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    微囊藻毒素-LR暴露對(duì)蚯蚓氧化應(yīng)激及腸道微生物的影響

    2025-04-24 00:00:00翟文花蒙家澤李彥劉白林莫測(cè)輝

    摘要:為探究微囊藻毒素-LR(Microcystin-LR,MC-LR)對(duì)土壤動(dòng)物的毒性效應(yīng),本研究采用土壤接觸實(shí)驗(yàn),利用酶活性檢測(cè)、透射電鏡與高通量測(cè)序等技術(shù),研究了不同含量MC-LR(50、150、500 μg·kg-1)污染脅迫對(duì)赤子愛勝蚓(Eisenia fetida)抗氧化防御系統(tǒng)及腸道微生物群落結(jié)構(gòu)的影響。結(jié)果表明:蚯蚓表皮肌層的損傷程度與MC-LR暴露量之間存在明顯的劑量效應(yīng)關(guān)系。高含量MC-LR處理組中,蚯蚓丙二醛(MDA)含量最高(34.5 U·g-1),纖維素酶(CL)活性最低(200.5 U·g-1)。隨著MC-LR暴露量的升高,蚯蚓總抗氧化能力(T-AOC)和谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶(GST)活性均呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢(shì)。蚯蚓腸道微生物群落結(jié)構(gòu)多樣性顯著高于周圍土壤(Plt;0.05),其中假單胞菌門(Pseudomonadota)、放線菌門(Actinobacteria)和芽孢桿菌門(Bacillota)為腸道優(yōu)勢(shì)菌群。MC-LR脅迫使得蚯蚓腸道微生物群落的遺傳信息通路和代謝通路豐度呈現(xiàn)下降趨勢(shì)。研究表明,MC-LR對(duì)蚯蚓的抗氧化系統(tǒng)產(chǎn)生明顯的脅迫效應(yīng),降低了蚯蚓腸道的消化能力及腸道微生物豐度,進(jìn)而干擾了蚯蚓正常的遺傳信息傳遞及代謝通路運(yùn)行。

    關(guān)鍵詞:微囊藻毒素;赤子愛勝蚓;毒性效應(yīng);腸道微生物;土壤污染

    中圖分類號(hào):X171.5 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A 文章編號(hào):1672-2043(2025)03-0829-10 doi:10.11654/jaes.2025-0015

    微囊藻毒素(Microcystins,MCs)是一類由藍(lán)藻(又稱藍(lán)細(xì)菌,包括微囊藻屬、顫藻屬、魚腥藻屬等)產(chǎn)生的、具有生物活性的天然環(huán)七肽化合物[1]。已報(bào)道的MCs變體多達(dá)300余種[2],其中MC-LR分布廣泛且毒性較強(qiáng),相關(guān)研究也最多[3]。MCs耐高溫、難水解且不易氧化,因此在自然環(huán)境中具有較高的穩(wěn)定性和持久性[4]。全球各類水體中普遍檢出MCs,其濃度通常超過世界衛(wèi)生組織所推薦的飲用水安全上限(1 μg·L-1),尤其在藍(lán)藻水華頻發(fā)水域其濃度甚至高達(dá)每升水體數(shù)千微克,嚴(yán)重毒害水生生態(tài)系統(tǒng)安全及人體健康[5]。水體中的MCs還可通過灌溉、藍(lán)藻堆肥和氣溶膠等途徑不斷進(jìn)入農(nóng)田土壤,對(duì)農(nóng)田生態(tài)系統(tǒng)健康與糧食安全產(chǎn)生嚴(yán)重威脅[6]。Xiang 等[7]在受藍(lán)藻水華影響的華南地區(qū)農(nóng)田土壤中檢測(cè)到MCs,其含量高達(dá)187 μg·kg-1。MCs可被植物吸收累積,抑制植物的細(xì)胞分裂、光合作用等正常生理過程,從而導(dǎo)致植物葉片黃化、生長(zhǎng)遲緩,使得植物品質(zhì)和產(chǎn)量受到嚴(yán)重影響[8]。食用受MCs 污染的植物可食用部分可能會(huì)對(duì)人類健康構(gòu)成潛在威脅[9]。對(duì)農(nóng)田土壤而言,MCs是一類“新”污染物。隨著全球氣候變暖與水體富營(yíng)養(yǎng)化程度持續(xù)加劇,藍(lán)藻水華暴發(fā)頻率與持續(xù)時(shí)間不斷上升,由此帶來的土壤MCs污染問題不容忽視。

