趙 欣,盧翠華,陳伊里,石 瑛,邸 宏,張麗莉,張正國,張 歡
(東北農(nóng)業(yè)大學農(nóng)學院,哈爾濱 150030)
馬鈴薯是同源四倍體植物,基因分離復雜,隱性基因的表現(xiàn)頻率低,建立在四倍體水平上的雜種實生苗和無性系選擇的常規(guī)育種方法效率比較低。此外,馬鈴薯普通栽培種基因庫比較狹窄,而具有豐富基因的大量野生種質(zhì)資源約75%為二倍體,普通栽培種與其雜交受到倍性障礙而難以成功,限制了野生種質(zhì)中優(yōu)良基因的利用。因此,開展馬鈴薯花藥培養(yǎng)研究對于優(yōu)良品種的選育和改良具有重要意義。
我國從20世紀80年代開始進行馬鈴薯花藥培養(yǎng)研究,但是一直存在誘導率低、白化苗、混倍現(xiàn)象等問題,因此,一直沒能在馬鈴薯育種中得到廣泛應用[1-3]。馬鈴薯花藥培養(yǎng)受基因型、激素配比、溫度和甘露醇處理等因素的影響[4-5],培養(yǎng)基中添加的硝酸銀、活性炭、馬鈴薯提取液也是影響花藥培養(yǎng)的重要因素。
本試驗以馬鈴薯栽培種(Solanum tuberosum L.)為材料,對培養(yǎng)基添加物硝酸銀、活性炭、馬鈴薯提取液進行研究,以期建立高效穩(wěn)定的馬鈴薯花藥培養(yǎng)體系,為馬鈴薯新品種的選育提供有效的育種途徑。
試驗以Vangal、波C、訥16、春薯4號和內(nèi)薯7號5個馬鈴薯品種(系)為材料,由大興安嶺地區(qū)農(nóng)業(yè)科學研究所、黑龍江省農(nóng)業(yè)科學院克山馬鈴薯研究所、東北農(nóng)業(yè)大學馬鈴薯研究室、內(nèi)蒙古呼盟農(nóng)業(yè)科學研究所提供。
1.2.1 花蕾的采集及花粉發(fā)育時期的檢測
2008年7月,在馬鈴薯盛花期采集長度約5~6 mm的花蕾,取蕾時間8:00~9:00 am,撕開花瓣,取出花藥(花藥長度3~4 mm),用卡諾固定液固定,采用醋酸洋紅染色,在40倍顯微鏡下觀察花粉的發(fā)育階段,選取小孢子處于單核靠邊期花藥,接種在培養(yǎng)基上。
1.2.2 培養(yǎng)基配方
誘導培養(yǎng)基:MS+0.5 mg·L-1NAA+0.5 mg·L-12,4-D+1.0 mg·L-1KT+6%蔗糖+0.7%瓊脂;分化培養(yǎng)基:MS+0.5 mg·L-1IAA+0.5 mg·L-16-BA+1.0 mg·L-1KT+3%蔗糖+0.7%瓊脂。
1.2.3 消毒與接種
將花蕾用自來水沖洗10~20 min,在超凈工作臺上,用70%的酒精滅菌30 s,0.1%的HgCl2消毒10 min,無菌水沖洗3~4次,用鑷子取出花藥接種于愈傷組織誘導培養(yǎng)基上。接種密度為每100 mL三角瓶40個,每個處理5瓶。置于25℃黑暗條件下培養(yǎng),待誘導出愈傷組織或胚狀體后,將其放于光下培養(yǎng)。光照 16 h·d-1,黑暗 8 h·d-1。
1.2.4 誘導培養(yǎng)基不同添加物的處理
1.2.4.1 硝酸銀處理
將內(nèi)薯7號和Vangal接種在誘導培養(yǎng)基中。培養(yǎng)基中分別添加10、20、30 mg·L-1的硝酸銀,以不加硝酸銀的為對照,30 d后統(tǒng)計褐化率及愈傷誘導率。
1.2.4.2 活性炭處理
將訥16和Vangal接種在誘導培養(yǎng)基中。培養(yǎng)基中分別添加0.25、0.50、0.75 g·L-1的活性炭,以不加活性炭為對照,30 d后統(tǒng)計褐化率及愈傷誘導率。
1.2.4.3 馬鈴薯提取液處理
將訥16、春薯4號、內(nèi)薯7號和波C接種在誘導培養(yǎng)基中。培養(yǎng)基中添加馬鈴薯提取液50 g·L-1,以不添加馬鈴薯提取液為對照,30 d后統(tǒng)計愈傷誘導率。
