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    豬細小病毒單克隆抗體的制備和鑒定

    2011-02-12 03:15:04李曉霞董昕欣顧小雪鄧小雨胡冬梅遇秀玲翟新驗田克恭
    中國比較醫(yī)學(xué)雜志 2011年9期
    關(guān)鍵詞:雜交瘤單克隆效價

    張 倩,李曉霞,董昕欣,顧小雪,曹 振,鄧小雨,胡冬梅,劉 奇,周 智,遇秀玲,翟新驗,田克恭

    (1.中國動物疫病預(yù)防控制中心,北京 100193;2.北京市朝陽區(qū)動物疫病預(yù)防控制中心,北京 100018)

    豬細小病毒(porcine parvovirus,PPV)是引起母豬繁殖障礙的主要病原體之一[1]。該病常發(fā)生在春、秋產(chǎn)仔季節(jié),以懷孕母豬,特別是初產(chǎn)母豬感染后流產(chǎn)、死胎、木乃伊胎及新生仔豬死亡為臨床特征,而母體通常缺乏臨診癥狀[2]。自20世紀(jì)60年代中期以來,相繼從歐洲、美洲、亞洲等很多國家分離到該病毒或檢測出其抗體。我國也先后在北京、上海、吉林、黑龍江、四川、浙江、湖北、河南、山東、福建等地分離到了多株P(guān)PV,血清學(xué)調(diào)查陽性率在12.1% ~84.8%不等。因該病流行面廣、危害嚴重,給養(yǎng)豬業(yè)帶來重大經(jīng)濟損失。

    目前已經(jīng)建立了多種檢測PPV的方法,包括病毒分離、分子生物學(xué)診斷技術(shù)、酶聯(lián)免疫吸附試驗等,這些方法在病原檢測或抗體檢測中各有特點,在該病的診斷中發(fā)揮了重要的作用。但如何在此基礎(chǔ)上研制開發(fā)純度高、性能穩(wěn)定的檢測試劑以及更易在生產(chǎn)實踐中推廣應(yīng)用的快速檢測方法仍然是今后豬細小病毒疾病防治工作的一個重點。單克隆抗體以其高度均質(zhì)性、高度特異性,來源穩(wěn)定等特點[3],可直接運用于疫病的臨床診斷,尤其是臨床疑似病例的病毒抗原檢測,也可作為原材料廣泛應(yīng)用于多種診斷方法。本文旨在制備生物活性好、抗體分泌穩(wěn)定的抗PPV的單克隆抗體雜交瘤細胞株,為豬細小病毒病的臨床快速診斷商品化試劑研發(fā)奠定基礎(chǔ)。

    1 材料和方法

    1.1 毒種、細胞和實驗動物

    PPV、豬腎細胞(PK-15)和 SP2/0細胞(Sp2/0-Ag14)均購自美國標(biāo)準(zhǔn)菌種保藏中心(American Type Culture Collection,ATCC)。豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)、豬瘟病毒(CSFV)、豬偽狂犬病毒(PRV)、豬圓環(huán)病毒I型(PCV-1)、豬圓環(huán)病毒Ⅱ型(PCV-2)、乙腦病毒(JEV)均為中國動物疫病預(yù)防控制中心獸醫(yī)診斷室保存。SPF級BALB/c小鼠購自中國藥品生物制品檢定所實驗動物中心[SCXK(京2005-2004)]。

    1.2 主要試劑

    DMEM培養(yǎng)基(GIBCO公司)、HAT(Sigma公司,貨號 H0262)、HT(Sigma公司,貨號 H0137)、HRP標(biāo)記的羊抗鼠 IgG(JacksonImmunoResearch,Inc)、HRP標(biāo)記的羊抗鼠 IgM(Jackson Immuno Research,Inc)、FITC標(biāo)記的抗鼠 IgG(Sigma公司)、 FITC 標(biāo)記的抗鼠IgM(Sigma公司)、SBA Clonotyping System/AP kit單抗亞型鑒定試劑盒(Southern Biotechnology Associates,Inc.)。

    1.3 病毒增殖與純化

    在PK-15細胞傳代后接種PPV,置于37℃5% C02培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng),待75%以上細胞出現(xiàn)細胞病變(CPE)后收毒,收獲的病毒凍融處理3次,然后用聚乙二醇(PEG)濃縮,再經(jīng)差速離心,最后用蔗糖梯度密度離心純化[4]。

    1.4 免疫

    用純化的PPV與等量的弗氏完全佐劑混勻后,腹腔和背部皮下多點注射SPF級BALB/c小鼠(6~8周齡、雌性)。此后,每間隔兩周用混合弗氏不完全佐劑的抗原液進行加強免疫。兩次加強免疫后,于融合前3天,脾臟或腹腔注射200μg抗原液加強免疫。

    1.5 間接ELISA篩選方法的建立

    采用間接ELISA方法,按方陣法確定包被PPV純化蛋白抗原、抗體的最適工作濃度。以TMB為底物,測定OD450值。以陽性血清 OD值在1.0左右,同時與陰性血清OD值差距最大的抗原包被濃度、抗體稀釋度為最佳工作濃度。

