程立坤,徐慶陽,謝希賢,陳 寧
(工業(yè)微生物教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津科技大學(xué)生物工程學(xué)院,天津 300457)
HPLC快速測(cè)定發(fā)酵液中L–色氨酸
程立坤,徐慶陽,謝希賢,陳 寧
(工業(yè)微生物教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津科技大學(xué)生物工程學(xué)院,天津 300457)
建立一種測(cè)定發(fā)酵液中 L–色氨酸的高效液相色譜(HPLC)方法.以Agilent C18(5 μm,150.mm×4.6.mm)為分離柱,V(0.03%的KH2PO4溶液)∶V(甲醇)=90∶10為流動(dòng)相,流量為1 mL/min,在278.nm處檢測(cè)L–色氨酸.該方法簡(jiǎn)便、快速、準(zhǔn)確,在 0.000~1.000.g/L范圍內(nèi)線性關(guān)系良好(R2=0.999 9),平均回收率為 98.93%,精密度(RSD)為0.247%,可有效應(yīng)用于發(fā)酵液中L–色氨酸含量的測(cè)定.
L–色氨酸;HPLC;檢測(cè)
L–色氨酸(L-tryptophan)對(duì)人和動(dòng)物的生長(zhǎng)發(fā)育及新陳代謝起重要的作用,被稱為第二必需氨基酸,廣泛用于醫(yī)藥、食品和飼料等方面[1].目前,微生物發(fā)酵法生產(chǎn) L–色氨酸已經(jīng)走向?qū)嵱貌⑶姨幱谥鲗?dǎo)地位[2],其中微生物發(fā)酵法具有產(chǎn)酸高、成本低、質(zhì)量好等優(yōu)勢(shì),將是未來大規(guī)模生產(chǎn) L–色氨酸的首選技術(shù)[3].因此,建立一種快速且準(zhǔn)確的測(cè)定發(fā)酵液中 L–色氨酸的方法非常必要.
L–色氨酸的定性和定量測(cè)定方法有紙層析法、薄層分析法、比色法、高效液相色譜法、氨基酸分析儀測(cè)定法等[4–6].其中最常用的有對(duì)二甲胺基苯甲醛比色法和柱前衍生HPLC法.但這兩種方法操作步驟復(fù)雜,且分別以50%濃硫酸為顯色反應(yīng)介質(zhì)和用2,4–二硝基氟苯作為衍生劑,實(shí)驗(yàn)危險(xiǎn)性均很大.由于 L–色氨酸在紫外區(qū)有光吸收,因此本文建立了直接利用光電二極管陣列(DAD)檢測(cè)器在 278,nm 處測(cè)定發(fā)酵液中 L–色氨酸含量的 HPLC法,并與對(duì)二甲胺基苯甲醛比色測(cè)定法和柱前衍生HPLC法進(jìn)行了比較.
Agilent,1200型高效液相色譜儀,包括 DAD檢測(cè)器、梯度四元泵、柱溫箱、在線自動(dòng)脫氣器,數(shù)據(jù)處理由化學(xué)工作站完成.L–色氨酸、L–酪氨酸、L–苯丙氨酸,色譜純,北京索萊寶科技有限公司;甲醇,色譜純,天津市元立化工有限公司;其他試劑為分析純.
對(duì)二甲胺基苯甲醛比色法測(cè)定:見參考文獻(xiàn)[7].
2,4–二硝基氟苯衍生法測(cè)定:見參考文獻(xiàn)[8].
HPLC分析條件:色譜分離柱 Agilent C18(5,μm,150,mm×4.6,mm),流動(dòng)相 V(0.03% KH2PO4溶液)∶V(甲醇)=90∶10,流量 1.0,mL/min,柱溫 39,℃,進(jìn)樣量 20,μL,檢測(cè)波長(zhǎng) 278,nm.
標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作:見參考文獻(xiàn)[9].
樣品處理:取 1.0,mL發(fā)酵液 10,000,r/min離心5,min,取上清液稀釋適當(dāng)倍數(shù)使 L–色氨酸濃度介于測(cè)定方法的檢測(cè)線性范圍內(nèi),然后用 0.22,μm 微孔濾膜過濾,所得濾液直接進(jìn)樣測(cè)定.