    蚯蚓是重要的土壤生物,占土壤動(dòng)物總生物量的60%~80%[10],對(duì)土壤形成、結(jié)構(gòu)及生態(tài)服務(wù)功能具有重大影響,是反映土壤健康的生物指標(biāo)[11-12]。此外,蚯蚓腸道微生物在維持其機(jī)體新陳代謝與促進(jìn)營(yíng)養(yǎng)轉(zhuǎn)化方面發(fā)揮著重要作用[13]。蚯蚓腸道內(nèi)大部分細(xì)菌來自于其所生存的環(huán)境介質(zhì)[14],腸道獨(dú)特的微環(huán)境為厭氧/兼性厭氧菌提供了適宜的生活場(chǎng)所,致使腸道菌群與周圍環(huán)境中的菌群存在著明顯差異[13]。研究表明,蚯蚓腸道中主要營(yíng)養(yǎng)元素(如C、N、P、S等)是周邊土壤中的2~5倍,豐富的營(yíng)養(yǎng)元素有助于蚯蚓腸道菌群的繁殖和代謝活動(dòng),進(jìn)而有利于對(duì)污染物(包括除草劑、微塑料及抗生素等)的降解[15]。同時(shí),外界污染物也可能通過影響腸道微生物與蚯蚓的共生關(guān)系,誘發(fā)腸道炎癥等病變,威脅宿主健康[16-17]。

    目前重金屬、微塑料、農(nóng)藥污染對(duì)蚯蚓腸道菌群的影響已有零星研究。例如:蚯蚓腸道細(xì)菌群落對(duì)重金屬的敏感性高于土壤細(xì)菌群落,重金屬富集可刺激蚯蚓腸道中潛在的植物根際促生菌(PGPB)的生長(zhǎng),有助于蚯蚓-植物協(xié)同修復(fù)重金屬污染土壤[18]。聚乳酸微塑料能夠顯著降低蚯蚓腸道微生物群落豐度和多樣性,通過破壞細(xì)菌群落穩(wěn)態(tài)導(dǎo)致蚯蚓免疫和代謝功能障礙[19-20]。磷酸三丁酯(TBP)脅迫下,蚯蚓腸道中參與能量代謝的幾種細(xì)菌顯著變化,導(dǎo)致與營(yíng)養(yǎng)吸收相關(guān)的跨膜和轉(zhuǎn)運(yùn)途徑中斷[21]。此外,鄰苯二甲酸酯、氟磺胺草醚、吡蟲啉等均可改變蚯蚓腸道微生物組成及多樣性,進(jìn)而影響蚯蚓正常的生理生化過程[22-23]。

    當(dāng)前,關(guān)于MCs對(duì)土壤動(dòng)物(例如蚯蚓)生態(tài)毒性方面的研究還很少。已有報(bào)道顯示,MC-LR對(duì)蚯蚓具有神經(jīng)毒性和生殖毒性[24-25]。MC-LR還會(huì)損傷蚯蚓腸道,通過誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡、促進(jìn)組織病變以及干擾消化酶活性等方式導(dǎo)致腸功能障礙[26]。與上述典型污染物相比,MCs作為一類天然毒素,尚缺乏其與蚯蚓腸道微生物相互作用方面的調(diào)查數(shù)據(jù),相關(guān)劑量-效應(yīng)關(guān)系不明。鑒于此,本試驗(yàn)選用模式動(dòng)物——赤子愛勝蚓(Eisenia fetida)為試驗(yàn)對(duì)象,通過開展土壤接觸試驗(yàn),探究MC-LR暴露對(duì)蚯蚓組織結(jié)構(gòu)、氧化應(yīng)激以及腸道微生物的毒性效應(yīng)。研究結(jié)果將為土壤生態(tài)系統(tǒng)中MCs的遷移轉(zhuǎn)化提供新見解,也為準(zhǔn)確評(píng)估陸地生態(tài)系統(tǒng)中MCs的生態(tài)風(fēng)險(xiǎn)奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    為模擬真實(shí)土壤生態(tài)環(huán)境,受試土壤(表層0~20cm)采自華南地區(qū)某試驗(yàn)農(nóng)田土壤(紅壤),預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明該土壤中未檢出MCs,其理化性質(zhì)為:pH6.77、有機(jī)質(zhì)29.93 g·kg-1、有機(jī)碳17.36 g·kg-1、總氮3.36 g·kg-1、總磷1.03 g·kg-1、總鉀6.47 g·kg-1。將采集到的土樣自然風(fēng)干后過100目篩。供試蚯蚓為赤子愛勝蚓(E.fetida),購(gòu)自廣州市某蚯蚓生產(chǎn)基地。正式試驗(yàn)開始前,先將蚯蚓在無污染的受試土壤中馴養(yǎng)14 d,隨后選擇大小相近的健康成年蚯蚓開展試驗(yàn)(平均鮮質(zhì)量為500~600 mg·條-1)。本試驗(yàn)使用的MC-LR 標(biāo)準(zhǔn)品購(gòu)自中國(guó)臺(tái)灣藻研公司,其純度≥95%。若無特殊說明,本研究所用的其他試劑藥品均為分析級(jí)純度。

