摘 要 探究樟子松(Pinus sylvestris var.mongolica)內(nèi)生真菌球毛殼菌(Chaetomium globosum)發(fā)酵濾液對(duì)重大入侵害蟲松樹蜂(Sirex noctilio)共生真菌網(wǎng)隙裂粉韌革菌(Amylostereum areolatum)的抑制作用,篩選抑菌能力較強(qiáng)的差異代謝產(chǎn)物,有效防治松樹蜂。首先對(duì)球毛殼菌發(fā)酵濾液抑菌活性進(jìn)行測定,然后從代謝組學(xué)角度對(duì)球毛殼菌中潛在的抑菌物質(zhì)進(jìn)行篩選。結(jié)果表明,球毛殼菌發(fā)酵濾液可以完全抑制松樹蜂共生真菌A.areolatum的菌絲生長,且抑菌活性穩(wěn)定,不受儲(chǔ)存時(shí)間、紫外線和溫度的影響。共篩選出球毛殼菌發(fā)酵濾液差異代謝產(chǎn)物213種,其中潛在的抑菌物質(zhì)15種,包括異阿魏酸、香草酸、大麻二酚、甘氨酸、大黃素、丹皮酚、4-胍基丁酸、隱綠原酸、苯并呋喃、4-羥基苯甲酸、綠原酸、琥珀酸、4-甲氧基肉桂酸、龍葵素和二甲喹唑啉C。差異代謝產(chǎn)物的KEGG富集分析中ABC轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白、檸檬酸循環(huán)(TCA循環(huán))、纈氨酸、亮氨酸和異亮氨酸生物合成、酪氨酸代謝、苯丙氨酸代謝、氨基苯甲酸鹽降解丁酸代謝和C5支鏈二元酸代謝顯著富集。研究表明,球毛殼菌發(fā)酵濾液能夠抑制松樹蜂共生真菌網(wǎng)隙裂粉韌革菌的菌絲生長,且抑菌活性穩(wěn)定,并篩選得到球毛殼菌發(fā)酵濾液的潛在抑菌物質(zhì)。
關(guān)鍵詞 松樹蜂;球毛殼菌;共生真菌;代謝組學(xué);差異代謝產(chǎn)物
松樹蜂(Sirex noctilio)隸屬于膜翅目(Hymenoptera)樹蜂科(Siricidae)樹蜂屬(Sirex),是一種國際重大林業(yè)檢疫性害蟲,于2013年在我國黑龍江省杜蒙縣首次發(fā)現(xiàn),對(duì)樟子松(Pinus sylvestris var. mongolica)造成巨大危害[1]。有別于一般鉆蛀性害蟲僅直接鉆蛀樹木造成危害,樹蜂屬昆蟲能與淀粉韌革菌屬(Amylostereum)真菌互利共生、協(xié)同致害寄主樹種[2]。共生真菌可為樹蜂幼蟲生長發(fā)育提供必不可少的營養(yǎng)物質(zhì),如果共生真菌在寄主植物內(nèi)生長受阻,樹蜂幼蟲也將發(fā)育不良,甚至死亡。研究發(fā)現(xiàn),松樹蜂的共生真菌為網(wǎng)隙裂粉韌革菌(Amylostereum areolatum)[3],是一種致病力較弱的白腐真菌,可降解寄主樹木的木質(zhì)纖維素,以便于松樹蜂幼蟲在寄主內(nèi)取食生長[4]。
昆蟲與共生真菌復(fù)合危害寄主的同時(shí),寄主樹種自身微環(huán)境會(huì)對(duì)昆蟲及其共生菌產(chǎn)生抗性[5]。樹木的內(nèi)生真菌是指其生活史的某一階段或者全部階段生活在樹木組織內(nèi),不會(huì)引起宿主明顯病變癥狀的真菌。前期研究發(fā)現(xiàn),一些寄主樹木的內(nèi)生真菌能夠影響昆蟲與共生真菌的互利共生關(guān)系。閆鵬勇等[6]研究發(fā)現(xiàn),落葉松(Larix gmelinii)韌皮部的內(nèi)生真菌輪枝孢(Pochonia bulbillosa)和油松(Pinus tabuliformis)韌皮部的內(nèi)生真菌瓶頭霉屬真菌(Phialocephala sp.)對(duì)紅脂大小蠹(Dendroctonus valens)共生真菌長梗細(xì)帚霉(Leptographium procerum)、小長喙殼(Ophiostoma minus)、齒小蠹蛇口殼(O.ips)和多孢多穴腔菌(Sydowia polyspora)均有顯著的抑制效果,進(jìn)而影響紅脂大小蠹的生長發(fā)育。有研究[7-8]發(fā)現(xiàn),松樹蜂寄主樟子松的內(nèi)生真菌可以通過抑制共生真菌A.areolatum的菌絲生長而間接影響松樹蜂幼蟲的生長發(fā)育,如大伏革菌(Phlebiopsis gigantea)、綠色木霉(Trichoderma viride)、深綠木霉(T.atroviride)、哈茨木霉(T.harzianum)、松球殼孢菌(Sphaeropsis sapinea)、球毛殼菌(Chaetomium globosum)和小長喙殼(O.minus)等。其中綠色木霉和大伏革菌菌絲可通過纏繞、寄生或穿插生長在A.areolatum菌絲上,最終完全覆蓋共生菌菌落,導(dǎo)致共生真菌無法生長而死亡[9];球毛殼菌菌絲與 A.areolatum菌絲能夠相互抑制。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),球毛殼菌發(fā)酵濾液可完全抑制A.areolatum的菌絲生長,抑制率為100%;且其余內(nèi)生真菌發(fā)酵濾液也對(duì)A.areolatum有不同程度的抑制作用[7],故本研究選取對(duì)A.areolatum抑菌能力極強(qiáng)的球毛殼菌發(fā)酵濾液進(jìn)行代謝組學(xué)分析。
