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    UVB對成纖維細胞中IFI16表達的影響

    2018-01-31 06:40:36馬慧敏
    中國麻風皮膚病雜志 2018年1期
    關鍵詞:糖苷酶纖維細胞小劑量

    馬慧敏 趙 琦 劉 瑋

    IFI16(interferon inducible protein 16)是干擾素誘導核蛋白。IFI16最初被發(fā)現(xiàn)于淋巴細胞核內(nèi),后經(jīng)免疫組化分析發(fā)現(xiàn),IFI16廣泛表達于不同組織中[1],包括血管內(nèi)皮細胞、成纖維細胞等[2]。Hensler等證實IFI16基因包含在細胞老化中起作用的基因[3]。2010年,有學者發(fā)現(xiàn)IFI16可以抑制細胞生長,誘導細胞老化,并下調(diào)hTERT的表達[4,5],由此將干擾素誘導蛋白引入到衰老研究領域。

    IF116調(diào)節(jié)細胞增殖和細胞周期[6],在老化成纖維細胞中IFI16 mRNA和蛋白水平高于年輕細胞[7];在正常人前列腺細胞,細胞老化后IFI16表達水平升高;永生化的成纖維細胞中IFI16表達降低,過度表達IFI16可以明顯地抑制細胞增殖[8]。在鱗狀細胞癌細胞、睪丸癌及人前列腺癌中IFI16表達下調(diào)[9-11]。以上的研究結果表明細胞老化的生物學過程中IFI16表達增高且在該過程中發(fā)揮重要作用。

    β-半乳糖苷酶活性升高是典型的復制老化的生物學標志[12],細胞生長停滯是細胞老化的另一特征。實驗中,以人成纖維細胞為研究對象,使用UVB重復照射細胞,檢測β-半乳糖苷酶及細胞周期,以確定細胞老化模型建立,進而檢測IFI16 mRNA及蛋白水平變化,以明確IFI16在細胞光老化過程中其表達是否變化。

    1 材料與方法

    1.1 試劑與材料 DMEM高糖培養(yǎng)液(德國,PAA),胎牛血清(北京元享圣馬生物技術有限公司),雙抗(100 U/mL青霉素及100 ug/ml鏈霉素),UVB照射裝置(sigma),UVB輻照計(北京師范大學光電儀器廠),CCK-8試劑盒(碧云天生物技術研究所),酶聯(lián)免疫檢測儀(美國BIO-RAD),trizol(invitrogen),cDNA合成試劑盒(北京天根),real time PCR mix(北京天根),IFI16單克隆抗體(abcam)。

    1.2 細胞培養(yǎng)與UVB照射 常規(guī)分離培養(yǎng)人成纖維細胞。取5~10代以內(nèi)成纖維細胞,按10000個/cm2細胞接種至培養(yǎng)皿中,UVB照射細胞時,將培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)液換成PBS,照射完畢后換回培養(yǎng)液。UVB照射劑量為:100、200、 300、400 及 500 mJ/cm2,對照組除不接受UVB照射外,其他處理同UVB照射組細胞。

    為了更加準確地模擬光老化的過程,根據(jù)UVB對成纖維細胞活性影響的試驗結果選擇小劑量重復照射方式,以300 mJ/cm2作為照射總劑量,每次100 mJ/cm2,共三次照射。

    1.3 細胞增殖率測定 用WST-8分析細胞活性。UVB照射后24 h,用含10% WST-8溶液的新鮮培養(yǎng)液孵育細胞2 h后,用酶標儀于450 nm處測定OD值。

    1.4 原位β-半乳糖苷酶染色分析 根據(jù)試劑使用說明,用2%甲醛和0.2%戊二醛固定細胞后,PBS沖洗2遍,按說明配制X-gal溶液,于37℃孵育24 h后,觀察三個視野,每個視野至少計數(shù)100個細胞,并計算染色細胞陽性率。

    1.5 細胞周期分析 根據(jù)試劑盒(Cycletest plus, BecTon Dickinson, USA)說明行細胞周期分析。收集細胞,用70%酒精于4℃固定過夜后,離心用PBS清洗2次,依次加入A和B溶液于室溫下孵育10 min,最后用C溶液于冰上染色10 min;過濾后,上機檢測。

    1.6 RNA提取及實驗定量PCR 用Trizol提取細胞總RNA,取0.5 ug RNA為模板合成cDNA;用1 ul cDNA為模板進行實時定量PCR反應,以β-actin為內(nèi)參并設陰性對照,每個樣本設三個重復。反應條件為:95℃,15 min,熱激活;95℃ 15 s 變性,65℃ 1 min退火和延伸,共40個循環(huán)。擴增結束時,做熔解曲線。用“△△CT方法”分析表達水平。