    1.2 試驗(yàn)設(shè)計(jì)

    本試驗(yàn)參照OECD207準(zhǔn)則中規(guī)定的標(biāo)準(zhǔn)方法開展[27]。用純甲醇配制1 mg·mL-1的MC-LR母液,然后稀釋得到一系列濃度的MC-LR 工作液。分別稱取500 g供試土壤于玻璃燒杯中,各加入1 mL工作液。前期野外實(shí)地調(diào)查發(fā)現(xiàn),受污染農(nóng)田土壤中MCs的環(huán)境含量為187 μg·kg-1[7],因此本研究設(shè)置低(50 μg·kg-1,LR50)、中(150 μg·kg-1,LR150)、高(500 μg·kg-1,LR500)3個(gè)MC-LR含量??瞻讓?duì)照組(CK)中加入1 mL甲醇?;旌暇鶆蚝笥谕L(fēng)櫥內(nèi)靜置0.5 h以上待甲醇完全揮發(fā),加入超純水以保持土壤含水量為30%。再次攪拌均勻后,向每個(gè)組培瓶?jī)?nèi)加15條蚯蚓和10 g牛糞飼料,用透氣膜封口后置于培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)14 d。培養(yǎng)箱條件為:濕度80%,溫度(20±1)℃,光照時(shí)間為白天和黑夜各12 h,光照強(qiáng)度600 lx。每周定時(shí)補(bǔ)充6 mL水與10 g牛糞以維持土壤濕度與食物供給。

    1.3 分析方法

    染毒暴露第14天時(shí),收集各處理組中的蚯蚓,并用去離子水沖洗干凈;在黑暗環(huán)境中將蚯蚓置于潮濕濾紙上過夜,使其排凈腸道內(nèi)容物;隨后再次用去離子水沖洗干凈,并用濾紙吸干其體表水分,以待后續(xù)分析檢測(cè)。

    1.3.1 酶活性分析

    稱取0.1 g新鮮蚯蚓組織樣品于1.5 mL EP離心管內(nèi),加入研磨珠及提取液,放入預(yù)冷的組織勻漿器中,冰浴勻漿15~20 min,并于8 000 g、4 ℃離心10 min后收集上清液。分別檢測(cè)與蚯蚓氧化應(yīng)激抗氧化系統(tǒng)相關(guān)指標(biāo)[谷胱甘肽(GSH)、丙二醛(MDA)、總抗氧化能力(T-AOC)、谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶(GST)],以及在蚯蚓腸道中所必需的、參與蚯蚓生長(zhǎng)及代謝的纖維素酶(CL)的活性。相關(guān)檢測(cè)使用購(gòu)自北京索萊寶科技有限公司的商業(yè)試劑盒完成,具體方法詳見說明書。

    1.3.2 透射電鏡觀測(cè)

    仔細(xì)收集蚯蚓環(huán)帶下方5~10 mm處新鮮組織樣,將其立即投入裝有電鏡固定液的培養(yǎng)皿內(nèi),將離體組織切割為1 mm×1 mm×3 mm薄片狀,以保證固定液完全滲透組織。室溫避光條件下固定2 h,將樣品于4 ℃保存,隨后使用透射電鏡(日立,HT7800)進(jìn)行觀察。

