Abstract:Tofurtheroptimizethemicroenvironmentparametersofsugar-free tisseculture,this studyused Qingshu No.9 as the tst material and designed different gradient experiments with diferentratiosof vermiculite to nutrient solution ( Vvermiculite : 1 Vnutrientsolution=1.0:0.7,Vvemiculie:Vnutrientsolution=1.0:0.8 mtriensoution =1.0:0.9),COconcentrtions(500 μmol/mol, 800μmol/mol , 1100μmol/mol , 1 400μmol/mol ),and light intensities to investigate the effectsof each treatment
onthe growth and development of potato tissue-cultured seedlings.Thelight intensitywasset at 50μmol/(m2?s) 75μmol/(m2?s) , 100μmol/(μ2?s). The results showed that the optimal conditions for sugar-free tissue culture of potatoes were as follows : , CO2 concentration of 800μmol/mol ,and light intensityof75 μmol/(m2?s). Compared with traditional tissue culture,the yield,quantity,and survival rate of potato pre-basic seeds obtained through sugar-free tissue culture were significantly increased by 16.09% , 22.37% ,and 3.27% ,respectively( Plt;
0.O5).Inconclusion,thisstudynotonlyclarifidthekeytechnicalparametersofsugar-freetissueculturebutalsoonfimedthe advantagesoftistechologyinimprovingteproductionefiencyofpotatoseedtubers,providingteoreticalbasisadtecal support for the standardized production and industrial propagationof potato tissue-cultured seedlings.
Key words:sugar-free tissue culture;potato;tissue-cultured seedlings
植物無糖組織培養(yǎng)技術(shù)由日本千葉大學(xué)古在豐樹教授發(fā)明[1],其技術(shù)核心在于通過精確控制微環(huán)境因素(如 CO2 濃度、溫度、濕度等),以環(huán)境 CO2 替代培養(yǎng)基中添加的外源糖作為碳源,實現(xiàn)植物完全自養(yǎng)生長。這種自養(yǎng)生長方式不僅能顯著提高植物的生長速率和生物量,還能有效降低培養(yǎng)過程中的微生物污染風(fēng)險,適用于大規(guī)模植物組織培養(yǎng)[2-5]
