唐量 張萬(wàn)金 王園麗 張英起
1 陜西師范大學(xué)體育學(xué)院運(yùn)動(dòng)分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)室(西安 710062) 2 第四軍醫(yī)大學(xué)生物技術(shù)中心
運(yùn)動(dòng)和藥物治療多年來(lái)一直是臨床預(yù)防和治療肌萎縮的重要方法。除研究不同運(yùn)動(dòng)如耐力訓(xùn)練、抗阻力訓(xùn)練或被動(dòng)運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練等治療肌肉萎縮的方法及機(jī)制外,尋找新的藥物靶分子也十分必要。最近的實(shí)驗(yàn)證明,肌肉萎縮與Myostatin異常表達(dá)升高密切相關(guān)。Lalani等[1]對(duì)雄性成年大鼠進(jìn)行17d模擬失重后證實(shí),股二頭肌、股四頭肌、腓腸肌Myostatin mRNA和蛋白水平顯著高于對(duì)照組。Michelle等[2]對(duì)Wistar大鼠進(jìn)行10d后肢懸吊,發(fā)現(xiàn)Myostatin mRNA升高110%,蛋白水平上升37%。人體實(shí)驗(yàn)證明,成年男性臥床25d,伴隨著瘦體重、肌肉量下降,血液Myostatin濃度高于基礎(chǔ)值12%[3]。以上研究說(shuō)明模擬失重、后肢懸吊或臥床等誘發(fā)的廢用性肌肉萎縮可引起肌肉組織Myostatin表達(dá)異常升高,但針對(duì)Myostatin靶分子治療廢用性肌肉萎縮方面的研究報(bào)道仍少見。
Myostatin是骨骼肌生長(zhǎng)發(fā)育的主要負(fù)調(diào)控因子,屬于TGF-β超家族新成員,因其基因敲除后出現(xiàn)“雙肌”癥狀[4]而倍受關(guān)注。目前眾多研究報(bào)道了抗阻力運(yùn)動(dòng)[5,6]和游泳訓(xùn)練[7]等對(duì)Myostatin基因和蛋白表達(dá)的影響,證明抗阻力訓(xùn)練和耐力訓(xùn)練使肌肉肥大與Myostatin關(guān)系密切。本課題組近年來(lái)報(bào)道了Myostatin對(duì)骨骼肌生長(zhǎng)發(fā)育調(diào)控的研究進(jìn)展[8]和Myostatin基因多態(tài)性在杰出運(yùn)動(dòng)員選材中的應(yīng)用展望[9],但有關(guān)蛋白水平上Myostatin活性抑制對(duì)骨骼肌質(zhì)量和力量影響的報(bào)道還少見。要準(zhǔn)確了解運(yùn)動(dòng)或Myostatin抑制劑干預(yù)Myostatin活性在肌肉形成中的作用機(jī)制,蛋白水平上的研究尤為重要。我們前期已利用基因工程技術(shù)構(gòu)建、表達(dá)和純化了高純度、無(wú)活性的Myostatin重組蛋白[10],本實(shí)驗(yàn)以Myostatin重組蛋白作為疫苗免疫小鼠,觀測(cè)小鼠體重、肌細(xì)胞形態(tài)、骨骼肌質(zhì)量和力量等指標(biāo)的變化,探討Myostatin蛋白疫苗調(diào)控骨骼肌質(zhì)量和力量的效果及分子機(jī)制。
實(shí)驗(yàn)動(dòng)物為雄性BALB/c小鼠,體重12~14g,共20只,購(gòu)自第四軍醫(yī)大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心。20只小鼠分成正常對(duì)照組和His-Ms免疫組2組,每組10只。小鼠飼養(yǎng)環(huán)境保持高度清潔,自然光照,自由飲水和進(jìn)食,動(dòng)物室溫23~28℃,相對(duì)濕度50%~65%。適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后His-Ms組小鼠進(jìn)行免疫實(shí)驗(yàn)。
免疫蛋白His-Ms為基因工程技術(shù)構(gòu)建、表達(dá)和純化的高純度、無(wú)活性的Myostatin重組蛋白[10]。His-Ms 組小鼠按100 μg/只劑量進(jìn)行腹腔注射,每?jī)芍苊庖?次,共免疫4次[11]。正常對(duì)照組動(dòng)物在實(shí)驗(yàn)組進(jìn)行免疫時(shí)腹腔注射相等體積的生理鹽水。實(shí)驗(yàn)期間,每周一、四早上10:00稱體重,取兩次稱重的平均值為每周體重。
實(shí)驗(yàn)共進(jìn)行62 d,最后一次免疫20 d后對(duì)照組和His-Ms組小鼠同時(shí)取材,眼眶采集血樣,然后迅速取出腹腔內(nèi)的游離脂肪組織稱重,再分離股四頭肌、腓腸肌和胸大肌,剝離附著在肌肉組織的包膜等非肌纖維組織,稱重并記錄。
