韓 濱,張麗麗,由振強,辛艷飛,陳云祥,陳國燦,徐潘生,陳 穎,宣堯仙
(浙江省醫(yī)學(xué)科學(xué)院安全性評價研究中心,浙江杭州 310013)
D-硝基精氨酸(NG-nitro-D-arginine,D-NNA)在體內(nèi)可發(fā)生手性轉(zhuǎn)化,生成L型對映異構(gòu)體,而腎是D-NNA發(fā)生手性轉(zhuǎn)化的主要器官,約有80%的D-NNA在腎發(fā)生手性轉(zhuǎn)化。研究證實,D-NNA手性轉(zhuǎn)化存在兩步反應(yīng)機制:① D-NNA在腎D型氨基酸氧化酶(D-amino acid oxidase,DAAO)作用下氧化脫氨生成α-酮酸;② α-酮酸在轉(zhuǎn)氨酶參與下,通過立體選擇性獲取氨基生成 L-硝基精氨酸(NG-nitro-L-arginine,L-NNA),實現(xiàn)手性轉(zhuǎn)化[1-4]。D-NNA的手性轉(zhuǎn)化產(chǎn)物 L-NNA是一氧化氮合酶(nitric oxide sythase,NOS)的抑制劑,NOS活性被抑制后,可減少體內(nèi)NO生成,而NO是體內(nèi)一種重要的生物信號分子,具有調(diào)節(jié)血管阻力、血壓、血小板聚集與黏附等多種生物學(xué)作用,NO生成減少會引起動物血壓長時間升高、腎動脈管腔縮小、動脈管壁的局限性壞死和微細血管堵塞,引起多種病理損傷。前期研究還發(fā)現(xiàn)在D-NNA手型轉(zhuǎn)化過程中,會產(chǎn)生大量活性氧(reactive oxygen species,ROS),生理狀態(tài)的自由基有刺激細胞生長作用,但是當自由基的產(chǎn)生和清除的平衡狀態(tài)被打破后,自由基大量堆積,會導(dǎo)致氧化應(yīng)激,引發(fā)脂質(zhì)過氧化,形成脂質(zhì)過氧化物,對蛋白質(zhì)、脂肪和核酸均具有損害作用,造成氧化損傷[5]。
ROS和NO減少在腎功能損傷中起重要作用[6-7]。D-NNA在腎手性轉(zhuǎn)化過程中產(chǎn)生的大量ROS和對NOS活性的抑制可能會對腎有損傷作用。為此,本研究通過長期給藥,觀察D-NNA對ICR小鼠腎損傷作用,并探討其可能的作用機制。
D-NNA購自Bachem Biosciences公司,用5%葡萄糖超聲溶解;NO試劑盒,超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD),丙二醛 (malondialdehyde,MDA),谷胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)試劑盒,購自南京建成生物工程研究所。全自動血液生化分析儀(Hitachi,日本)。
40只健康ICR小鼠,雄性,體質(zhì)量18~22 g,清潔級,由浙江省實驗動物中心提供。動物合格證號:0010040。飼養(yǎng)于屏障系統(tǒng)動物實驗房內(nèi),自由飲水攝食,飼料為全價營養(yǎng)顆粒飼料,飲水為城市飲用水經(jīng)LAWS-2000實驗動物反滲透純水機處理。小鼠隨機分為4組,每組10只:5%葡萄糖對照組,D-NNA 150,50 和15 mg·kg-1組,連續(xù) ip 給藥 30 d。給藥結(jié)束次日進行小鼠稱重和所有指標的檢測檢查。
給藥結(jié)束次日,小鼠眼眶采血,3000×g離心10 min得到血清,用全自動生化分析儀測定血清肌酐(creatinine,Crea)以及血清尿素氮(blood urea nitrogen,BUN)水平。
小鼠手術(shù)分離取腎,除去周圍結(jié)締脂肪組織,用冷生理鹽水沖洗,除去血液,濾紙拭干,電子天平精確稱重,按下述公式計算腎系數(shù):
