黃艷君 張中念 羅 勇
1)四川綿陽市第三人民醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科 綿陽 621000 2)重慶醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科 重慶 400016 3)重慶市神經(jīng)病學(xué)重點實驗室 重慶 400016
腦血管病以其高發(fā)病率和高致殘率成為當(dāng)前嚴(yán)重威脅人類健康的一類重要疾病,其中尤以缺血性腦血管病最為常見。研究表明電刺激小腦頂核(fastigial nucleus stimulation,F(xiàn)NS)可產(chǎn)生較為廣泛的神經(jīng)保護作用。神經(jīng)營養(yǎng)因子與中樞神經(jīng)系統(tǒng)的恢復(fù)密切相關(guān),對神經(jīng)再生、神經(jīng)元遷移、軸突的發(fā)芽、延長和成束以及神經(jīng)環(huán)路的正確形成起著重要作用。本文觀察了局灶腦缺血再灌注大鼠腦內(nèi)側(cè)腦室和海馬堿性成纖維細胞生長因子(basic fibroblast growth factor,bFGF)mRNA的動態(tài)變化以及FNS后的影響,以初步探討FNS對受損腦組織功能重建的作用。
1.1 材料 選取健康雄性的Wistar大鼠180只,清潔級,8周齡,體質(zhì)量250~300g,由重慶醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心提供。大鼠術(shù)前12h禁食不禁水。主要試劑與儀器:針對大鼠bFGF靶基因的 mRNA序列的寡核甘酸探針:(1)5’-GGCTT CTTCC TGCGC ATCCA CCCCG ACGGC-3’;(2)5’-AGCAG AAGAG AGAGG AGTTG TGTCT ATCAA-3’;(3)5’-TGGAA TCTAA TAACT ACAAT ACTTA CCGGT-3’(探針由武漢博士德生物技術(shù)有限公司設(shè)計合成并用地高辛標(biāo)記)。原位雜交試劑盒和原位雜交專用蓋玻片(武 漢 博 士 德);DEPC 和 Poly-L-Lysine (Sigma(USA));DAB顯色劑(北京中山);立體定位儀,SEN 3301型方波脈沖電子刺激器(日本光電公司);電動恒流泵(上海精科實業(yè)有限公司)。
1.2 方法 大鼠大腦中動脈局灶腦缺血再灌注模型制備:根據(jù)Longa等[1]報道的方法,參照羅勇等[2]的經(jīng)驗,采用線栓法規(guī)范化制備右側(cè)大腦中動脈局灶腦缺血再灌注模型。模型成功標(biāo)準(zhǔn):左側(cè)肢體疼痛回縮遲鈍或消失,提尾倒懸時左上肢向胸前屈曲,行走時向左側(cè)傾倒或向左轉(zhuǎn)圈;右側(cè)出現(xiàn)霍納(Honer’s)氏征。排除標(biāo)準(zhǔn):神經(jīng)學(xué)癥狀評分低于2分者,蛛網(wǎng)膜下腔出血者,HE染色無缺血病理改變者,未到觀察時相點便死亡者。凡因上述因素導(dǎo)致各實驗組動物數(shù)不足預(yù)定數(shù)量者采用隨機抽樣原則補齊。
分組及干預(yù):雄性 Wistar大鼠隨機分為正常組(NC組)、假手術(shù)組(SC組)、模型組(I/R組)、小腦頂核假刺激組(I/RFs組)、小腦頂核刺激組(I/RF組),每組根據(jù)再灌注時間的不同又分為1d,3d,7d,14d,21d,28d6個時間點進行觀察(n=6)。均于缺血1h后行再灌注,并于再灌注后立即刺激左側(cè)小腦頂核1h。I/RF組大鼠給予電刺激小腦頂核:大鼠用3.5%水合氯醛腹腔注射(1mL/100g)麻醉,固定于立體定向儀上,參照Nakai[3]的方法,根據(jù) Wistar大鼠腦立體定向圖譜,結(jié)合鼠的大小確定左側(cè)小腦頂核位置,將同心圓電極插入左側(cè)小腦頂核(病灶對側(cè))進行刺激。I/RFs組操作同I/RF組,電極插入小腦頂核但不通電流刺激,只留針1h。
