變性,線粒體腫脹明顯好轉(zhuǎn)(圖2E)。
如表2和圖3所示,正常對(duì)照組細(xì)胞凋亡少,偶見(jiàn)神經(jīng)節(jié)細(xì)胞和內(nèi)核層細(xì)胞有染色陽(yáng)性細(xì)胞。與正常對(duì)照組相比,DM模型組視網(wǎng)膜細(xì)胞凋亡指數(shù)顯著增高(P<0.05),主要發(fā)生在神經(jīng)節(jié)細(xì)胞層和內(nèi)核層細(xì)胞。葛根素干預(yù)后各組凋亡指數(shù)均顯著下降(P<0.05)。如表2和圖4所示,正常對(duì)照組大鼠視網(wǎng)膜組織基本無(wú)NF-κB p65蛋白陽(yáng)性表達(dá)。DM模型對(duì)照組視網(wǎng)膜 NF-κB p65表達(dá)明顯增強(qiáng)(P<0.05),可見(jiàn)于視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞層、內(nèi)核層及外核層。葛根素干預(yù)后視網(wǎng)膜NF-κB p65表達(dá)有所下降,其中葛根素250和500 mg·kg-1組與DM模型組顯示統(tǒng)計(jì)學(xué)意義差異(P<0.05)。
表2 葛根素對(duì)DM大鼠視網(wǎng)膜組織細(xì)胞凋亡指數(shù)及NF-κB p65活性影響Tab.2 Effect of puerarin on NF-κB activity and apoptoic index in the rat retina
圖1 葛根素對(duì)糖尿病(DM)大鼠視網(wǎng)膜超微結(jié)構(gòu)的影響 (×9700).動(dòng)物分組及給藥方法見(jiàn)表1.動(dòng)物給藥4周后取視網(wǎng)膜組織切片檢查.A:正常對(duì)照組;B:模型組;C-E:葛根素125,250和500 mg·kg-1組.Fig.1 Effect of puerarin on retinal ultrastructure of rats(×9700)
圖2 葛根素對(duì)糖尿病(DM)大鼠視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞層的影響.動(dòng)物分組及給藥見(jiàn)表1.A:正常對(duì)照組;B:模型組;C-E:葛根素125,250和500 mg·kg-1組.Fig.2 Effect of puerarin on the retinal ganglion cell layer in DM rats.
圖3 葛根素對(duì)DM大鼠視網(wǎng)膜細(xì)胞凋亡的影響 (DAB×400).動(dòng)物分組及給藥見(jiàn)圖1.A:正常對(duì)照組;B:模型組;C-E:葛根素125,250和500 mg·kg-1組.黃色或棕黃色為陽(yáng)性細(xì)胞.Fig.3 Effect of puerarin on retinal apoptosis in DM rats by TUNEL(DAB ×400).
圖4 葛根素對(duì)DM大鼠視網(wǎng)膜組織NF-κB p65活性的影響 (DAB×400).動(dòng)物分組及給藥見(jiàn)表1.A:正常對(duì)照組;B:模型組;C-E:葛根素125,250和500 mg·kg-1組.棕黃色或棕褐色為陽(yáng)性細(xì)胞.Fig.4 Effect of puerarin on retinal NF-κB p65 activity in DM rats(DAB ×400).
本研究通過(guò)對(duì) DM大鼠 ERG、透射電鏡及TUNEL觀察發(fā)現(xiàn)DM大鼠出現(xiàn)神經(jīng)視網(wǎng)膜的改變。b波起源于外層視網(wǎng)膜,比較穩(wěn)定,主要反映視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞以前的視網(wǎng)膜神經(jīng)細(xì)胞的功能狀態(tài)。Li等[9]報(bào)道STZ誘導(dǎo)的DM大鼠成模后2周就可發(fā)生b波的振幅下降,而DM大鼠模型至少3個(gè)月左右才出現(xiàn)血管改變。本研究中成模后4周的DM大鼠b波振幅較正常對(duì)照組已有顯著下降,說(shuō)明DM早期視網(wǎng)膜就發(fā)生了神經(jīng)細(xì)胞功能損害。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)表明,發(fā)生DM 1個(gè)月時(shí)電鏡可觀察到視網(wǎng)膜神經(jīng)元的超微結(jié)構(gòu)出現(xiàn)病理學(xué)變化,包括線粒體腫脹,線粒體嵴丟失,胞漿空泡化、核膜不完整、核破碎等,而視網(wǎng)膜微血管的基底膜和內(nèi)皮細(xì)胞未出現(xiàn)明顯異常改變[10]。本研究中透射電鏡的觀察結(jié)果亦顯示造模4周的DM大鼠神經(jīng)節(jié)細(xì)胞,內(nèi)、外核層細(xì)胞已出現(xiàn)明顯的改變,而毛細(xì)血管的改變則不明顯。TUNEL法發(fā)現(xiàn)在早期DM大鼠的視網(wǎng)膜就已發(fā)生凋亡,神經(jīng)節(jié)細(xì)胞層凋亡細(xì)胞的數(shù)目比對(duì)照組明顯增加,而且內(nèi)、外核層均見(jiàn)陽(yáng)性細(xì)胞。
本研究中,b波振幅明顯升高。視網(wǎng)膜神經(jīng)細(xì)胞的超微結(jié)構(gòu)明顯好轉(zhuǎn),視網(wǎng)膜病理?yè)p害逐漸減弱,視網(wǎng)膜神經(jīng)細(xì)胞的凋亡指數(shù)顯著下降,說(shuō)明葛根素對(duì)早期DM大鼠的神經(jīng)視網(wǎng)膜具有一定保護(hù)作用。