分離肌肉組織,在4℃固定液(10%中性福爾馬林,50 mmol/L PBS,pH7.2)中固定24 h,后在肌中間最隆起部位切片,置于4℃溶液(5%蔗糖,50 mmol/L PBS,pH7.2)中過(guò)夜,預(yù)冷的50%丙酮脫水,純丙酮脫水2次,二甲苯透明,浸蠟,石蠟(54℃~56℃)包埋,切片,HE(hematoxylin and eosin)染色,生物顯微鏡(Olympus IX70, 日本Olympus公司)觀察。為分析小鼠肌肉組織重量增加與肌細(xì)胞肥大(hypertrophy)或肌細(xì)胞增生(hyperplasia)之間的關(guān)聯(lián),實(shí)驗(yàn)利用Scion Image4.02軟 件(http://www.scioncorp.com), 從對(duì)每組隨意選6只小鼠共1000個(gè)股四頭肌細(xì)胞的橫斷面積和每束肌纖維的平均細(xì)胞數(shù),按Lee等[12]報(bào)道的方法進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。
采用全自動(dòng)生化分析儀(日本日立公司)檢測(cè)血清膽固醇(CHO)、甘油三脂(TG)、尿素氮(BUN)、血糖(GLU)、肌酸激酶(CK)等血液指標(biāo)。試劑盒均購(gòu)自南京建成生物工程研究所。
小鼠處死前1d對(duì)其前肢抓力進(jìn)行測(cè)試。參考并改進(jìn)Peled-Kamar等[13]報(bào)道的前肢抓力測(cè)試方法,在離地高80 cm處綁緊一根直徑2 mm的繩子,讓小鼠前肢握住繩子,并固定尾部,記錄小鼠掉落前持續(xù)握住繩子的時(shí)間,即完成一次抓力測(cè)試。重復(fù)3次取平均值。抓力測(cè)試重復(fù)間隔時(shí)間盡可能一致。
利用PVAC-Ms轉(zhuǎn)染并鑒定可表達(dá)Myostatin蛋白的CHO細(xì)胞[14],轉(zhuǎn)染36h后,吸去培養(yǎng)液,37℃干燥后用0.025%戊二醛(PBS配制,pH7.4)室溫固定20 min,PBS洗孔3遍。每孔加入200 μl含3% H2O2PBS,室溫反應(yīng)20 min,PBS洗孔3遍。在細(xì)胞包被孔中分別加入兩組各6只小鼠不同稀釋度的待測(cè)血清,每孔200 μl,設(shè)復(fù)孔,陰性對(duì)照,37℃溫箱反應(yīng)l h,用洗液洗3遍。加入1:10000生物素化的羊抗小鼠IgG抗體,每孔200 μl,37℃反應(yīng)l h,洗孔3遍,甩干。加入1:200親和素化辣根過(guò)氧化物酶,每孔200 μl,37℃反應(yīng)30 min,洗孔3遍。加OPD-H2O2底物200 μl,37℃避光反應(yīng),加2M H2SO4終止反應(yīng)。酶標(biāo)儀(美國(guó)Bio-Rad公司)測(cè)各孔OD450nm值。
用Excel 2000對(duì)所測(cè)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)處理,實(shí)驗(yàn)結(jié)果以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差()表示,進(jìn)行兩組間非成對(duì)均值t檢驗(yàn),P < 0.05表示有顯著性差異。
由圖1可見,第6周開始至實(shí)驗(yàn)結(jié)束,His-Ms組免疫小鼠體重增加幅度略大于正常對(duì)照組。表1顯示, His-Ms組小鼠最后一周體重與正常對(duì)照組比較平均增加3.6%,但無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。與正常對(duì)照組比較,His-Ms組小鼠股四頭肌和胸大肌重量顯著增加,腓腸肌重量雖增加但無(wú)顯著性差異;腹腔脂肪墊重量無(wú)顯著性變化。
表1 兩組小鼠體重、肌肉和腹腔脂肪墊重量比較
股四頭肌組織化學(xué)染色光鏡觀察結(jié)果顯示,對(duì)照組和His-Ms組小鼠肌細(xì)胞形態(tài)均正常,細(xì)胞結(jié)構(gòu)完整(圖2A)。與對(duì)照組比較,His-Ms組小鼠股四頭肌橫斷面積增加了5.6%,有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(圖2B),而股四頭肌每束肌纖維平均細(xì)胞數(shù)目?jī)山M之間無(wú)明顯差別(圖2C)。
表2顯示,各血清指標(biāo)兩組之間無(wú)顯著差別。
正常對(duì)照組前肢抓力測(cè)試時(shí)間為33.5±2.7 s,His-Ms組為46.5±7.0 s,與正常對(duì)照組比較增加了26.6%,差異顯著(P<0.05)。
表2 兩組小鼠血清指標(biāo)的變化