1.2.4.4 統(tǒng)計方法
褐化率(%)=褐化的花藥數(shù)/接種的花藥數(shù)×100%
愈傷組織誘導率(%)=形成愈傷組織的花藥數(shù)/接種的花藥數(shù)×100%
1.2.5 分化培養(yǎng)基的篩選
選用內(nèi)薯7號、訥16、波C和春薯4號的愈傷組織為試驗材料,轉(zhuǎn)入以下4種分化培養(yǎng)基。每個處理5瓶,置于光下培養(yǎng),調(diào)查愈傷組織分化情況。
分化培養(yǎng)基如下:
A:MS+0.5 mg·L-1IAA+0.5 mg·L-16-BA+1.0 mg·L-1KT+3%蔗糖+0.7%瓊脂
B:MS+0.5 mg·L-1NAA+0.5 mg·L-16-BA+1.0 mg·L-1KT+3%蔗糖+0.7%瓊脂
C:MS+0.5 mg·L-1NAA+0.5 mg·L-16-BA+0.5 mg·L-1KT+3%蔗糖+0.7%瓊脂
D:MS+0.5 mg·L-1NAA+1.0 mg·L-16-BA+1.0 mg·L-1KT+3%蔗糖+0.7%瓊脂
1.2.6 再生植株根尖染色體倍性鑒定
再生植株在生根培養(yǎng)基(MS+0.5 mg·L-1NAA)中誘導生根,根長約1 cm時,7:00~8:00 am剪取根,洗去根上殘存的培養(yǎng)基,置于冰水混合物中預處理24 h,用固定液(95%乙醇:冰乙酸=3:1)固定24 h,取出根用蒸餾水沖洗3~4遍,用醋酸洋紅染色后制片,在100倍光學顯微鏡下觀察染色體數(shù)目。
培養(yǎng)基中加入適量的硝酸銀有助于減輕花藥的褐化程度。由表1可知,隨著硝酸銀濃度的增加,花藥的褐化率呈逐漸下降趨勢,各處理間差異顯著。內(nèi)薯7號和Vangal的變化趨勢基本一致,硝酸銀濃度從10 mg·L-1增加到30 mg·L-1時,褐化率分別從77.5%和89.5%分別降到67%和71%,且均低于對照。
試驗材料內(nèi)薯7號和Vangal,隨著硝酸銀濃度的增加,愈傷組織誘導率呈先升后降趨勢。當硝酸銀濃度為20 mg·L-1時愈傷組織誘導率達到最大值,分別為10.5%和8.0%,與10、30 mg·L-1及對照相比差異顯著。當硝酸銀濃度增加到30 mg·L-1時,愈傷組織誘導率分別降到7.0%和3.5%,仍高于對照,但差異不顯著。
表1 硝酸銀對花藥褐化率及愈傷組織誘導率的影響Table 1 Effect of silver nitrate on anther browning rate and callus induction rate
由表2可知,訥16和Vangal在加入活性炭的培養(yǎng)基中褐化率均顯著低于對照。隨著活性炭濃度的增加,花藥褐化率逐漸降低。其中訥16的褐化率從80%降到75%,Vangal從90%降到84%。
當活性炭濃度為0.50 g·L-1時,愈傷組織誘導率最高,訥16從原來的4.5%提高到11%,Vangal從原來的3.0%提高到8.0%,但當活性炭濃度增加到0.75g·L-1時,愈傷組織誘導率又分別降到7.5%和2.0%。Vangal的降幅較大,誘導率低于對照(見表 2)。
表2 活性炭對花藥褐化率及愈傷組織誘導率的影響Table 2 Effect of active carbon on anther browning rate and callus induction rate
由圖1可知,訥16、春薯4號、內(nèi)薯7號、波C這4份材料的愈傷組織誘導率均高于對照。其中波C的增幅較大,從0.5%提高到2.5%,提取液對其他3份材料的促進作用也非常明顯。因此,培養(yǎng)基中加入適量的馬鈴薯提取液能促進愈傷組織的誘導。