    1.6 細胞融合[3]

    將免疫小鼠脾細胞與SP2/0細胞按5∶1比例混合,在50%聚乙二醇作用下融合,融合后置HAT選擇性培養(yǎng)基,將其加入到鋪有飼養(yǎng)細胞的96孔培養(yǎng)板中,置37℃5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

    1.7 陽性雜交瘤細胞的克隆化[5]

    對融合后的陽性細胞用有限稀釋法進行4次克隆,使陽性率達100%。將最終篩選出的強陽性單克隆細胞擴大培養(yǎng),一部分凍存?zhèn)溆?,一部分用于大量制備單克隆抗體。

    1.8 單克隆抗體的制備及純化

    取8~12周齡SPF級BALB/c小鼠腹腔注射雜交瘤細胞,所得腹水用親和層析法進行純化。

    1.9 單克隆抗體的鑒定

    1.9.1 雜交瘤細胞染色體分析[6]

    按常規(guī)方法進行雜交瘤細胞染色體分析,于高倍顯微鏡下觀察,每份樣本應(yīng)計數(shù)100個完整的中期核細胞,記錄染色體數(shù)目的分布。

    1.9.2 單克隆抗體效價及亞型的測定

    采用已建立的間接 ELISA方法測定細胞上清及腹水中單克隆抗體的效價。按照SBA Clonotyping System/AP kit單抗亞型鑒定試劑盒說明書進行單克隆抗體亞型的測定。

    1.9.3 單克隆抗體特異性鑒定

    1.9.3.1 交叉反應(yīng):以PRRSV、CSFV、PRV、PCV-1、PCV-2、JEV為包被抗原,用腹水分別與其進行交叉檢測,用間接ELISA方法測定OD450nm值。

    1.9.3.2 免疫過氧化物酶單層試驗(IPMA):用PPV同步接種含 PK-15細胞的 96孔培養(yǎng)板,置37℃ 5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48h后用-20℃無水乙醇固定。按方陣法確定的腹水、HRP標(biāo)記羊抗鼠IgG (IgM)的最佳工作濃度和反應(yīng)時間進行IPMA檢測,經(jīng)AEC進行底物顯色,蘇木素襯染細胞核后,于顯微鏡下觀察。

    1.9.3.3 間接免疫熒光檢測方法(IFA):細胞板的制備和固定同 1.9.3.2。按方陣法確定的腹水、FITC標(biāo)記羊抗鼠IgG(IgM)工作濃度和反應(yīng)時間進行IFA檢測,于熒光顯微鏡下觀察。

    1.9.4 雜交瘤細胞穩(wěn)定性鑒定

    獲得的2個細胞株經(jīng)穩(wěn)定傳代后液氮凍存,1個月后復(fù)蘇,檢測細胞上清抗體效價。再經(jīng)腹腔接種BALB/c小鼠,同樣檢測腹水的抗體效價,并與凍存前效價進行比較。

    2 結(jié)果

    2.1 病毒增殖與純化

    經(jīng)蔗糖梯度密度離心純化后的PPV蛋白濃度為11 mg/m L。

    2.2 間接ELISA方法篩選建立雜交瘤細胞株

    根據(jù)方陣法確定間接ELISA方法的最佳 PPV純化蛋白抗原包被濃度為2μg/mL,經(jīng)間接 ELISA篩選,4次克隆化獲得2株穩(wěn)定分泌抗PPV單克隆抗體雜交瘤細胞株,命名為2H9、1F9。

    2.3 單克隆抗體的鑒定

    2.3.1 雜交瘤細胞染色體計數(shù)

    雜交瘤細胞染色體在90~110范圍內(nèi)變化,2H9平均98,1F9平均96。該數(shù)值大于脾細胞染色體數(shù)的兩倍,小于脾細胞與骨髓瘤細胞的染色體數(shù)目之和,表明該雜交瘤細胞確為脾細胞與骨髓瘤細胞融合產(chǎn)物。

    2.3.2 單克隆抗體效價及亞型測定

    2H9、1F9雜交瘤細胞上清的 ELISA抗體效價均在104以上,腹水的ELISA抗體效價均在107以上。2H9的亞型是 IgG1、kappa鏈;1F9的亞型是IgM、kappa鏈。

    2.3.3 單克隆抗體特異性鑒定

    2.3.3.1 交叉反應(yīng):間接 ELISA檢測結(jié)果顯示,PRRSV、CSFV、PRV、PCV-1、PCV-2、JEV均不與2H9和1F9腹水發(fā)生交叉反應(yīng)。

    2.3.3.2 免疫過氧化物酶單層試驗(IPMA):腹水1∶400稀釋,HRP標(biāo)記的羊抗鼠 IgG(IgM)1∶80稀釋,AEC顯色時,2株單克隆抗體均能與PK-15細胞中的PPV呈中等強度以上反應(yīng),可見接種了PPV的PK-15細胞核或細胞漿中出現(xiàn)紅色陽性著染,陰性對照細胞未見陽性反應(yīng)(封底圖1)。