    1.3.3 蚯蚓腸道微生物提取及高通量測(cè)序

    將蚯蚓放置于無水乙醇中殺死,用無菌超純水洗滌干凈,固定在蠟盤上,用剪刀解剖,用鑷子取出大塊內(nèi)容物后(盡量避免取到蚯蚓組織),將組織放入預(yù)冷的PBS緩沖液中輕輕洗滌,-4 ℃離心取沉淀大約1 g,以上操作均在無菌超凈臺(tái)進(jìn)行。樣品液氮速凍置于-80 ℃保存,送測(cè)序公司(諾禾致源)進(jìn)行高通量測(cè)序。將合格的DNA樣品隨機(jī)超聲打斷成長(zhǎng)度為350bp的片段,經(jīng)末端修復(fù)、加A尾、加測(cè)序接頭、純化、PCR擴(kuò)增等步驟完成整個(gè)DNA文庫制備。為確保后續(xù)信息分析結(jié)果的準(zhǔn)確,使用QIIEM2對(duì)原始數(shù)據(jù)進(jìn)行處理[28-29],使用Cutadapt插件去除引物序列后,再用DAD2 插件[30]進(jìn)行擴(kuò)增子序列變異的質(zhì)控和宿主過濾。組裝有效數(shù)據(jù)(Clean Data)后得到Scaftigs,進(jìn)行基因預(yù)測(cè)與去冗余,構(gòu)建Gene catalogue。將Genecatalogue 與Micro_NR 庫進(jìn)行比對(duì),獲得每個(gè)基因(unigene)的物種注釋信息,并結(jié)合基因豐度表,獲得不同分類層級(jí)的物種豐度表。根據(jù)常用的功能數(shù)據(jù)庫,從Gene catalogue 出發(fā),使用核糖體數(shù)據(jù)庫項(xiàng)目(RDP)分類器對(duì)物種豐度及代謝通路數(shù)據(jù)庫(KyotoEncyclopedia of Genes and Genomes,KEGG)、同源基因簇?cái)?shù)據(jù)庫(Evolutionary genealogy of genes:Non-su?pervised Orthologous Groups,eggNOG)等進(jìn)行功能注釋和豐度分析。

    1.4 數(shù)據(jù)分析

    基本數(shù)據(jù)處理采用Excel 2010,每份實(shí)驗(yàn)包含3個(gè)平行處理(n=3),數(shù)據(jù)表示為均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差。采用SPSS 13.0(美國(guó)SPSS公司)進(jìn)行單因素方差分析、Duncan′s 檢驗(yàn)和最小顯著性差異檢驗(yàn),Plt;0.05 代表有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。微生物數(shù)據(jù)的分析處理主要基于R3.4.3 軟件進(jìn)行。使用Origin 2021(美國(guó)OriginLab 公司)繪制圖表。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 MC-LR污染脅迫對(duì)赤子愛勝蚓的組織病理學(xué)損傷

    通過透射電鏡觀察發(fā)現(xiàn),MC-LR暴露導(dǎo)致蚯蚓表皮肌層損傷,其損傷程度與MC-LR脅迫量之間存在明顯的劑量-效應(yīng)關(guān)系。無污染對(duì)照組中,蚯蚓表皮肌肉完整且排列緊密,無明顯組織病變(圖1a)。50 μg·kg-1處理組中,蚯蚓肌層開始出現(xiàn)輕微裂縫(圖1b),150 μg·kg-1處理組中肌層出現(xiàn)裂縫且肌層紋路紊亂(圖1c),而暴露于500 μg·kg-1 MC-LR時(shí)肌層的裂縫增多,且出現(xiàn)了明顯的空泡化現(xiàn)象(圖1d)。