    IFI16及β-actin引物如下:IFI16 forward (5′-ACTGAGTACAACAAAGCCATTTGA-3′), IFI16 reverse (5′-TTGTGACATTGTCCTGTCCCCAC-3′), β-actin forward (5′-GTTGCTATCCAGGCTGTG-3′), β-actin reverse (5′-TGTCCACGTCACACTTCA-3′)。

    1.7 Western分析 用RIPA裂解細胞提取蛋白并用BCA做蛋白定量,10% SDS-PAGE凝膠電泳,轉膜,5%脫脂奶粉室溫封閉1 h,一抗4℃孵育過夜,二抗室濕孵育1 h,ECL發(fā)光,壓片,分析各條帶的灰度,將目的條帶的灰度值與內(nèi)參的灰度值的比值作為目的蛋白的表達水平。

    1.8 統(tǒng)計學方法 結果用mean±S.D.方式表示。根據(jù)需要采用t檢驗或單因素方差分析不同處理組之間的差異,P<0.05被認為有統(tǒng)計學差異。

    2 結果

    2.1 UVB細胞毒性分析 UVB照射后,在照射劑量為300 mJ/cm2時,細胞活性輕度下降,與對照組無顯著差異(P>0.05);當劑量達到400 mJ/cm2和500 mJ/cm2時,細胞活性下降顯著(*P<0.0001)(表1,圖1)。

    2.2 UVB照射后老化相關β-半乳糖苷酶染色分析 在本研究中,UVB照射后,β-半乳糖苷酶染色陽性率由11%上升為84% (圖2)。

    2.3 UVB照射后細胞周期分析 UVB照射后,處于G2/M期的細胞比例由9.29%上升到31.16%,與對照組相比,有顯著性差異(P<0.05)(圖3)。

    2.4 UVB照射細胞后,IFI16表達水平升高 UVB照射后,IFI16 mRNA和蛋白表達水平均上升,分別為2.11±0.45倍和1.59±0.23倍,且升高有統(tǒng)計學意義(均P<0.05),見圖4、5。

    表1 紫外線對細胞增殖活性的影響

    圖1 UVB照射后細胞毒性分析:UVB處理劑量由0~500 mJ/cm2。(*,與對照組相比p<0.05)圖2 三次小劑量UVB(100 mJ/cm2)重復照射后β-gal活性分析:(2a)對照組(β-gal染色,×200),(2b)UVB處理組細胞(β-gal染色,×200)

    圖3 三次小劑量UVB(100 mJ/cm2)重復照射后細胞周期分析:(a)對照組細胞周期分布;(b)UVB處理組細胞周期分布;(c)細胞周期百分比條圖;(d)兩組細胞處于細胞周期G2/M期百分比分析(*,與對照組相比P<0.05)

    圖4 三次小劑量UVB(100 mJ/cm2)重復照射后,IFI16 mRNA表達水平的變化(*P<0.05)圖5 a、b三次小劑量UVB(100 mJ/cm2)重復照射后,IFI16蛋白表達水平變化

    3 討論

    目前,光老化機制的研究是學者關注的熱點問題,對該問題的研究可以預防紫外線引起的損害。為了研究這一機制,細胞光老化模型的建立是尤為關鍵的步驟。

    首先,根據(jù)UVB對成纖維細胞的光毒性作用,選擇小劑量重復照射的方式作用于成纖維細胞。有研究認為,當β-半乳糖苷酶染色陽性細胞比例達到55%時,細胞即進入老化階段[13]。在本研究中,β-半乳糖苷酶染色陽性細胞數(shù)達到84%,因此,符合細胞老化的標準。細胞周期停滯是老化細胞的另一特征。UVB照射后,細胞周期停滯于G2/M期,這與以前的研究相一致,即老化細胞的細胞周期停滯于G2/M[14]期。以上實驗結果證實,UVB小劑量重復照射的方式可以在短時間內(nèi)建立穩(wěn)定的細胞老化模型。

    在近期研究中,證實IFI16參與自然老化過程,在該過程中,IFI16表達升高,且轉錄性調(diào)節(jié)P53及端粒酶而介導細胞老化過程[15,16]。在本研究中,UVB照射后誘導細胞老化,在該老化細胞中,IFI16 mRNA及蛋白表達均升高。但是,在細胞光老化過程中,IFI16表達升高能否調(diào)節(jié)P53及端粒酶,并進而影響細胞光老化進程中的生物學行為,仍然需要進一步研究。

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