近年來,無糖組織培養(yǎng)技術(shù)已被廣泛應(yīng)用于園藝作物及藥用植物的快速繁殖。已有研究人員對草莓[6]、楸樹[7]、甘薯[8]、地黃[9]、半夏[10]等植物在無糖培養(yǎng)條件下的培養(yǎng)基配方、光照時長、通氣時間、CO2 濃度和光照度等關(guān)鍵因素進(jìn)行系統(tǒng)探究。Chen等[]利用轉(zhuǎn)基因測序技術(shù)揭示了無糖培養(yǎng)促進(jìn)馬鈴薯試管苗光合作用和生長發(fā)育的機(jī)理。盡管無糖組織培養(yǎng)技術(shù)已在馬鈴薯組培苗的生產(chǎn)與擴(kuò)繁中初步應(yīng)用,但其培養(yǎng)過程中的 CO2 濃度、光照度、最佳通氣量等核心參數(shù)仍需進(jìn)一步優(yōu)化[12-16]
本研究擬引入強(qiáng)制換氣裝置系統(tǒng),精準(zhǔn)控制環(huán)境條件,并利用外源 CO2 替代糖分作為碳源,旨在縮短馬鈴薯種薯繁育周期,降低生產(chǎn)成本,同時提高組培苗的質(zhì)量與生產(chǎn)效率,最終實現(xiàn)馬鈴薯的高效生產(chǎn)。
1 材料與方法
1.1 試驗材料
供試材料為青薯9號脫毒組培苗,由市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院提供。
無糖組織快繁裝置由上海離草科技有限公司生產(chǎn)。無糖組織培養(yǎng)所用培養(yǎng)盒尺寸為 25cm× 20cm×8cm (長 × 寬 × 高),傳統(tǒng)組織培養(yǎng)所用培養(yǎng)盒尺寸為 6.35cm×6.35cm×9.15cm (長 × 寬 × 高)。M519培養(yǎng)基和M524培養(yǎng)基為PhytoTechnologyLa-boratories公司產(chǎn)品,蔗糖、瓊脂均為國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司產(chǎn)品。
含糖培養(yǎng)基:所用營養(yǎng)液為M519培養(yǎng)基(不含維生素) +4.0% 蔗糖,基質(zhì)為瓊脂( 7g/L ,培養(yǎng)基 pH 值為 15.8~6.0 ,培養(yǎng)基經(jīng)高溫高壓滅菌。無糖培養(yǎng)基:所用營養(yǎng)液為M524培養(yǎng)基(含維生素), pH 值為5.8~6.0,基質(zhì)為蛭石,營養(yǎng)液、蛭石經(jīng)高溫高壓滅菌。
1.2試驗設(shè)計
1.2.1無糖條件下蛭石與營養(yǎng)液配比對馬鈴薯組培苗的影響采用無糖培養(yǎng)基,設(shè)置V蛭石:V營養(yǎng)液=1.0:0.7 (M1)、 V☉E : (M2)、
個梯度的蛭石與營養(yǎng)液配比。溫度為( 22±2 ) C ,光照時間為 16h/d ,光照度為 75μmol/(m2?s) ,培養(yǎng)第5d通人1200μmol/molCO2 ,通氣時長為 8h/d 。培養(yǎng)21d后測定植株形態(tài)及生理指標(biāo)。
1.2.2無糖條件下 CO2 含量對馬鈴薯組培苗的影響根據(jù)前期預(yù)試驗結(jié)果, CO2 含量 lt;400μmol/mol 或者 gt;1 500μmol/mol 時,組培苗長勢較差。因此設(shè)置 500μmol/mol (C1) .800μmol/mol (C2)、1100μmol/mol(C3) 和 1 400μmol/mol(C4)4 個梯度的CO2 含量。溫度為( 22±2 ) C ,采用無糖培養(yǎng)基0 ,光照時間為 16h/d ,光照度為 75μmol/(m2?s) 。培養(yǎng)第5d通入 CO2 氣體,通氣時長為 8h/d 。培養(yǎng)21d后測定植株形態(tài)及生理指標(biāo)。