L–色氨酸是含有吲哚基的中性芳香族氨基酸,在紫外區(qū)下具有光吸收.由圖 1可知,其在 225,nm 和278 nm處均有吸收峰,則在DAD檢測(cè)器中設(shè)定兩個(gè)檢測(cè)波長(zhǎng)分別為 225,nm和 278,nm.質(zhì)量濃度為0.100,g/L的L–色氨酸標(biāo)樣在兩種檢測(cè)波長(zhǎng)處的高效液相色譜圖如圖2所示.
圖1 L–色氨酸紫外吸收光譜Fig.1 UV absorption map of L-tryptophan
圖2 L–色氨酸標(biāo)準(zhǔn)品(0.100 g/L)高效液相色譜圖Fig.2 HPLC chromatograms of L-tryptophan(0.100 g/L)
由圖2可知,質(zhì)量濃度為0.100,g/L的L–色氨酸標(biāo)樣在 225,nm和 278,nm處的保留時(shí)間一致.但兩者的峰面積不同,分別為11,699.9和2,902.3,在 225 nm處檢測(cè)器的輸出信號(hào)約為 278,nm處輸出信號(hào)的4倍.由于檢測(cè)器所產(chǎn)生的信號(hào)在一定范圍內(nèi)可與被測(cè)樣品的量呈一定的函數(shù)關(guān)系,若檢測(cè)器所產(chǎn)生的信號(hào)超出一定范圍,輸出信號(hào)不能與樣品量呈一定線性關(guān)系[10],則可推斷在 278,nm 處檢測(cè) L–色氨酸比在225,nm 處的線性范圍廣.圖 2(a)和圖 2(b)中 L–色氨酸的峰面積分別占相應(yīng)色譜圖中總峰面積的99.80%和 100.00%,說明在 225 nm 處 L–色氨酸標(biāo)樣中的雜質(zhì)有光吸收,而在278,nm處僅對(duì)L–色氨酸標(biāo)樣中的 L–色氨酸有光吸收.因此,選擇 278,nm 作為檢測(cè)波長(zhǎng).
采用0.03%,KH2PO4溶液-甲醇體系作為流動(dòng)相,為確定二者之間配比,設(shè)置體積比為 85∶15、88∶12、90∶10和92∶8四個(gè)體系,實(shí)驗(yàn)結(jié)果見圖3.
圖3 不同流動(dòng)相組成體系的色譜圖Fig.3 HPLC chromatograms of different mobile phases
由圖3可知,隨著流動(dòng)相體系中甲醇組分的增加,L–色氨酸的保留時(shí)間逐漸縮短.體系a與體系b不能將 L–色氨酸與其他雜質(zhì)分開,體系 c與體系 d的分離度(Rs)分別為 2.31、1.69,則選擇體系 c作為流動(dòng)相,即 V(0.03% KH2PO4溶液)∶V(甲醇)=90∶10.
分別考察流量為 0.8,、1.0,、1.2,、1.4,mL/min 時(shí)發(fā)酵液的分離效果,由檢測(cè)結(jié)果可知,流量過小,分析時(shí)間延長(zhǎng),柱效降低,而流量過大時(shí),發(fā)酵液中物質(zhì)分離效果差,且由于壓力升高而損壞泵頭和色譜柱.綜合考慮,最終選定流量為1.0,mL/min.
柱溫對(duì)氨基酸的分離有較為明顯影響,為確定柱溫對(duì)發(fā)酵液中 L–色氨酸分離的影響.在 33、36、39、42,℃下各進(jìn)同一種樣品3次,結(jié)果見表1.由表1可知,隨著柱溫的升高,L–色氨酸和鄰近 L–色氨酸雜質(zhì)的保留時(shí)間均有所減少,同時(shí)柱效增強(qiáng);柱溫為 39,℃時(shí),分離度 Rs=2.17,兩個(gè)峰得到完全分離,因此采用柱溫為39,℃.