目前已證實(shí),在DM狀態(tài)下視網(wǎng)膜氧化應(yīng)激加劇,高血糖和氧化應(yīng)激的主要靶點(diǎn)是NF-κB,并通過(guò)其調(diào)控與炎癥、細(xì)胞增生和細(xì)胞分化等密切相關(guān)的多種基因的表達(dá),促進(jìn)細(xì)胞凋亡和新生血管的生成。Romeo等[3]研究認(rèn)為視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞在DM早期即出現(xiàn)NF-κB活化,說(shuō)明缺氧誘導(dǎo)了NF-κB活化。NF-κB被高血糖激活后,可控制視網(wǎng)膜周細(xì)胞的凋亡,并介導(dǎo)單核細(xì)胞與血管內(nèi)皮的黏附性增加,從而導(dǎo)致視網(wǎng)膜血管的硬化,加重DM視網(wǎng)膜血管的病變,造成視網(wǎng)膜組織的缺血缺氧。在DM患者的玻璃體和視網(wǎng)膜毛細(xì)血管中NF-κB活性比非DM患者增強(qiáng),NF-κB活性增強(qiáng)與周細(xì)胞的喪失和無(wú)細(xì)胞血管的發(fā)生成正相關(guān)[4]。
本研究結(jié)果顯示,DM組視網(wǎng)膜NF-κB p65表達(dá)較正常對(duì)照組明顯增強(qiáng),以神經(jīng)節(jié)細(xì)胞為主,內(nèi)外核層細(xì)胞均有存在。提示葛根素減輕DM大鼠神經(jīng)視網(wǎng)膜的損傷在一定程度上可能是因?yàn)橐种屏薉M引起的視網(wǎng)膜中NF-κB的激活,而NF-κB得以活化與DM大鼠視網(wǎng)膜中氧自由基的產(chǎn)生有關(guān)。但其具體的信號(hào)傳導(dǎo)通路有待于進(jìn)一步的研究。
[1] Takahashi H,Goto T,Shoji T,Tanito M,Park M,Chihara E.Diabetes-associated retinal nerve fiber damage evaluated with scanning laser polarimetry[J].Am J Ophthalmol,2006,142(1):88-94.
[2] Kowluru RA,Koppolu P,Chakrabarti S,Chen S.Diabetes-induced activation of nuclear transcriptional factor in the retina,and its inhibition by antioxidants[J].Free Radic Res,2003,37(11):1169-1180.
[3] Romeo G,Liu WH,Asnaghi V,Kern TS,Lorenzi M.Activation of nuclear factor-kappaB induced by diabetes and high glucose regulates a proapoptotic program in retinal pericytes[J].Diabetes,2002,51(7):2241-2248.
[4] Hegazy DM,O'Reilly DA,Yang BM,Hodgkinson AD,Millward BA,Demaine AG.NF-kappaB polymorphisms and susceptibility to type 1 diabetes[J].Genes Immun,2001,2(6):304-308.
[5] Chang Y, Hsieh CY, Peng ZA, Yen TL,Hsiao G,Chou DS,et al.Neuroprotective mechanisms of puerarin in middle cerebral artery occlusion-induced brain infarction in rats[J].J Biomed Sci,2009,16:9.
[6] Li JC,Jiang YX,Zhang SY,Wang L,Ouyang YS,et al.Evaluation of renal artery stenosis with hemodynamic parameters of Doppler sonography[J].J Vasc Surg,2008,48(2):323-328.
[7] 陳 娟,陳 慶,肖衛(wèi)東,周 潔,馮友梅.葛根素在體外模擬腦缺血再灌注誘導(dǎo)的神經(jīng)元損傷中的保護(hù)作用[J].中華實(shí)驗(yàn)外科雜志,2005,22(10):1254-1256.
[8] 遇 穎,楊 明,張慶生,劉英偉,劉海峰,姚 鵬,等.葛根素對(duì)糖尿病大鼠視網(wǎng)膜病變的影響[J].黑龍江醫(yī)藥科學(xué),2009,32(2):1-2.
[9] Li Q,Zemel E,Miller B,Perlman I.Early retinal damage in experimental diabetes:electroretinographical and morphological observations[J].Exp Eye Res,2002,74(5):615-625.
[10] Asnaghi V, Gerhardinger C, Hoehn T, Adeboje A,Lorenzi M.A role for the polyol pathway in the early neuroretinal apoptosis and glial changes induced by diabetes in the rat[J].Diabetes,2003,52(2):506-511.