1.2.3無糖條件下光照度對馬鈴薯組培苗的影響
根據(jù)預(yù)試驗的結(jié)果,光照度 lt;40μmol/(m2?s) 和 時,組培苗長勢不佳。因此設(shè)置 50μmol/(m2?s) (L1)、 75μmol/(m2?s) (L2)和 100μmol/(m2?s)(L3)3 個梯度的光照度。培養(yǎng)溫度為( 22±2 ) C ,采用無糖培養(yǎng)基( V☉G :
,光照時間為 16h/d 。培養(yǎng)第5d通入 CO2 氣體,通氣時長為 8h/d 。培養(yǎng)21d后測定植株形態(tài)及生理指標(biāo)。
1.2.4無糖組織培養(yǎng)與傳統(tǒng)組織培養(yǎng)對馬鈴薯組培苗和原原種的影響無糖組織培養(yǎng)(SF)采用無糖培養(yǎng)基 ( ,培養(yǎng)溫度為( 22±2 ) C ,光照時間為 16h/d ,光照度為75μmol/(m2?s) 。第 5d 通入 CO2 氣體, CO2 含量為1 200μmol/mol ,通氣時長為 8h/d 。培養(yǎng)21d后,隨機(jī)選擇10株馬鈴薯組培苗,在自然光下煉苗 3d ,將其定植于蛭石中,用于生產(chǎn)馬鈴薯原原種。
傳統(tǒng)組織培養(yǎng)(S)采用含糖培養(yǎng)基。培養(yǎng)溫度為 (22±2 ) C ,光照時間為 16h/d ,光照度為75μmol/(m2?s) 。培養(yǎng)21d后,隨機(jī)選擇10株馬鈴薯組培苗,在自然光下煉苗3d,將其定植于蛭石中,用于生產(chǎn)馬鈴薯原原種。
定植密度為 1m2 200株,采用隨機(jī)區(qū)組設(shè)計,每種培養(yǎng)方式重復(fù)3次。
1.3 測定指標(biāo)及方法
1.3.1植株形態(tài)指標(biāo)及生理指標(biāo)測定株高:用直尺測量莖基部至植株最高點的垂直高度。莖粗:用游標(biāo)卡尺測量植株基部最粗處橫縱2個方向的直徑,并計算平均值。鮮重:組培苗洗凈擦干后,用精度為 的電子天平測定。莖節(jié)間長度:用直尺測量組培苗底部自下而上前3節(jié)的節(jié)間長度。SPAD值:采用手持便攜式葉綠素測定儀(型號SPAD-502Plus,日本Minolta公司產(chǎn)品)測定植株頂端完全展開的第3、4片葉。成活率:成活率 Σ=Σ 成活組培苗數(shù)/扦插組培苗總數(shù) ×100% 。
1.3.2原原種產(chǎn)量及數(shù)量測定收獲后按單薯重量分級統(tǒng)計產(chǎn)量及數(shù)量,分級標(biāo)準(zhǔn)為單薯重量 lt;2.0 (20 g,2.0~4.9g,5.0~9.9g,10.0~19.9g,gtrsim20.0ge (20單薯重量 ?2.0g 的馬鈴薯原原種為有效薯。
1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計及分析
使用MicrosoftExcel2007進(jìn)行數(shù)據(jù)處理和圖表繪制,使用Graphpadprism軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計分析,采用Duncan’s新復(fù)極差法進(jìn)行差異顯著性檢驗。
2 結(jié)果與分析
2.1無糖條件下蛭石與營養(yǎng)液配比對馬鈴薯組培苗的影響