圖3顯示,在血清稀釋2×102倍時(shí),對(duì)照組OD450nm值為0.363,His-Ms組 OD450nm值為 0.794,His-Ms組與對(duì)照組OD450nm比值大于2.1,由此判斷血清抗體為陽(yáng)性;而在血清稀釋2×103和2×104倍時(shí),His-Ms組與對(duì)照組的OD450nm比值小于2.1,判斷血清抗體為陰性,表明His-Ms蛋白免疫小鼠后抗體效價(jià)達(dá)到2×102。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,針對(duì)Myostatin的免疫蛋白誘導(dǎo)的特異性抗體平均滴度在2×102以上,并對(duì)免疫小鼠體重、肌肉質(zhì)量和抓力均產(chǎn)生影響。與正常對(duì)照組比較,免疫小鼠體重平均增加了3.6%,股四頭肌、腓腸肌和胸大肌重量分別增加了11.2%、3.2%和15.8%,前肢抓力平均增加了26.6%,而小鼠腹腔游離脂肪組織和血清CHO、TG各組之間無(wú)明顯差別,推測(cè)免疫小鼠體重增加可能與肌肉重量增加有關(guān),與脂肪堆積無(wú)明顯關(guān)聯(lián)。本實(shí)驗(yàn)中,與正常對(duì)照組比較,His-Ms組免疫小鼠股四頭肌橫斷面積增加了5.6%,而股四頭肌每束肌纖維平均細(xì)胞數(shù)目?jī)山M之間無(wú)明顯差別,初步表明免疫小鼠骨骼肌質(zhì)量增加可能與骨骼肌肥大有關(guān),而與肌細(xì)胞增生無(wú)明顯關(guān)聯(lián)。Whittemore等[15]研究證明,成年小鼠注射抗Myostatin抗體后,肌肉質(zhì)量和抓力顯著增加,與本實(shí)驗(yàn)結(jié)果基本一致。但Myostatin重組蛋白疫苗克服了抗體類藥物價(jià)格昂貴、用藥量大、長(zhǎng)期反復(fù)、易引起超敏反應(yīng)等缺點(diǎn),是抑制體內(nèi)Myostatin活性的一種新途徑,易于在肌肉萎縮的臨床治療中應(yīng)用。我們前期有關(guān) Myostatin自體疫苗的制備及臨床前基礎(chǔ)研究成果已獲發(fā)明專利授權(quán)(No. 200610104728.4)。
本實(shí)驗(yàn)中,無(wú)活性Myostatin免疫蛋白使小鼠骨骼肌質(zhì)量和力量增加可能與免疫誘導(dǎo)的抗體和 Myostatin特異性結(jié)合進(jìn)而抑制其活性有關(guān)。Myostatin成熟肽包含9個(gè)保守的半胱氨酸殘基,在血液中通過(guò)二硫鍵連接形成二聚體,活化的Myostatin以二聚體形式與受體結(jié)合發(fā)揮該蛋白的生物學(xué)功能[16]。目前證實(shí)能與Myostatin成熟肽結(jié)合并抑制其活性的分子有其前肽、Follistatin、Follistatin-related gene(FLRG)及其受體Act RIIB拮抗劑等,肌肉表型與Myostatin基因敲除動(dòng)物的類似[9,17]。實(shí)驗(yàn)誘導(dǎo)的特異性抗體與 Myostatin 二聚體結(jié)合,可競(jìng)爭(zhēng)性抑制該分子與受體的結(jié)合而封閉其作用,相關(guān)的理論推測(cè)需要下一步競(jìng)爭(zhēng)性抑制實(shí)驗(yàn)來(lái)證實(shí)。
運(yùn)動(dòng)使骨骼肌負(fù)調(diào)控因子Myostatin基因表達(dá)趨于下調(diào),同時(shí)促進(jìn)骨骼肌正調(diào)控因子IGF-I表達(dá)趨于上調(diào)[18,19],但也有不一致的報(bào)道[3]。Zdanowicz等[20]利用IGF-I治療后肢懸吊10d的廢用性肌萎縮大鼠模型后發(fā)現(xiàn),大鼠體質(zhì)量和肌質(zhì)量顯著恢復(fù),對(duì)治療廢用性肌肉萎縮有效。而有關(guān)Myostatin在治療廢用性肌肉萎縮方面的研究仍少見,本實(shí)驗(yàn)結(jié)果為Myostatin靶分子應(yīng)用于廢用性等肌肉萎縮的治療提供了實(shí)驗(yàn)參考,并為航空航天醫(yī)學(xué)中研究失重性肌肉萎縮的難題提供了新思路。
利用基因工程技術(shù)構(gòu)建、表達(dá)和純化的無(wú)活性His-Ms蛋白免疫小鼠后,可誘導(dǎo)其產(chǎn)生特異性抗體,使免疫小鼠瘦體重、骨骼肌質(zhì)量及抓力均有不同程度增加,表明Myostatin重組蛋白疫苗His-Ms是抑制體內(nèi)Myostatin活性的一種新途徑,對(duì)動(dòng)物骨骼肌質(zhì)量和力量增加有一定促進(jìn)作用。
[1]Lalani R,Bhasin S,Byhower F,et al. Myostatin and insulin-like growth factor-1 and -2 expression in the muscle of rats exposed to the microgravity environment of the neurolab space shuttle flight. J Endocrinol,2000,167(3):417-428.