表1 溫度對(duì)L–色氨酸分離的影響Tab.1 Effect of temperature on chromatographic separationof L-tryptophan
由以上實(shí)驗(yàn)確定HPLC檢測(cè)L–色氨酸的色譜條件為:流動(dòng)相 V(0.03% KH2PO4溶液)∶V(甲醇)=90∶10,流量 1.0,mL/min,柱溫 39,℃,進(jìn)樣量 20,μL,檢測(cè)波長(zhǎng) 278,nm.在此條件下,HPLC 檢測(cè) L–色氨酸標(biāo)樣的色譜圖如圖 4所示.將不同質(zhì)量濃度的 L–色氨酸標(biāo)準(zhǔn)液在擬定色譜條件下進(jìn)行測(cè)定,3組平行樣取其平均值,以 L–色氨酸濃度(x)為橫坐標(biāo),峰面積(y)為縱坐標(biāo)作圖可得一標(biāo)準(zhǔn)曲線(見圖5).
圖4 L–色氨酸(0.100.g/L)標(biāo)樣的HPLC圖Fig.4 HPLC chromatograms of L-tryptophan(0.100.g/L)
圖5 HPLC測(cè)定L-色氨酸標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.5 Standard curve of L-tryptophan determination by HPLC
由圖4可見,L–色氨酸的響應(yīng)時(shí)間為6.015,min.由圖 5結(jié)果可知,在該色譜條件下 L–色氨酸質(zhì)量濃度在0.000~1.000,g/L線性關(guān)系良好.
將 0.100,g/L的 L–色氨酸標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液同濃度平行 3份,當(dāng)日重復(fù)進(jìn)樣 6次[11],峰面積 RSD 為0.247%.在已知濃度的發(fā)酵液中分別加入一定量的L–色氨酸對(duì)照溶液進(jìn)行回收率實(shí)驗(yàn),每個(gè)濃度設(shè)3個(gè)平行,具體添加量及結(jié)果見表 2,計(jì)算得出其相對(duì)回收率為98.93%.
表2 L–色氨酸檢測(cè)的回收率結(jié)果Tab.2 Results obtained in the recovery test of L-tryptophan
圖6是L–色氨酸發(fā)酵液HPLC測(cè)定色譜圖.
圖6 L–色氨酸發(fā)酵液HPLC測(cè)定色譜圖Fig.6 Chromatograms of L-tryptophan fermentation
由圖 6可知,色譜柱柱效較高,發(fā)酵液樣品中某些其他發(fā)酵成分能被檢測(cè)到且分離效果良好.與標(biāo)準(zhǔn)曲線對(duì)照測(cè)得的發(fā)酵液中 L–色氨酸含量為32.8,g/L,這與對(duì)二甲胺基苯甲醛比色法、2,4–二硝基氟苯衍生測(cè)定法測(cè)得的 L–色氨酸含量相一致,從而證明該方法可以準(zhǔn)確地檢測(cè)發(fā)酵液中 L–色氨酸的含量.由表 3可知,該方法與對(duì)二甲胺基苯甲醛比色法、2,4–二硝基氟苯衍生測(cè)定法相比,線性關(guān)系更佳、穩(wěn)定性好、快速、危險(xiǎn)性小、操作步驟簡(jiǎn)單,且線性范圍可達(dá)0.000~1.000,g/L.
表3 L–色氨酸測(cè)定方法比較Tab.3 Comparison of determination methods for L-tryptophan
酪氨酸、苯丙氨酸與色氨酸同屬于芳香族氨基酸[12],在 278,nm 處均有光吸收,則在上述擬定色譜條件下對(duì)酪氨酸、苯丙氨酸進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果如圖 7所示.
圖7 酪氨酸與苯丙氨酸標(biāo)樣色譜圖Fig.7 HPLC chromatograms of tyrosine and phenylalanine
由圖7可知,酪氨酸與苯丙氨酸的保留時(shí)間分別為 1.982,min和 3.967,min,而色氨酸的保留時(shí)間為6.015,min,則說明酪氨酸與苯丙氨酸對(duì)發(fā)酵液中 L–色氨酸含量的測(cè)定沒有干擾,此檢測(cè)方法適用性強(qiáng).
HPLC 色譜條件:以 Agilent,C18(5,μm,150,mm×4.6,mm)為分離柱,V(0.03% KH2PO4溶液)∶V(甲醇)=90∶10為流動(dòng)相,流量為 1 mL/min,在 278 nm處 L–色氨酸可以很好地被檢測(cè)出來,保留時(shí)間為6.015 min,且酪氨酸、苯丙氨酸均對(duì)其測(cè)定沒有干擾,適用性強(qiáng).與對(duì)二甲胺基苯甲醛比色法和柱前衍生高效液相色譜法相比較,線性更佳、穩(wěn)定性好、快速、危險(xiǎn)性小、操作步驟簡(jiǎn)單,且線性范圍達(dá) 0.000~1.000,g/L,可有效應(yīng)用于發(fā)酵液中 L–色氨酸含量的測(cè)定.