如圖1所示,M2處理馬鈴薯組培苗株高最高,為 97.64mm 。M1處理和M3處理馬鈴薯組培苗株高顯著低于M2處理( Plt;0.05 )。M2處理馬鈴薯組培苗莖最粗,為 1.53mm,M1 處理和M3處理馬鈴薯組培苗莖粗顯著低于M2處理( Plt; 0.05)。各處理馬鈴薯組培苗葉片數(shù)、鮮重?zé)o顯著差異( ?Pgt;0.05) 。M3處理馬鈴薯組培苗SPAD值最高,為36.19,M1和M2處理馬鈴薯組培苗SPAD值顯著低于M3處理( Plt;0.05, 。M2處理馬鈴薯組培苗第1莖節(jié)間顯著高于M3處理( Plt; 0.05),第2莖節(jié)間長度均顯著高于M1處理和M3處理( Plt;0.05 )。表明無糖條件下,
1.0:0.8 的配比可顯著提高馬鈴薯組培苗株高、莖粗、莖節(jié)間長度和SPAD值。
2.2無糖條件下 CO2 含量對馬鈴薯組培苗的影響
如圖2所示,無糖條件下,隨著 CO2 含量的增加,馬鈴薯組培苗的株高、莖粗、葉片數(shù)、SPAD值、鮮重、莖節(jié)間長度呈先升高后降低的趨勢。C2處理馬鈴薯組培苗株高、莖粗、SPAD值均顯著高于C1處理、C3處理和C4處理( Plt;0.05 ),C2處理馬鈴薯組培苗鮮重顯著高于C3處理和C4處理( Plt; 0.05)。各處理馬鈴薯組培苗葉片數(shù)無顯著差異二 (Pgt;0.05) 。C2處理馬鈴薯組培苗第2莖節(jié)間長度顯著高于C1處理( Plt;0.05 )。C2處理馬鈴薯組培苗第3莖節(jié)間長度顯著高于C1處理、C3處理和C4處理( Plt;0.05 )。表明無糖條件下, 800μmol/mol CO2 可顯著提高馬鈴薯組培苗的株高、莖粗、SPAD值、鮮重和莖節(jié)間長度。
2.3無糖條件下光照度對馬鈴薯組培苗的影響
如圖3所示,L2處理和L3處理馬鈴薯組培苗株高分別為 85.25mm 和 84.39mm ,均顯著高于L1處理( Plt;0.05) 。L3處理馬鈴薯組培苗莖粗、葉片數(shù)分別為 1.67mm 和9.40,均顯著高于L1處理( Plt; 0.05)。L3處理馬鈴薯組培苗SPAD值最高,為53.83,L1和L2處理馬鈴薯組培苗SPAD值顯著低于L3處理( Plt;0.05) 。L2處理和L3處理馬鈴薯組培苗鮮重分別為 0.47g 和 0.52g,L1 處理馬鈴薯組培苗鮮重顯著低于L2處理和L3處理( Plt;0.05) 。各處理馬鈴薯組培苗第1、第3莖節(jié)間長度無顯著差異( ;L3處理馬鈴薯組培苗第2莖節(jié)間長度顯著低于L1和L2處理( Plt;0.05) 。由于L2處理和L3處理馬鈴薯組培苗株高、莖粗、葉片數(shù)、鮮重、第1莖節(jié)間長度、第3莖節(jié)間長度均無顯著差異( Pgt;0.05) ,考慮到降本增效,選用L2處理下的光照度
作為最佳參數(shù)。
2.4無糖組織培養(yǎng)與傳統(tǒng)組織培養(yǎng)對馬鈴薯組培苗和原原種的影響
2.4.1不同培養(yǎng)方式對馬鈴薯組培苗形態(tài)指標(biāo)和生理指標(biāo)的影響如圖4所示,SF處理馬鈴薯組培苗的株高、莖粗、鮮重和SPAD值均顯著高于S處理。SF處理馬鈴薯組培苗第1莖節(jié)間長度顯著低于S處理( Plt;0.05) ,第3莖節(jié)間長度顯著高于S處理( Plt;0.05 。表明無糖組織培養(yǎng)可顯著提高馬鈴薯組培苗的株高、莖粗、鮮重和SPAD值。
2.4.2不同培養(yǎng)方式對不同生育期馬鈴薯植株的影響如表1所示,在苗期,SF處理馬鈴薯株高、莖粗、SPAD值和地上部鮮重均顯著高于S處理。在塊莖形成期,SF處理馬鈴薯株高、莖粗、SPAD值、地上部鮮重、地下部鮮重和根冠比均顯著高于S處理0 (Plt;0.05) 。在塊莖膨大期,SF處理馬鈴薯株高、地上部鮮重、地下部鮮重均顯著高于S處理( Plt; 0.05)。在淀粉積累期,SF處理馬鈴薯株高、地上部鮮重、地下部鮮重均顯著高于S處理( Plt;0.05) 。綜上,無糖組織培養(yǎng)(SF)得到的馬鈴薯植株整體長勢優(yōu)于傳統(tǒng)組織培養(yǎng),特別是在植株生長的早期階段。