利用新復極差法,對各培養(yǎng)基的出苗率在0.05水平下進行多重比較。由表3可知,愈傷組織在分化培養(yǎng)基A、B、C、D中均分化出苗,但各培養(yǎng)基間差異顯著,出苗率大小為:A>B>D>C。培養(yǎng)基A的出苗率最高達15%,培養(yǎng)基C的出苗率最低為1.3%。
表3 不同的培養(yǎng)基對花藥愈傷組織分化的影響Table 3 Effect of different culture media on differentiation of callus
利用根尖染色體計數(shù)法對所獲得的23株再生植株進行倍性鑒定。
由表4可知,雙單倍體植株(2n=24)15株,發(fā)生率為65.2%,三倍體植株(2n=36)3株,占總數(shù)的13%,四倍體5株,占21.7%。
表4 花藥再生植株的倍性Table 4 Ploidy of anther regenerated plants
適量的培養(yǎng)基添加物有利于馬鈴薯花藥培養(yǎng)。在培養(yǎng)基中加入20 mg·L-1硝酸銀花藥愈傷誘導率最高,褐化率明顯降低;培養(yǎng)基中添加活性炭濃度為0.5 g·L-1時,效果最佳;添加5%的馬鈴薯提取液有利于馬鈴薯花藥誘導。
許多研究表明,在一定濃度范圍內(nèi),硝酸銀能促進單子葉及雙子葉植物愈傷組織的誘導及植株再生[6-12]。硝酸銀能夠促進愈傷組織產(chǎn)生的主要原因是硝酸銀能夠抑制乙稀的產(chǎn)生,延緩花藥褐化衰變所致。肖莉杰等認為硝酸銀在玉米愈傷組織的誘導及其質(zhì)量的提高方面有一定的作用[13]。張淑紅等發(fā)現(xiàn),硝酸銀可抑制馬鈴薯葉肉原生質(zhì)體的褐化,從而提高其細胞分裂頻率[14]。雖然硝酸銀對愈傷組織的誘導和分化有促進作用,但高濃度對植物細胞的生理代謝造成毒害,并導致畸形芽的形成。本研究表明,在一定的濃度范圍內(nèi),硝酸銀不僅可以促進愈傷組織的誘導還可防止褐化,這與前人的研究結(jié)果一致[13,15]。
眾所周知,活性炭能吸附培養(yǎng)基中的有害物質(zhì),但只是在一定的濃度范圍內(nèi)有促進作用,當超過一定量時,反而抑制愈傷組織的形成。這是由于活性炭的吸收作用無選擇性,在吸附培養(yǎng)基中有毒物質(zhì)的同時,也吸附培養(yǎng)基中的生長調(diào)節(jié)劑、鐵鹽、維生素等與花藥培養(yǎng)密切相關(guān)的物質(zhì),可能對花藥培養(yǎng)有抑制作用[16-18]。本試驗活性炭的濃度在0.25~0.50 g·L-1范圍內(nèi)有利于馬鈴薯花藥培養(yǎng)。
利用天然植物提取液和多種類植物生長激素及生長物質(zhì),如月光花素、落地生根汁液、雜交稻根提取液和水稻幼穗汁液等,以提高水稻花粉植株誘導率和綠苗分化頻率[19-20]。據(jù)報道,馬鈴薯提取液可大幅度提高植物花藥培養(yǎng)時愈傷組織及胚狀體的誘導率。戴朝曦研究證明5%的馬鈴薯提取液可明顯提高愈傷組織的誘導率[21]。本試驗結(jié)果與其一致,在誘導培養(yǎng)基中加入5%的馬鈴薯提取液有利于花藥培養(yǎng)。
染色體計數(shù)法是確定倍性最基本和最可靠的方法。在單倍體育種中,通過花藥培養(yǎng)、花粉培養(yǎng)及孤雌生殖等方法獲得的再生植株一般是單倍體、雙單倍體及其他倍性植株的混合群體。本試驗利用根尖染色體計數(shù)法對獲得的馬鈴薯再生植株進行了倍性鑒定,明確了各植株倍性。
[1]盧翠華,邸宏,張麗莉.馬鈴薯組織培養(yǎng)原理與技術(shù)[M].北京∶中國農(nóng)業(yè)科學技術(shù)出版社,2009∶143.