1.2.1 神經(jīng)功能評分:參照Zea Longa 5分制評分標(biāo)準(zhǔn)[1],大鼠清醒后評分。所有動物于腦缺血再灌注后1h,6h,12 h,1d,3d,7d進行評定。固定、取材、切片:于腦缺血再灌注后1d,3d,7d,14d,21d,28d,經(jīng)左心室常規(guī)灌注固定,開顱取腦,由前向后作冠狀切片,取經(jīng)側(cè)腦室(包含室管膜下區(qū))及海馬中心腦組織塊各1塊,行固定、脫水、浸蠟、包埋、石蠟切片(片厚4μm)。取材部位:側(cè)腦室(AP前囟-0.30至前囟-1.2mm),海馬(AP前囟-3.14至前囟-4.5mm)。
1.2.2 原位雜交檢測側(cè)腦室和海馬bFGF mRNA表達:按試劑盒說明進行。陰性對照用預(yù)雜交液代替雜交液,用正常羊血清代替地高辛抗體,其余步驟相同。1.2.3 圖像分析及統(tǒng)計學(xué)處理:切片在統(tǒng)一放大倍數(shù)(×200)下,隨機選擇10個非重疊視野,每只動物的每個部位隨機取5張非連續(xù)切片,應(yīng)用重慶醫(yī)科大學(xué)電鏡室北航CM-2000B型生物醫(yī)學(xué)圖像分析系統(tǒng),檢測陽性細胞的平均光密度值。
2.1 側(cè)腦室區(qū)域 NC組側(cè)腦室室管膜及室管膜下區(qū)可見少量bFGF mRNA的陽性表達。局灶腦缺血/再灌注后1d,I/R組缺血側(cè)側(cè)腦室區(qū)域bFGF mRNA表達略有增加(P<0.05),3d時達一小高峰(P<0.01),且外側(cè)壁陽性細胞較內(nèi)側(cè)壁多,在背外側(cè)有一些陽性細胞聚集,沿胼胝體下緣向缺血區(qū)方向延伸,由內(nèi)向外細胞數(shù)逐漸減少,7d開始下降(P<0.01),28d時下降到略高于正常水平(P<0.05),I/RFS組與I/R組變化相似,比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。局灶腦缺血/再灌注后再給予FNS,I/RF組1d時bFGF mRNA即明顯增加(P<0.01),3d時增加更明顯(P<0.01),7 d才達到高峰(P<0.01),且在外側(cè)壁,陽性細胞聚集形成長尾狀陽性細胞鏈,沿胼胝體下緣向缺血區(qū)方向延伸,而且由內(nèi)向外細胞數(shù)逐漸減少,14d后緩慢下降,與I/R組和I/RFS組相比,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)(表1)。
表1 各實驗組側(cè)腦室區(qū)bFGF mRNA的表達水平(光密度)
2.2 海馬區(qū)域 正常海馬區(qū)可見少量bFGF mRNA的陽性表達,主要位于海馬錐體細胞層、CA1、CA2區(qū)。局灶腦缺血/再灌注后,I/R組缺血側(cè)海馬可見bFGF mRNA的強陽性表達,1d時開始增加(P<0.05),3d即達一小高峰(P<0.01),7d開始下降,21d時明顯下降,28d時降到正常水平(P<0.05),與NC組和SC組對應(yīng)時間點比較,差異有顯著性(P<0.05),I/RFS組與I/R組變化相似,比較無差異(P>0.05)。局灶腦缺血/再灌注后再給予FNS,缺血側(cè)海馬bFGFmRNA的表達更加強烈,1d時明顯增加(P<0.01),3 d后bFGFmRNA繼續(xù)升高(P<0.01),到7d時才達高峰(P<0.01),峰值更高,14d時緩慢下降(P<0.01)。I/RF組與I/R組和I/RFS組相比,bFGF mRNA的表達在各對應(yīng)時相點都有增加,差異有顯著性(P<0.05)(表2)。
表2 各實驗組海馬區(qū)bFGF mRNA的表達水平(光密度)
神經(jīng)營養(yǎng)因子是神經(jīng)系統(tǒng)重要的生物活性因子,對神經(jīng)系統(tǒng)的正常分化、發(fā)育、成熟、維持功能和存活、損傷修復(fù)等均具有重要的生物學(xué)作用。bFGF是FGF基因家族中主要成員之一。它是一種具有強烈促增殖效應(yīng)的多肽因子,也是內(nèi)皮細胞的有絲分裂原和血管再生因子,在神經(jīng)系統(tǒng)的分化、發(fā)育和成熟過程中具有重要作用[4-5]。