2.4.3不同培養(yǎng)方式對原原種產(chǎn)量和數(shù)量的影響如表2所示,SF處理青薯9號原原種總產(chǎn)量、結(jié)薯總數(shù)、有效薯數(shù)量、單株結(jié)薯數(shù)、單薯重量和成活率均顯著高S處理( Plt;0.05) 。如表3所示,SF處理馬鈴薯 ?20.0g 的原原種產(chǎn)量和數(shù)量顯著高于S處理(Plt;0.05) 。SF處理馬鈴薯 5.0~9.9g 的原原種產(chǎn)量和數(shù)量顯著低于S處理 (Plt;0.05) 。SF處理馬鈴薯總數(shù)和總產(chǎn)量顯著高于S處理( Plt;0.05. )。表明無糖培養(yǎng)可以顯著提高大薯數(shù)量和大薯產(chǎn)量。
2.5馬鈴薯組培苗農(nóng)藝性狀與馬鈴薯原原種產(chǎn)量構(gòu)成因素的相關(guān)性
相關(guān)性分析結(jié)果如表4所示,馬鈴薯原原種總產(chǎn)量與單薯重量呈極顯著相關(guān)( r=1.00,Plt;0.001) !與結(jié)薯總數(shù)( )、單株結(jié)薯數(shù)(
)、成活率 r=0.93 )、株高( r=0.97 )、地上部鮮重( r= 0.97)地下部鮮重( r=0.96 呈極顯著正相關(guān)( Plt; 0.01)。表明提高單株結(jié)薯數(shù)、單薯重量、成活率和株高,同時協(xié)調(diào)地上部與地下部的生長發(fā)育,是獲得馬鈴薯原原種高產(chǎn)的關(guān)鍵。
3討論
3.1無糖培養(yǎng)條件下培養(yǎng)基含水量的影響
在植物無糖培養(yǎng)體系中,蛭石因其多孔結(jié)構(gòu)而被廣泛用作支撐基質(zhì)[17-18]。這種多孔結(jié)構(gòu)可儲存充足的氧氣,能夠有效避免因水分過多導(dǎo)致的植物根系缺氧問題,還能緩釋營養(yǎng)液滿足植株對營養(yǎng)的需求[19]與傳統(tǒng)瓊脂培養(yǎng)基相比,蛭石成本更低,且蛭石具有重量輕、來源廣且便于機(jī)械化操作的特點,更適用于工業(yè)化生產(chǎn)[20]。研究結(jié)果表明,固體基質(zhì)與營養(yǎng)液的比例直接影響植株的生長,較高的固液比雖能給植株提供穩(wěn)定支撐,但可能會限制根系對養(yǎng)分的吸收,而較低的固液比雖有利于植物對水分和養(yǎng)分的吸收,卻可能影響植物根系對氧氣的吸收[2I]。本研究發(fā)現(xiàn),無糖條件下, 的配比可以顯著促進(jìn)馬鈴薯組培苗的生長。王中月等[22發(fā)現(xiàn),當(dāng)蛭石基質(zhì)含水量為 80% ,弼猴桃組培苗的生根率最大,與本研究結(jié)論一致。
3.2 CO2 濃度和光照度對馬鈴薯組培苗的影響
作為光合作用的關(guān)鍵底物, CO2 濃度直接影響植物生長。截至2024年9月,大氣 CO2 濃度低于多數(shù)植物的 CO2 飽和點[23], CO2 濃度成為限制植物光合速率和生物積累量的主要因素。 CO2 濃度過低會限制光合作用,濃度過高則可能引起氣孔關(guān)閉和氧化脅迫[24-25]。在無糖條件下,外界 CO2 濃度直接影響植物的光合作用效率。本研究發(fā)現(xiàn),隨著 CO2 含量的升高,馬鈴薯組培苗的株高、莖粗、葉片數(shù)、SPAD值、鮮重、莖第3節(jié)間長度呈先升高后降低的趨勢。當(dāng) CO2 含量為 時,馬鈴薯組培苗的株高、莖粗、SPAD值、鮮重達(dá)到最大值。