[2]Michelle W,Baiyuan C,James GT. Modulation of myostatin expression during modified muscle use. FASEB J,2000,14(1):103-110.
[3]Zachwieja JJ,Smith SR,Sinha-Hikim I,et al. Plasma myostatin -immunoreactive protein is increased after prolonged bed rest with low-dose T3 administration. J Gravit Physiol,1999,6(2):11-15.
[4]McPherron AC,Lawler AM,Lee SJ. Regulation of skeletal muscle mass in mice by a new TGF-β superfamily member. Nature,1997,387(6628):83-90.
[5]Stephen MR,Gregory FM,Robert EF,et al. Myostatin gene expression is reduced in human with heavyresistance strength training; a brief communention. Exp Biol Med,2003,228(6):706-709.
[6]Hulmi JJ,Ahtiainen JP,Kaasalainen T,et al. Postexercise myostatin and activin IIb mRNA levels:effects of strength training. Med Sci Sports Exerc,2007,39(2):289-297.
[7]Matsakas A,Bozzo C,Cacciani N,et al. Effect of swimming on myostatin expression in white and red gastrocnemius muscle and in cardiac muscle of rats. Exp Physiol,2006,91(6):983-994.
[8]唐量,劉軍. Myostatin對(duì)骨骼肌生長(zhǎng)發(fā)育調(diào)控的研究進(jìn)展. 西安體育學(xué)院學(xué)報(bào),2008,25(4):77-81.
[9]胡柏平,唐量,張英起. Myostatin 基因多態(tài)性在杰出運(yùn)動(dòng)員選材中的應(yīng)用展望. 體育科學(xué),2009,29(2):71-75.
[10]唐量,王園麗,張萬(wàn)金,等. Myostatin基因原核表達(dá)載體的構(gòu)建及蛋白表達(dá)、純化與鑒定. 陜西師范大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2010,38(6):77-81.
[11]E.哈洛,D.萊恩著;沈關(guān)心,龔非力譯. 抗體技術(shù)實(shí)驗(yàn)指南. 北京:科學(xué)出版社,2002.18-25.
[12]Lee SJ,McPherron AC. Regulation of myostatin activity and muscle growth. Proc Natl Acad Sci USA,2001,98(16):9306-9311.
[13]Peled-Kamar M,Lotem J,Wirguin I,et al. Oxidative stress mediates impairment of muscle function in transgenic mice with elevated level of wild-type Cu/Zn superoxide dismutase. Proc Natl Acad Sci USA,1997,94(8):3883-3887.
[14]唐量,胡柏平,熊正英,等. Myostatin 基因真核表達(dá)載體的構(gòu)建及其在CHO細(xì)胞中的表達(dá). 體育科學(xué),2008,28(12):45-49.
[15]Whittemore LA,Song K,Li X,et al. Inbibition of myostatin in adult mice increnses skeletal muscle mass and strength. Biochem Biophys Res Commun,2003,300(4):965-971.
[16]Langley B,Thomas M,Bishop A,et al. Myostatin inhibits myoblast differentiation by down-regulating MyoD expression. J Biol Chem,2002,277(51):49831-49840.
[17]Yang J,Ratovitski T,Brady JP,et al. Expression of Myostatin pro-domain results in muscular transgenic mice. Mol Reprod Dev,2001,60(3):351-361.
[18]Bamman MM,Shipp JR,Jiang J,et al. Mechanical load increases muscle IGF-I and androgen receptor mRNA concentrations in humans. Am J Physiol Endocrinol Metab,2001,280(3):E383-E390.
[19]Singh MA,Ding W,Manfredi TJ,et al. Insulin-like growth factor I in skeletal muscle after weight-lifting exercise in frail elders. Am J Physiol,1999,277(1 Pt 1):E135-E143.
[20]Zdanowicz MM,Teichberg S. Effects of insulin-like growth factor-1/binding protein-3 complex on muscle atrophy in rats. Exp Biol Med(Maywood),2003,228(8):891-897.
中國(guó)運(yùn)動(dòng)醫(yī)學(xué)雜志2011年2期