[2]金黎平,楊宏福.馬鈴薯雙單倍體的產(chǎn)生及其在遺傳育種中的應用[J].馬鈴薯雜志,1996,10(3)∶181-186.
[3]梁彥濤,邸宏,盧翠華,等.馬鈴薯花藥培養(yǎng)影響因素的研究[J].東北農(nóng)業(yè)大學學報,2006,37(5)∶604-609.
[4]姜麗靜,盧翠華,石瑛,等.溫度對馬鈴薯花藥愈傷誘導率的影響[J].中國馬鈴薯,2008,22(2)∶88-90.
[5]劉輝,盧翠華,邸宏,等.甘露醇預處理對馬鈴薯花藥愈傷誘導率和褐化率的影響[J].中國馬鈴薯,2009,23(1)∶19-21.
[6]張鵬,傅愛根,王愛國.AgNO3在植物離體培養(yǎng)中的作用及可能的機制[J].植物生理學通訊,1997,33(5)∶376-379.
[7]Songstad D D,Duncan D R,Widholm J M.Effect of laminocyclopropane carboxylic acid,silver nitrate and morbornadiene on plant regeneration[J].Plant Cell Rep,1988(7)∶262.
[8]張鵬,凌定厚.提高菜心離體植株再生頻率的研究[J].植物學報,1995,37(11)∶902.
[9]Chraibi K M,Latche A,Roustan J P,et al.Stimulation of shoot regeneration from cotyledons of Helianthus annuns by ethylene inhibitors silver and cobalt[J].Plant Cell Rep,1991(10)∶204.
[10]Marlon L,Browse J.Fascile transformation of Arabidopsis[J].Plant Cell Rep,1991(10)∶204.
[11]孫紅煒,尚佑芬,楊崇良,等.影響玉米愈傷組織誘導和植株再生的有關(guān)因素研究[J].山東農(nóng)業(yè)科學,2002,19(6)∶30-31.
[12]祝紅藝,張顯,崔維紅.提高非洲菊試管苗葉片再生頻率的研究[J].西北農(nóng)業(yè)學報,2006,15(5)∶233-235.
[13]肖莉杰,蒼晶,徐仲,等.黑龍江省骨干玉米自交系愈傷組織的誘導及植株再生[J].東北農(nóng)業(yè)大學學報,2003,34(1)∶63-67.
[14]張淑紅,王蒂,王清.影響馬鈴薯葉肉原生質(zhì)體褐化的因素及AgNO3對其褐化和分裂的作用[J].中國馬鈴薯,2004,18(2)∶77-81.
[15]趙巧陽,賴鐘雄.硝酸銀在離體培養(yǎng)和轉(zhuǎn)化中的作用及其機理[J].亞熱帶農(nóng)業(yè)研究,2008,4(1)∶62-66.
[16]卜學賢,陳維倫.活性炭對培養(yǎng)基中生長調(diào)節(jié)物質(zhì)的吸附作用[J].植物生理學報,1988,14(4)∶401.
[17]劉用生,殷桂勤,汪濤.GA3、6-BA、IBA與活性炭對李胚萌發(fā)及幼苗生長的影響[J].植物生理學通訊,1993,29(1)∶32.
[18]Ebert A,Taylor H F,Assessment of the changes of 2,4-D concentration in plant tissue media in presence of AC[J].Plant Cell Tissue and Organ Culture Plant Cell Rep,1990,20(3)∶165.
[19]王再生.月光花素對水稻花粉愈傷組織分化綠苗的影響[C].花藥培養(yǎng)學術(shù)討論會文集,1977∶271.
[20]黃斌.雜交水稻根提取液對誘導花粉愈傷組織和形成綠苗的影響[C].花藥培養(yǎng)學術(shù)討論會文集,1977∶271.
[21]戴朝曦.用花藥培養(yǎng)法誘導馬鈴薯產(chǎn)生雙單倍體植株的研究[J].科學通報,1982(24)∶1529-1532.