腎系數(shù)(mg·g-1)=腎質(zhì)量(mg)/體質(zhì)量(g)。
取1 g腎組織加入9 ml生理鹽水于玻璃勻漿管中制成10% 組織勻漿,于4℃ 12 000×g離心20 min,取上清,按照試劑盒說明采用分光光度法進行NO指標檢測。
取制備好的腎組織勻漿上清液,按照說明書硫代巴比妥酸法檢測腎組織勻漿的MDA含量、以比色法檢測GSH-Px和SOD活性。
腎用體積分數(shù)為10%甲醛固定48 h,經(jīng)常規(guī)取材,脫水后石蠟包埋,制片,HE染色,在光鏡下檢查。
表1結(jié)果顯示,與5%葡萄糖對照組比較,血清中BUN隨D-NNA劑量的增加而增加(P<0.05);D-NNA 150 和 50 mg·kg-1組 Crea明顯升高(P <0.05),D-NNA 15 mg·kg-1組無顯著變化。
與5%葡萄糖對照組腎系數(shù)(17.74±0.69)mg·g-1相 比,D-NNA 150 mg·kg-1組 腎 系 數(shù)(16.74 ±0.55)mg·g-1明顯降低(P <0.05),D-NNA 50和15 mg·kg-1組腎系數(shù)無明顯差異,分別為17.64 ±1.19和(17.49 ±1.17)mg·g-1。
表1D-硝基精氨酸(D-NNA)對小鼠血清尿素氮(Crea)和尿肌酐(BUN)水平的影響Tab.1 Effect of NG-nitro-D-arginine(D-NNA)on serum creatinine(Crea)and blood urea nitrogen(BUN)levels of mice
與5%葡萄糖對照組小鼠腎組織中NO水平(12.8 ± 1.2)μmol·L-1相比,只有 D-NNA 150 mg·kg-1小鼠腎組織中 NO 水平為(10.2 ± 2.6)μmol·L-1,明顯降低(P < 0.05),D-NNA 50 和 15 mg·kg-1組腎組織中NO水平無明顯差異,分別為(11.4 ±2.2)μmol·L-1和(12.2 ±1.6)μmol·L-1。
如表2所示,與5%葡萄糖對照組相比,D-NNA 50和150 mg·kg-1組 MDA 水平和 SOD 和 GSH-Px活性明顯升高(P <0.01,P <0.05),D-NNA 15 mg·kg-1組無顯著差異。
表2D-NNA對小鼠腎丙二醛(MDA)含量,谷胱甘肽過氧化酶(GSH-Px)及超氧化物歧化酶(SOD)活性的影響Tab.2 Effect of D-NNA on the level of renal malondialdehyde(MDA),superoxide dismutase(SOD)and glutathione peroxidase(GSH-Px)activities of kidneys of mice
光鏡檢查發(fā)現(xiàn),5%葡萄糖對照組小鼠腎小球、腎小管結(jié)構(gòu)清晰、形態(tài)正常,無異常病理表現(xiàn)(圖1A)。D-NNA給藥組小鼠腎產(chǎn)生一定的病理形態(tài)變化,D-NNA 15和50 mg·kg-1主要表現(xiàn)為炎癥細胞浸潤(圖1B,C)。D-NNA 150 mg·kg-1組主要表現(xiàn)為腎小管損傷,嗜堿性變、萎縮或囊性擴張,間質(zhì)炎性浸潤(圖1D)。
圖1 D-硝基精氨酸對小鼠腎組織的作用.動物分組及給藥見表1.A:5%葡萄糖對照組,腎組織結(jié)構(gòu)正常;B:D-NNA 15 mg·kg-1組,間質(zhì)炎性浸潤(箭頭所示);C:D-NNA 50 mgp·kg-1組,間質(zhì)炎性浸潤(箭頭所示);D:D-NNA 150 mg·kg-1組,腎小管損傷,間質(zhì)炎性浸潤.Fig.1 Effect of D-NNA on kidney morphology of mice.