    2.2 MC-LR污染脅迫對(duì)赤子愛勝蚓的氧化脅迫及酶活性的影響

    由圖2a可知,蚯蚓體內(nèi)MDA含量隨著MC-LR暴露量的升高而增加,其在500 μg·kg-1 處理組中的含量為34.5 U·g-1,是對(duì)照組中的2倍(Plt;0.05)。與對(duì)照組相比,MC-LR處理組蚯蚓體內(nèi)T-AOC水平呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢(shì),在150 μg·kg-1 處理組中達(dá)到最大,是對(duì)照組的1.5倍(圖2b)。相反,各處理組的蚯蚓體內(nèi)CL活性與MC-LR暴露量呈顯著負(fù)相關(guān)性(Plt;0.05),在500 μg·kg-1處理組中其活性最低(200.5 U·g-1),僅為對(duì)照組的35.4%(圖2c)。由圖2d可以看出,GST 活性呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),在50、150 μg·kg-1 處理中其活性分別為對(duì)照的1.3 倍和1.5 倍(Plt;0.05),但在500 μg·kg-1 時(shí)與對(duì)照組無顯著差異。GSH是細(xì)胞內(nèi)的解毒物質(zhì),與對(duì)照組相比,在50 μg·kg-1 MC-LR暴露量時(shí)無顯著變化,但在150、500 μg·kg-1暴露量時(shí)其含量均顯著降低(Plt;0.05)。

    2.3 MC-LR污染脅迫對(duì)土壤和赤子愛勝蚓腸道微生物群落結(jié)構(gòu)的影響

    2.3.1 土壤和蚯蚓腸道微生物群落多樣性變化

    α多樣性分析發(fā)現(xiàn),土壤微生物的Chao1指數(shù)明顯低于蚯蚓腸道中的(Plt;0.05),不同MC-LR處理組蚯蚓腸道微生物多樣性呈先上升后下降的趨勢(shì),但各組之間并無顯著差異(圖3a)?;贐ray-Curtis距離的主坐標(biāo)分析(PCoA)結(jié)果表明,土壤微生物群落結(jié)構(gòu)與50 μg·kg-1 處理組中蚯蚓腸道微生物群落結(jié)構(gòu)在PCoA 1軸上明顯分離,而其他各處理組之間則無顯著差異(圖3b)。

    2.3.2 土壤和蚯蚓腸道微生物群落組成變化

    如圖4a所示,在門分類水平上,各處理組及土壤中優(yōu)勢(shì)菌群為假單胞菌門(Pseudomonadota)、放線菌門(Actinomycetota)、芽孢桿菌門(Bacillota)、疣微菌門(Verrucomicrobiota)和擬桿菌門(Bacteroidota)。與對(duì)照組相比,MC-LR污染脅迫導(dǎo)致假單胞菌門和疣微菌門的相對(duì)豐度顯著降低(Plt;0.05),而放線菌門和浮霉?fàn)罹T(Planctomycetota)的相對(duì)豐度增加。蚯蚓腸道中擬桿菌門的相對(duì)豐度低于土壤,50、150 μg·kg-1MC-LR處理下其豐度上升,而500 μg·kg-1處理下則降低。此外,土壤黏球菌門(Myxococcota)和尾噬菌體門(Uroviricota)的相對(duì)豐度分別為0.015%和0.013%,明顯高于蚯蚓腸道中的(分別為lt;0.003%和lt;0.002%),而熱脫硫桿菌門(Thermodesulfobacteriota)的豐度則較低(Plt;0.05)。相關(guān)性分析證實(shí),MC-LR污染脅迫降低了芽孢桿菌、假單胞菌和疣微菌的相對(duì)豐度,且浮霉?fàn)罹cMC-LR暴露量呈明顯正相關(guān)關(guān)系(圖4b)。

    采用Linear discriminant analysis Effect Size(LEfSe)可以檢測(cè)不同處理之間具有顯著豐度差異的微生物類群,確定各處理組的生物標(biāo)志物。由圖4c可以看出,土壤中的細(xì)菌大部分屬于擬桿菌;對(duì)照組中,對(duì)蚯蚓腸道環(huán)境影響最顯著的微生物類群包括微枝形桿菌屬(Microvirga)、隱真菌屬(Paramicrosporidi?um)、甲基桿菌科(Methylobacteriaceae)及淤泥卡斯特蘭尼氏菌(Castellaniella_caeni),表明這些微生物是蚯蚓腸道原始環(huán)境中的功能微生物。50 μg·kg-1處理組中的特異性顯著微生物為鞘氨醇單胞菌屬(Sphin?gomonas)和成對(duì)桿菌屬(Dyadobacter)。150 μg·kg-1處理組中顯著貢獻(xiàn)的微生物類群最多,如噬幾丁質(zhì)菌目(Chitinophaga)、溶桿菌屬(Lysobacter)、鞘氨醇盒菌屬(Sphingopyxis)、厭氧黏細(xì)菌科(Anaeromyxobactera?ceae)、弗拉特氏菌屬(Frateuria)、希瓦氏菌屬(She?wanella)、馬賽菌屬(Massilia)、叢毛單胞菌屬(Coma?monadaceae)。在500 μg·kg-1 MC-LR脅迫下,顯著性貢獻(xiàn)的微生物較少,主要包括未分類的螺旋菌門(Spirochaetota)類群。