表明適當(dāng)提升 CO2 濃度能夠有效促進(jìn)植物碳同化作用,提高其生長速率。不同作物對 CO2 含量的響應(yīng)存在差異,隨 CO2 含量的升高,菊花組培苗株高呈降低的趨勢,但其莖粗呈先增高后降低的趨勢[26]。半夏組培苗株高隨著 CO2 濃度的升高呈先升高后降低的趨勢,且在 CO2 含量為1 500μmol/mol 時,半夏組培苗株高達(dá)到最大值[27]。何長征等[28]對田間栽培的馬鈴薯大西洋進(jìn)行光合特性研究,發(fā)現(xiàn)當(dāng) CO2 含量低于 ≥000μmol/mol 時,葉片光合速率隨著 CO2 含量的增加而提高,另外,不同品種、植株形態(tài)的馬鈴薯CO2 飽和點存在差異。
光照是影響組培苗生長的另一關(guān)鍵因素。傳統(tǒng)植物組織培養(yǎng)過程中,馬鈴薯組培苗生長所需的光照度為 25.0~37.5μmol/(m2?s)[29.31] 。然而,本研究發(fā)現(xiàn),在無糖培養(yǎng)條件下,隨著光照度的增加,馬鈴薯組培苗的株高、莖粗、葉片數(shù)量、SPAD值以及鮮重均顯著提高。這一結(jié)果表明,適當(dāng)提高光照度能夠顯著促進(jìn)馬鈴薯組培苗的生長發(fā)育,75μmol/(m2?s) 的光照度能夠滿足馬鈴薯組培苗的光合需求,又可避免因光照度過高導(dǎo)致的能量浪費。占艷等[32]發(fā)現(xiàn),適宜的光照度能夠顯著提升半夏組培苗的光能利用效率及生長發(fā)育。本研究進(jìn)一步證實,合理調(diào)控光照度不僅能顯著提升組培苗的生物量,還能避免資源浪費和光損傷,為植物組織培養(yǎng)的光環(huán)境優(yōu)化提供了科學(xué)依據(jù)。
3.3有糖與無糖組織培養(yǎng)方式的比較
傳統(tǒng)有糖組織培養(yǎng)方式雖然能直接為組培苗提供碳源,但這種培養(yǎng)方式可能導(dǎo)致植株光合能力和代謝能力下降。相比之下,無糖組織培養(yǎng)則迫使組培苗完全依賴光合作用獲取能量,從而激發(fā)其光合潛力和自主代謝能力,形成更加健壯的植株[11,33]本研究發(fā)現(xiàn),無糖組織培養(yǎng)顯著提高了馬鈴薯組培苗株高、莖粗、葉片數(shù)、鮮重和SPAD值。已有研究結(jié)果表明,在無糖條件下,通過優(yōu)化光照度、 CO2 濃度等環(huán)境因素,能夠顯著提升植物的光合效率[34-35]。這可能是因為無糖環(huán)境改變了植株的碳代謝途徑,促使其更高效地利用外界的 CO2 進(jìn)行光合作用。無糖組織培養(yǎng)的原原種產(chǎn)量、數(shù)量和成活率均顯著高于傳統(tǒng)組織培養(yǎng),該結(jié)果與馮潔等[5]的研究結(jié)果一致。本研究首次系統(tǒng)分析了無糖組織培養(yǎng)技術(shù)在馬鈴薯組培苗生產(chǎn)中的優(yōu)勢,為其他經(jīng)濟(jì)作物的無糖組織培養(yǎng)提供了理論依據(jù)和技術(shù)參考。
4結(jié)論
本研究發(fā)現(xiàn),無糖條件下,馬鈴薯無糖組織培養(yǎng)的最適條件為 , CO2 含量
,光照度 75μmol/(m2?s) 。與傳統(tǒng)組織培養(yǎng)相比,無糖組織培養(yǎng)得到的馬鈴薯原原種的產(chǎn)量、數(shù)量和成活率分別顯著提高 16.09%.22.37% 和 3.27%(Plt;0.05) 。本研究為馬鈴薯組培苗的標(biāo)準(zhǔn)化生產(chǎn)和工廠化繁育提供了理論依據(jù)和技術(shù)支撐。
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(責(zé)任編輯:成紓寒)