Crea和BUN是腎功能的主要指標,如果腎功能受損,排除尿素的能力自然下降,血液中 Crea和BUN水平就會升高。本實驗對ICR小鼠給予D-NNA 150和 50 mg·kg-1后,小鼠血清中 Crea和BUN的含量明顯升高,表明D-NNA對腎功能具有損傷作用,腎病理學(xué)檢查同樣證實長期給予D-NNA會引起腎病理改變。
研究表明,腎是D-NNA在體內(nèi)發(fā)生手性轉(zhuǎn)化的主要器官,在手性轉(zhuǎn)化過程中產(chǎn)生了大量對腎有損傷的 ROS[8-9],ROS 可以和細胞大分子反應(yīng),導(dǎo)致脂質(zhì)過氧化。脂質(zhì)過氧化可能導(dǎo)致膜損傷,SOD和GSH-Px 是機 體 主要 的抗 氧 化 酶[10-12],SOD 和GSH-Px水平反映機體抗氧化能力。MDA是脂質(zhì)過氧化的產(chǎn)物,通過MDA含量可以反映脂質(zhì)過氧化程度[13]。本實驗給予 ICR小鼠 D-NNA 150和50 mg·kg-1后,小鼠腎組織MDA水平明顯升高,SOD活性和GSH-Px活性明顯下降,表明D-NNA對腎具有一定的氧化損傷作用。
L-NNA是D-NNA發(fā)生手性轉(zhuǎn)化的產(chǎn)物,L-NNA是一種 NOS抑制劑,在體內(nèi) NO是由 NOS催化L-NNA氧化生成,NO作為體內(nèi)的重要信號分子,它能舒張血管,抑制血小板黏附、聚集,抑制白細胞黏附、浸潤,減輕炎癥介導(dǎo)的細胞壞死,從而保護組織細胞。本實驗長期給予 ICR小鼠 D-NNA 150 mg·kg-1后發(fā)現(xiàn),腎NO水平明顯降低,在生理條件下釋放的NO使血小板處于較低水平的活化狀態(tài),防止其黏附聚集,NOS活性受到抑制使NO合成減少,導(dǎo)致血小板活化,并釋放血栓素、5-羥色胺、腺嘌呤核苷酸、血小板源性生長因子等引起血管收縮,平滑肌細胞增生并向內(nèi)膜下遷移,白細胞向內(nèi)膜黏附,破壞內(nèi)皮細胞功能[14],當內(nèi)皮細胞功能破壞時,局部血管收縮,血小板黏附、聚集功能增強,血液黏滯性增高,加重微循環(huán)障礙,增加外周阻力,導(dǎo)致血壓升高[15]從而對腎造成損傷作用。
D-NNA的手性轉(zhuǎn)化產(chǎn)物L(fēng)-NNA能抑制NOS活性導(dǎo)致NO生成減少,手性轉(zhuǎn)化過程中產(chǎn)大量ROS,而哺乳動物對外源物進行生物轉(zhuǎn)化過程中產(chǎn)生的活性氧自由基能夠破壞機體的抗氧化防御系統(tǒng)[16],使機體受到超氧游離基的攻擊造成組織細胞損傷[17-18]。腎是D-NNA發(fā)生手性轉(zhuǎn)化的主要器官,約有80%D-NNA在腎發(fā)生手性轉(zhuǎn)化,對腎造成的損傷較大,所以使小鼠腎質(zhì)量和腎系數(shù)變小。
綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn),長期給予D-NNA對小鼠腎具有一定的損傷作用,且存在一定的劑量關(guān)系,其氧化應(yīng)激的機制與D-NNA的手性轉(zhuǎn)化產(chǎn)物L(fēng)-NNA導(dǎo)致NO合成減少,造成腎血管系統(tǒng)功能病變以及在轉(zhuǎn)化過程中產(chǎn)生的ROS有關(guān)。
[1] Wang YX,Poon CI,Pang CC.In vitro and ex vivo inhibitory effects of L-and D-enantiomers of NG-nitro-arginine on endothelium-dependent relaxation of rat aorta[J].J Pharmacol Exp Ther,1993,265(1):112-119.