    2.4 蚯蚓腸道微生物與生化指標(biāo)相關(guān)性分析

    選取蚯蚓腸道微生物相對(duì)豐度前10的門類與上述5 種氧化活性指標(biāo)進(jìn)行Pearson 相關(guān)性分析,揭示兩者之間的相互作用關(guān)系。由圖5可知,T-AOC水平與蚯蚓腸道中黏球菌門和擬桿菌門的相對(duì)豐度呈顯著正相關(guān)性(Plt;0.01 和Plt;0.05),而與芽孢桿菌門的相對(duì)豐度呈顯著負(fù)相關(guān)(Plt;0.05)。此外,MDA 含量與疣微菌門相對(duì)豐度呈現(xiàn)顯著負(fù)相關(guān)(Plt;0.05),而GST 活性與黏球菌門相對(duì)豐度呈現(xiàn)顯著正相關(guān)(Plt;0.001)。

    2.5 蚯蚓腸道菌群功能對(duì)MC-LR污染脅迫的響應(yīng)

    通過PICRUSt 2 預(yù)測(cè)蚯蚓腸道微生物組的功能特征,結(jié)果顯示:代謝(Metabolism)和遺傳信息處理(Genetic information processing)是KEGG Level-1水平上富集程度最高的兩類通路,其中代謝相關(guān)通路占主要部分,包括氨基酸代謝、碳水化合物代謝、能量代謝、輔因子和維生素代謝、核苷酸代謝等。統(tǒng)計(jì)分析結(jié)果顯示,不同處理組之間的通路豐度差異雖未達(dá)到顯著水平,但相較于對(duì)照組均呈現(xiàn)出下降趨勢(shì),其中對(duì)氨基酸代謝的影響最大,指示不同程度的MC-LR污染脅迫會(huì)損害蚯蚓代謝和遺傳信息處理能力。核苷酸代謝中的嘧啶代謝在所有代謝途徑中最為豐富。

    3 討論

    蚯蚓通過皮膚或腸道吸收環(huán)境基質(zhì)中存在的各類污染物,進(jìn)而對(duì)蚯蚓產(chǎn)生多種毒性效應(yīng)[31]。本研究發(fā)現(xiàn),暴露于MC-LR的赤子愛勝蚓表皮肌層出現(xiàn)明顯空泡化現(xiàn)象(圖1),這與前期調(diào)查結(jié)果一致[6],表明MC-LR暴露會(huì)造成蚯蚓表皮撕裂,甚至導(dǎo)致出血和組織糜爛。Liu等的研究表明,MC-LR暴露導(dǎo)致蚯蚓腸道組織發(fā)生了明顯病變,包括肌肉纖維化、消化道降解、盲腸脫落、上皮和黃原組織異常[26]。本研究中CL活性顯著降低,進(jìn)一步證實(shí)MC-LR對(duì)蚯蚓的腸道組織與功能造成了損害。CL作為蚯蚓體內(nèi)重要的消化酶,直接參與蚯蚓正常生長(zhǎng)及代謝[26]。這也解釋了為何MC-LR污染暴露會(huì)顯著抑制赤子愛勝蚓生長(zhǎng)[6,26]。