正常情況下,腦內(nèi)僅有少量bFGF表達,當(dāng)腦受到各種損害時,即可誘導(dǎo)bFGF表達增加。近年來腦缺血再灌注動物模型研究表明,腦缺血再灌注可引起內(nèi)源性bFGF mRNA表達增加,并對神經(jīng)細胞具有保護、修復(fù)作用和抗細胞凋亡作用。本實驗觀察到,正常側(cè)腦室室管膜及室管膜下、海馬錐體細胞層、CA1、CA2區(qū)可見少量bFGF mRNA的陽性表達,局灶腦缺血/再灌注后1d,I/R組缺血側(cè)側(cè)腦室區(qū)域bFGF mRNA表達略有增加,3d時達一小高峰,且外側(cè)壁陽性細胞較內(nèi)側(cè)壁多,在背外側(cè)有一些陽性細胞聚集,沿胼胝體下緣向缺血區(qū)方向延伸,由內(nèi)向外細胞數(shù)逐漸減少,7d開始下降;在海馬區(qū)域,局灶腦缺血/再灌注后,I/R組缺血側(cè)海馬可見bFGF mRNA的強陽性表達,1d時開始增加,3d即達一小高峰,7d開始下降。國外研究顯示,缺血6h后即出現(xiàn)bFGF基因表達增高,于24h達到最高峰,1周左右降至對照組水平,2周后又呈現(xiàn)逐漸升高趨勢。與我們的結(jié)果不完全一致,可能與動物種類、動物模型等的不同選擇有關(guān)[6-7]。Hsu[8]等指出,腦缺血可能通過刺激即早基因,如cfos、c-jun等基因表達,進而從轉(zhuǎn)錄水平上誘導(dǎo)包括 NGF、BDNF在內(nèi)的神經(jīng)營養(yǎng)因子等晚期效應(yīng)器基因表達。
近年來研究發(fā)現(xiàn),F(xiàn)NS可產(chǎn)生較為廣泛、持久的神經(jīng)保護作用。FNS后大腦皮質(zhì)局部腦血流的增加可達對照組的300%,而不伴腦組織糖代謝率的改變[9];預(yù)先FNS 1h,可使腦梗死體積縮小約50%,產(chǎn)生的腦保護作用可持續(xù)10d以上;其縮小腦梗死體積的效果是特異性的,刺激其他腦區(qū)則不能減輕腦缺血損害[10]。本實驗觀察到局灶腦缺血/再灌注后再給予FNS,I/RF組1d時bFGF mRNA即明顯增加,3d時增加更明顯,7d才達到高峰,且在外側(cè)壁,陽性細胞聚集形成長尾狀陽性細胞鏈,沿胼胝體下緣向缺血區(qū)方向延伸,而且由內(nèi)向外細胞數(shù)逐漸減少;而在缺血側(cè)海馬,局灶腦缺血/再灌注后再給予FNS,bFGFmRNA的表達更加強烈,到7d時才達高峰,峰值更高,14d時緩慢下降。I/RF組與I/R組和I/RFS組相比,bFGF mRNA的表達在各對應(yīng)時相點都有增加,提示FNS后側(cè)腦室和海馬bFGFmRNA的反應(yīng)強烈。研究發(fā)現(xiàn),F(xiàn)NS1h可抑制線粒體釋放細胞色素C,減輕Ca2+超載,可促進同側(cè)梗塞皮質(zhì)表達解偶聯(lián)蛋白UCP4及 UCP4mRNA,從而維持缺血后線粒體的功能[11-14]。國內(nèi)基礎(chǔ)研究發(fā)現(xiàn),F(xiàn)NS可促進腦缺血后毛細血管新生和神經(jīng)組織的結(jié)構(gòu)重建;增加腦血供[15-16]。bFGF是一種具有多種生物活性的神經(jīng)營養(yǎng)因子,其與相關(guān)聯(lián)的受體結(jié)合導(dǎo)致廣泛的細胞反應(yīng),包括細胞增殖和分化、血管形成和抑制凋亡等[17]。研究表明,腦缺血后神經(jīng)營養(yǎng)因子可在一定時間內(nèi)表達上調(diào),而神經(jīng)營養(yǎng)因子又是神經(jīng)干細胞增殖、遷移、分化、網(wǎng)絡(luò)化的重要因素。FNS可能通過以上途徑抑制了腦缺血過程中神經(jīng)細胞凋亡,有利于細胞存活,改善了神經(jīng)功能,但其確切的分子機制有待進一步研究。
[1]Longa EZ,Weinstein PR,Carlson S,et al.Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats[J].Stroke,1989,20(1):84-91.