[2] Wang YX,Cheng X,Pang CC.Bilateral kidney ligation abolishes pressor response to NG-nitro-D-arginine[J].Eur J Pharmacol,1999,366(2-3):175-179.
[3] Wang Q,Cwik M,Wright CJ,Cunningham F,Pelligrino DA.The in vivo unidirectional conversion of nitro-D-arginine to nitro-L-arginine[J].J Pharmacol Exp Ther,1999,288(1):270-273.
[4] 辛艷飛,程 熹,王廣基,周向軍,王永祥.腎臟是體內(nèi)NG-D-硝基精氨酸單向手性轉(zhuǎn)化的主要器官[J].中國藥理學(xué)通報,2004,20(9):989-993.
[5] 辛艷飛,周向軍,王永祥.D型氨基酸氧化酶活性對于D-硝基精氨酸手性轉(zhuǎn)化的影響[J].生物化學(xué)與生物物理進展,2006,33(2):135-139.
[6] Mahieu S,Contini Mdel C,González M,Millen N.Melatonin reduces oxidative damage induced by aluminium in rat kidney[J].Toxicol Lett,2009,190(1):9-15.
[7] Vaziri ND,Liang K,Ding Y.Increased nitric oxide inactivation by reactive oxygen species in lead-induced hypertension[J].Kidney Int,1999,56(4):1492-1498.
[8] Ha H,Lee HB.Reactive oxygen species as glucose signaling molecules in mesangial cells cultured under high glucose[J].Kidney Int Suppl,2000,77:S19-S25.
[9] 鄭美玲,樊均明.氧化應(yīng)激對糖尿病腎病時細胞、細胞外基質(zhì)及血管通透性的影響機制[J].中國組織工程研究與臨床康復(fù),2007,11(25):4988-4991.
[10] Singal PK,Iliskovic N,Li T,Kaur K.Heart failure due to doxorubicin[J].Kuwait Med J,2001,33(2):111-115.
[11] Muraoka S,Miura T.Free radicals mediate cardiac toxicity induced by adriamycin[J].Yakugaku Zasshi,2003,123(10):855-866.
[12] Fogli S,Nieri P,Breschi MC.The role of nitric oxide in anthracycline toxicity and prospects for pharmacologic prevention of cardiac damage[J].FASEB J,2004,18(6):664-675.
[13] 安利峰,勝 利,范桂香.硒的功能及其相關(guān)疾?。跩].國外醫(yī)學(xué)醫(yī)學(xué)地理分冊,2005,26(2):56-57,79.
[14] 于 靜,鄧 起.一氧化氮的生理作用及與人體多個系統(tǒng)疾病發(fā)病過程的關(guān)系[J].實用醫(yī)技雜志,2007,14(13):1781-1782.
[15] Hartman JC,Wall TM,Hullinger TG,Shebuski RJ.Reduction of myocardial infarct size in rabbits by ramiprilat:reversal by the bradykinin antagonist HOE 140[J].J Cardiovasc Pharmacol,1993,21(6):996-1003.
[16] 李桂珠,許運新,趙曉松,王玉軍,孫安娜,王洪階.人參床土中五氯硝基苯殘留特性的模擬[J].吉林農(nóng)業(yè)科學(xué).2002,27(5):55-57.
[17] Hodgson EK, Fridovich I. The interaction of bovine erythrocyte superoxide dismutase with hydrogen peroxide:inactivation of the enzyme[J]. Biochemistry,1975,14(24):5294-5299.
[18] Pigeolet E, Corbisier P, Houbion A, Lambert D,Michiels C,Raes M,et al.Glutathione peroxidase,superoxide dismutase,and catalase inactivation by peroxides and oxygen derived free radicals[J].Mech Ageing Dev,1990,51(3):283-297.