[1]趙春光,程立坤,徐慶陽,等. 微生物法生產(chǎn)L–色氨酸的研究進(jìn)展[J]. 發(fā)酵科技通訊,2008,37(4):34-36.
[2]Kim H U,Kim T Y,Lee S Y. Metabolic flux analysis and metabolic engineering of microorganisms[J]. Molecular Biosystems,2008,4(2):113-120.
[3]Yanofsky C. Using studies on tryptophan metabolism to answer basic biological questions[J]. The Journal of Biological Chemistry,2003,278(13):10859-10878.
[4]侯冬巖,回瑞華. 色氨酸和酪氨酸的雙波長(zhǎng)熒光光譜的研究[J]. 分析實(shí)驗(yàn)室,2001,20(6):88-89.
[5]楊曉云,徐漢虹,王立世,等. 色氨酸、半胱氨酸和酪氨酸的高效毛細(xì)管電泳分析[J]. 分析測(cè)試學(xué)報(bào),2001,20(3):15-18.
[6]Widner B,Leblhuber F,Walli J,et al. Tryptophan degradation and immune activation in Alzheimer’s disease[J]. Neural Transm,2000,107(3):343-353.
[7]王健,陳寧,徐詠全,等. 發(fā)酵液中色氨酸含量的快速測(cè)定[J]. 食品與發(fā)酵工業(yè),2004,30(2):123-125.
[8]張昌偉,徐慶陽,劉淑云,等. 2,4–二硝基氟苯衍生法測(cè)定發(fā)酵液中組氨酸方法的優(yōu)化[J]. 現(xiàn)代化工,2007,27(2):743-745.
[9]陳立仁,蔣生祥. 高效液相色譜基礎(chǔ)與實(shí)踐[M]. 北京:科學(xué)出版社,2001:114-120.
[10]王宇成. 最新色譜分析檢測(cè)方法及應(yīng)用技術(shù)實(shí)用手冊(cè)[M]. 長(zhǎng)春:吉林出版集團(tuán),2004:205-212.
[11]饒志明,徐美娟,沈微,等. 高效液相色譜測(cè)定發(fā)酵液中1,2–二羥基丙酮(DHA)方法的建立[J]. 中國(guó)生物工程雜志,2008,28(1):61-64.
[12]Sprenger G A. Aromatic amino acids[J]. Microbiology Monographs,2007,5:93-127.
Quick Determination of L-Tryptophan in Fermented Broth by HPLC
CHENG Li-kun,XU Qing-yang,XIE Xi-xian,CHEN Ning
(Key Laboratory of Industrial Microbiology,Ministry of Education,College of Biotechnology,Tianjin University of Science & Technology,Tianjin 300457,China)
A method to determine L-tryptophan in fermented broth was developed by high performance liquid chromatography(HPLC). An Agilent C18(5 μm,150 mm×4.6 mm)was used with the mobile phase of 0.03% KH2PO4water solution and methanol(the ratio of volume was 90 to 10). The flow rate was at 1.0 mL/min and the detective wavelength was 278 nm. The method was rapid,accurate and simple with a good linearity(R2=0.999 9)in the range of 0.000 to 1.000 g/L for L-tryptophan. The average recovery was 98.93% with the relative standard deviation of 0.247%. The method was applicable for L-tryptophan determination in the fermented broth.
L-tryptophan;HPLC;determination
TQ922
A
1672-6510(2010)01-0009-04
2009-07-03;
2009-10-13
國(guó)家“重大新藥創(chuàng)制”科技重大專項(xiàng)課題(2008ZX09401-05);國(guó)家“十一五”科技支撐計(jì)劃重點(diǎn)項(xiàng)目(2008BAI63B01)
程立坤(1984—),男,山東濱州人,碩士研究生;通信作者:陳 寧,教授,ningch@tust.edu.cn.
天津科技大學(xué)學(xué)報(bào)2010年1期