[2]Luo Yong,Dong Weiwei.An experimental study on focal cerebral ischemia/reperfusion model in Wistar rats with suture method[J].Journal of Chongqing Medical University,2002,27(1):1-4.
[3]Nakai M,Iadecola C,Ruggiero DA,et al.Electrical stimulation of cerebellar fastigial nucleus increases cerebral cortical blood flow without change in local metabolism:evidence for an intrinsic system in brain for primary vasodi-lation[J].Brain Res,1983,260(1):35-49.
[4]Eckenstein FP.Fibroblast growth factors in the nervous sys-tem[J].J Neurobiol,1994,25(11):1 467-1 480.
[5]Powell PP,F(xiàn)inklestein SP,Dionne CA,et al.Temporal,differential and regional expression of mRNA for basic fibroblast growth factor in the developing and adult rat brain[J].Brain Res Mol Brain Res,1991,11(1):71-77.
[6]Speliotes EK,Caday CG,Do T,et al.Increased expression of basic fibroblast growth factor(bFGF)following focal cerebral infarction in the rat[J].Brain Res Mol Brain Res,1996,39(1/2):31-42.
[7]Endoh M,Pulsinelli WA,Wagner JA.Transient global ischemia induces dynamic changes in the expression of bFGF and the FGF receptor[J].Brain Res Mol Brain Res,1994,22(1/4):76-88.
[8]Hsu CY,An G,Liu JS,et al.expression of immediate early gene and growth factor mRNAs in a focal cerebral ischemic modal in the rat[J].Stroke,1993,24(SuppleⅠ):78.
[9]Reis DJ,Berger SB,Underwood MD,et al.Electrical stimulation of cerebellar fastigial nucleus reduces ischemic infarction elicited by middle cerebral artery occlusion in rat[J].J Cereb Blood Flow Metab,1991,11(5):810-818.
[10]Reis DG,Golanov EV,Galea E,et al.Central neurogenic neuroprotection:central neural systems that protect the brain from hypoxia and ischemia[J].Ann NY Acad Sci,1997,835(1):168-186.
[11]Golanov EV,Liu F,Reis DJ.Stimulation of cerebellum protects hippocampal neurons from global ischemia[J].Neuroreport,1998,9(5):819-824.
[12]Zhou P,Qian L,Glickstein SB,et al.Electrical stimulation of cerebellar fastigial nucleus protects rat brain,in vitro,from staurosporine-induced apoptosis[J].J Neurochem,2001,79(2):328-338.
[13]Zhou P,Qian L,Zhou T,et al.Mitochondria are involved in the neurogenic neuroprotection conferred by stimulation of cerebellar fastigial nucleus[J].J Neurochem,2005,95(1):221-229.
[14]Shant J,Shiflett JM,Chen B,et al.Neuroprotective stimulation of the cerebellar fastigial nucleus modifies expression of uncoupling protein 4[J].Stroke,2005,36(2):433-434.
[15]石正洪,董為偉 .電刺激小腦頂核促腦缺血后毛細血管新生的實驗研究[J].中風(fēng)與神經(jīng)疾病雜志,2003,20(3):250-252.
[16]代瑞廷,曹艷霞,張杏紅,等 .電刺激小腦頂核對急性腦梗死患者血漿CGRP的影響[J].中風(fēng)與神經(jīng)疾病雜志,2002,19(5):293-293.
[17]Jin-qiao S,Bin S,Wen-h(huán)ao Z.Basic fibroblast growth factor stimulates the proliferation and differentiation of neural stem cells in neonatal rats after ischemic brain injury[J].Brain Dev,2009,31(5):331-340.