    污染脅迫會(huì)導(dǎo)致生物體內(nèi)產(chǎn)生大量氧自由基(ROS),生物體通過各種抗氧化酶與非酶抗氧化物作用將ROS保持在較低水平,以防止產(chǎn)生氧化損傷[32]。GST 作為一種多功能解毒酶,可以催化GSH 與有毒物質(zhì)耦聯(lián)而增加其親水性,有助于有毒物質(zhì)排出體外,從而發(fā)揮解毒功能[33]。本研究中,MC-LR污染脅迫下蚯蚓體內(nèi)GST 活性顯著升高,促使更多的GSH與MC-LR結(jié)合,造成GSH含量顯著降低(圖2d和圖2e),這一過程是維持細(xì)胞內(nèi)部氧化還原穩(wěn)態(tài)所必須的。T-AOC代表體內(nèi)整體抗氧化水平對(duì)ROS的消除能力,是機(jī)體抗氧化防御能力的標(biāo)志[34]。與對(duì)照組相比,MC-LR 污染脅迫下蚯蚓體內(nèi)T-AOC 均顯著上升,并在高含量處理組中略微下降(圖2b)。這些現(xiàn)象表明,當(dāng)外源物脅迫程度過高時(shí),ROS蓄積可能導(dǎo)致抗氧化系統(tǒng)損傷,因此T-AOC水平下降。高含量處理組中MDA含量顯著增加(圖2a),進(jìn)一步證實(shí)此時(shí)蚯蚓體內(nèi)已積累過量ROS并導(dǎo)致脂質(zhì)過氧化。

    蚯蚓以土壤中的有機(jī)物為食,其腸道中的很多微生物來源于土壤。但與土壤環(huán)境不同,蚯蚓腸道具有厭氧、pH中性、濕度高等特殊性質(zhì),可能會(huì)選擇性地過濾周圍土壤中的部分微生物。此外,隨著蚯蚓的生理活動(dòng),有些微生物還會(huì)在其腸道內(nèi)增殖、變異或富集,從而形成與外部環(huán)境差異明顯的獨(dú)特微生物群落結(jié)構(gòu)與功能[35-36]。因此,蚯蚓腸道微生物群落結(jié)構(gòu)的多樣性通常較周圍土壤中要高(圖3a)。蚯蚓攝入的土壤有機(jī)殘?jiān)?,?jīng)腸道微生物同化后再次排出體外,土壤與蚯蚓腸道微生物存在相同的優(yōu)勢(shì)群落[37-38]。

    盡管存在不同程度的MC-LR污染脅迫,但蚯蚓腸道微生物群落結(jié)構(gòu)仍保持部分相同(圖3b),表明蚯蚓腸道內(nèi)存在核心微生物組,面對(duì)外界污染脅迫能夠保持相對(duì)穩(wěn)定[39],其以假單胞菌、放線菌、擬桿菌等為主[40]。假單胞菌中許多種細(xì)菌都具有分解蛋白質(zhì)與脂肪的能力。MC-LR 脅迫使得放線菌相對(duì)豐度增加,表明MC-LR污染脅迫下蚯蚓腸道篩選出了更多的兼性/專性厭氧菌[15]。浮霉?fàn)罹哂薪到鈴?fù)雜碳水化合物(例如木質(zhì)纖維素)的能力[41],高濃度MC-LR暴露時(shí)其相對(duì)豐度最高,這可能是因?yàn)槠鋵?duì)MC-LR污染脅迫具有較高的抵抗能力。疣微菌在蚯蚓腸道中參與多種物質(zhì)循環(huán),可以降解半纖維素聚合物[42]。本實(shí)驗(yàn)中蚯蚓受到脅迫產(chǎn)生氧化損傷,引起MDA含量上升,降低了疣微菌的相對(duì)豐度,說明MC-LR會(huì)削弱蚯蚓腸道分解、吸收營(yíng)養(yǎng)元素的能力,從而抑制蚯蚓正常生長(zhǎng)發(fā)育[43]。與此同時(shí),為了適應(yīng)MC-LR 污染脅迫,蚯蚓體內(nèi)T-AOC和GST含量與腸道內(nèi)黏球菌豐度同時(shí)升高。黏球菌門作為蚯蚓腸道中重要的抗性微生物[44],可能參與MC-LR降解,因此二者呈正相關(guān)關(guān)系。以上結(jié)果表明蚯蚓腸道菌群和酶等物質(zhì)可相互影響以應(yīng)對(duì)MC-LR的污染脅迫。