    2.3.3.3 間接免疫熒光方法(IFA):腹水1∶400稀釋,F(xiàn)ITC標(biāo)記的羊抗鼠 IgG(IgM)1∶100稀釋時,2株單克隆抗體均能與PK-15細胞中的PPV呈中等強度以上反應(yīng),可見接種了PPV的PK-15細胞核或細胞漿中出現(xiàn)黃綠色熒光,陰性對照孔呈暗紅色未見熒光(封底圖2)。

    2.3.4 雜交瘤細胞穩(wěn)定性鑒定

    2株雜交瘤細胞經(jīng)穩(wěn)定傳代后液氮凍存,1個月后復(fù)蘇,細胞生長良好,抗體分泌水平與凍存前相同。腹腔接種BALB/c小鼠后可致瘤,并穩(wěn)定地分泌特異性抗體。

    3 討論

    本研究克隆、篩選、鑒定了2株針對PPV的雜交瘤細胞,經(jīng)鑒定證明其分泌的單克隆抗體生物活性好、特異性高、抗體分泌穩(wěn)定,能大量制備,可作為純度高、性能穩(wěn)定的檢測試劑原材料,也可用于PPV檢測商品化試劑盒的研發(fā),具有廣闊的市場應(yīng)用前景。

    本研究通過對雜交瘤細胞克隆化這一關(guān)鍵步驟的把握,使得所制備的單克隆抗體具有陽性克隆多、穩(wěn)定性好的特點。首先在細胞融合后長至孔底的1/2~1/3時進行克隆,避免了陽性細胞漏檢和染色體丟失情況的發(fā)生。采用操作簡便的有限稀釋法,保證了獲得的雜交瘤穩(wěn)定,抗體分泌效價高。經(jīng)過4次克隆化獲得的雜交瘤陽性率均為100%,ELISA檢測證明2H9、1F9交瘤細胞上清效價均達1∶1×104,腹水效價均達1∶1×107。此外,本研究以純化的PPV全病毒作為免疫原,同時在間接ELISA的篩選過程中設(shè)立了PK-15細胞的陰性對照,以確保得到特異性強、活性好的單抗。特異性試驗證明2H9、1F9具有高度的特異性,只與 PPV反應(yīng),與PRRSV、CSFV、PRV、PCV-1、PCV-2、JEV等相關(guān)豬病病毒均無交叉反應(yīng)。

    目前大部分研究制備的 PPV單抗多經(jīng)由ELISA方法篩選得到,并用于 ELISA抗體檢測,如1992年陸萍等獲得3株抗PPV McAbs的雜交瘤細胞株[7];1993年余太尉篩選出 4株分泌抗 PPV McAbs的雜交瘤細胞系,并用以建立檢測PPV抗體的ELISA[8];1995年謝琴等得到5株分泌抗 PPV McAbs,用以建立檢測 PPV的 ELISA方法[9]等。而本研究獲得的2株單克隆抗體不僅ELISA效價高,且同時經(jīng)IPMA和IFA方法驗證,均能與接種于PK-15細胞的PPV發(fā)生特異性反應(yīng),具有良好的免疫酶活性和熒光活性,因此應(yīng)用范圍更廣,不僅可用于建立ELISA方法進行PPV抗體或抗原檢測,還可用于建立簡單、快速、特異、敏感的IPMA和IFA檢測方法。下一步,將利用本研究制備的2株P(guān)PV單抗建立免疫酶和免疫熒光方法,并應(yīng)用于可疑的流產(chǎn)和死產(chǎn)胎兒的腎、肺、肝、腦、睪丸和胎盤等臨床樣品冰凍切片的檢測,作為PCR等豬細小病毒病臨床快速診斷方法的補充和驗證。Infect Dis Rev,2000,2:99-109.

    [2]吳丹,仇華吉,李昌文等.豬細小病毒sY一99株非結(jié)構(gòu)蛋白NSl基因的克隆及序列分析[J].哈爾濱中國預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報07-2002.

    [3]徐志凱.實用單克隆抗體技術(shù)[M].西安:陜西科學(xué)技術(shù)出版社,1992.

    [4]殷震,劉景華主編.動物病毒學(xué)[M].第二版.北京:科學(xué)技術(shù)出版社.1997,310-318

    [5]James W.Goding.Monoclonal Antibodies:Peinciples and practice.Academic press.Inc.Ltd.1983

    [6]鄂征主編.組織培養(yǎng)和細胞生物學(xué)技術(shù)(第一版)[M].北京:北京出版社.

    [7]陸萍,胡志賢,王國豐,等.抗豬細小病毒單克隆抗體雜交瘤細胞株的建立及初步應(yīng)用[J].上海農(nóng)學(xué)院學(xué)報,1992,10 (2):101-107.

    [8]俞太尉,丘惠深.抗豬細小病毒單克隆抗體的研制及初步應(yīng)用的研究[J].中國畜禽傳染病.1993,1:55-57.

    [9]謝琴,王東,何存利,等.分泌豬細小病毒單克隆抗體雜交瘤細胞株的建立[J].中國畜禽傳染病.1995,5:48-50.

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