    研究表明,腸道微生物群落結(jié)構(gòu)的改變會(huì)導(dǎo)致生物相關(guān)代謝途徑發(fā)生變化[45]。氨基酸代謝途徑參與機(jī)體多種基本生理活動(dòng),包括能量?jī)?chǔ)存、先天免疫激活和蛋白質(zhì)合成等[46]。苯丙氨酸、酪氨酸和色氨酸生物合成代謝途徑豐度下降,會(huì)導(dǎo)致宿主與微生物相互作用的重要信號(hào)分子——芳香氨基酸含量下降,其在調(diào)節(jié)胃腸道和遠(yuǎn)端器官的局部及全身免疫、代謝和神經(jīng)元反應(yīng)中發(fā)揮作用,影響疾病發(fā)生[47]。MC-LR 污染脅迫下,蚯蚓腸道中這3類重要芳香氨基酸合成途徑豐度的降低,可能是由于蚯蚓腸道微生物群落結(jié)構(gòu)失衡,造成芳香氨基酸含量減少,最終影響蚯蚓正常生理活動(dòng)。精氨酸可以調(diào)節(jié)炎癥反應(yīng),通過降低反應(yīng)蛋白等標(biāo)志物來減輕炎癥[48]。MC-LR 暴露后,蚯蚓腸道微生物的精氨酸代謝途徑豐度降低(圖6),進(jìn)一步揭示炎癥可能是誘發(fā)其腸道損傷的重要因素之一。賴氨酸、色氨酸及異亮氨酸等的合成與代謝途徑豐度的下降(圖6),表明蚯蚓處于MC-LR脅迫時(shí)蛋白質(zhì)消化和吸收能力受到抑制[49]。上述氨基酸代謝通路的紊亂,反映蚯蚓腸道微生物能量代謝功能受到了擾動(dòng),而這也是機(jī)體在污染脅迫下的普遍反映特征[50]。MC-LR暴露還導(dǎo)致蚯蚓腸道微生物的泛酸和CoA生物合成途徑水平下降,表明蚯蚓脂肪轉(zhuǎn)運(yùn)能力受到抑制,從而進(jìn)一步影響能量的調(diào)節(jié)補(bǔ)充[51]。GSH作為一種重要的抗氧化因子,參與MC-LR解毒的第一步[52],其代謝途徑的降低與GSH 含量的降低趨勢(shì)一致(圖2e和圖4),表明蚯蚓腸道微生物菌群的解毒能力下降。此外,嘧啶代謝途徑的降低表示在一定程度上MC-LR抑制了蚯蚓能量代謝、糖基化反應(yīng)以及DNA合成[53]。

    4 結(jié)論

    (1)微囊藻毒素-LR(MC-LR)脅迫對(duì)蚯蚓表皮肌層產(chǎn)生了較為嚴(yán)重的病理學(xué)損傷。同時(shí)顯著影響蚯蚓體內(nèi)抗氧化酶系統(tǒng),丙二醛(MDA)含量顯著上升,總抗氧化水平(T-AOC)和谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶(GST)先上升后下降,纖維素酶(LC)與谷胱甘肽(GSH)顯著下降。

    (2)腸道微生物群落多樣性顯著高于土壤,但豐度前10物種的相對(duì)豐度低于土壤,且MC-LR脅迫也降低了微生物群落的相對(duì)豐度,而假單胞菌門、放線菌門、擬桿菌門作為腸道微生物核心群落,即使在MC-LR脅迫下,也保持較高的豐度。

    (3)T-AOC、GST與黏球菌門呈現(xiàn)正相關(guān),T-AOC與擬桿菌門呈現(xiàn)顯著正相關(guān)。黏球菌門和擬桿菌門在蚯蚓的氧化應(yīng)激反應(yīng)中發(fā)揮重要作用,可能參與MC-LR 的降解。MDA 與疣微菌門呈負(fù)相關(guān),說明MC-LR抑制蚯蚓腸道降解纖維素的能力。

    (4)MC-LR脅迫使得蚯蚓腸道遺傳信息處理途徑與代謝途徑呈現(xiàn)下調(diào)趨勢(shì),且對(duì)代謝途徑影響更大,進(jìn)而影響蚯蚓能量?jī)?chǔ)存、蛋白質(zhì)合成、炎癥反應(yīng)等。

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    (責(zé)任編輯:潘淑君)

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