代謝組學(xué)是轉(zhuǎn)錄組學(xué)和蛋白質(zhì)組學(xué)的延伸,對(duì)生物體內(nèi)所有代謝物進(jìn)行定量分析,并尋找代謝物與生理病理變化的相對(duì)關(guān)系的研究方式,是系統(tǒng)生物學(xué)的組成部分[10-11]。球毛殼菌作為植物內(nèi)生真菌,它的差異代謝物種類較多,主要有生物堿、有機(jī)酸、酚類等化合物,具有抑菌特性[12-13]。因此,本試驗(yàn)首先研究了球毛殼菌發(fā)酵濾液的抑菌活性,其次從代謝組學(xué)角度篩選抑制松樹蜂共生真菌的化學(xué)物質(zhì),探究寄主樟子松對(duì)松樹蜂的抗性機(jī)制,也為內(nèi)生真菌的后續(xù)研究奠定基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 供試菌株
2種供試內(nèi)生真菌球毛殼菌(C.globosum)和大伏革菌(P.gigantea)分離自黑龍江省鶴崗市峻德林場的健康樟子松干部組織,鑒定后保存于甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)植物保護(hù)省級(jí)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室。
松樹蜂采集于黑龍江省鶴崗市峻德林場,共生真菌網(wǎng)隙裂粉韌革菌(A.areolatum)分離自松樹蜂雌成蟲貯菌囊。
1.2 球毛殼菌發(fā)酵濾液的活性測定
內(nèi)生真菌發(fā)酵濾液的制備[14]:將球毛殼菌接種于直徑9 cm PDA(葡萄糖3 g,馬鈴薯30 g,瓊脂3 g,蒸餾水150 mL)平板上25" ℃活化7 d后,在無菌條件下用直徑5 mm的打孔器在菌落邊緣打取菌餅。將菌餅接種至含有150 mL PDB(葡萄糖3 g,馬鈴薯30 g,蒸餾水150 mL)發(fā)酵培養(yǎng)基的錐形瓶中,每個(gè)錐形瓶接種5個(gè)菌餅。于 25" ℃,180 r/min至于搖床中培養(yǎng)14 d后,得到的培養(yǎng)液以5 000 r/min離心10 min取上清液,并經(jīng)過0.22 μm的微孔濾膜真空抽濾,收集發(fā)酵濾液。取發(fā)酵濾液原液20 mL用無菌水定容至100 mL,4" ℃保存?zhèn)溆?。以相同方法制備了大伏革菌發(fā)酵濾液,用于球毛殼菌代謝組分析的對(duì) 照組。
將收集到的球毛殼菌發(fā)酵濾液,分別在285 nm波長(UV-B)的紫外線條件下照射15 min、30 min及45 min;60 ℃和100 ℃高溫水浴條件分別加熱15 min、30 min及45 min;以及4 ℃低溫貯藏15 d、30 d及45 d。將經(jīng)過上述處理的球毛殼菌發(fā)酵濾液分別與PDA培養(yǎng)基(50" ℃)按1∶9的比例混合后制作平板,對(duì)照組加入等量PDB代替發(fā)酵濾液與PDA培養(yǎng)基混合。然后用直徑5 mm的打孔器在已培養(yǎng)7 d的共生菌A.areolatum菌落邊緣打取菌餅,將菌餅的菌絲面朝下接種于培養(yǎng)基平板中心處。每個(gè)處理重復(fù)3組, 25" ℃恒溫培養(yǎng)15 d。采用十字交叉法測量對(duì)照組和處理組菌落直徑,并計(jì)算抑制率。
抑制率(p)=(C-T)/C×100%
p:抑制率;C:對(duì)照組中A.areolatum的菌落直徑;T:處理組中A.areolatum的菌落直徑。
1.3 內(nèi)生真菌發(fā)酵濾液代謝組學(xué)分析
1.3.1 代謝物的提取
將球毛殼菌發(fā)酵濾液和大伏革菌發(fā)酵濾液分別取20 μL,加入120 μL 50%甲醇提取代謝物,將其震蕩混勻,常溫儲(chǔ)存靜置10 min;提取-20" ℃過夜,沉淀樣本中的蛋白質(zhì);4 000 g離心20 min吸取上清。所有代謝樣本保存于-80" ℃冰箱中,用于液相色譜—質(zhì)譜聯(lián)用儀(LC-MS)分析。每種內(nèi)生真菌設(shè)置6次生物學(xué)重復(fù)。
1.3.2 內(nèi)生真菌發(fā)酵濾液液相特征分析
數(shù)據(jù)采集所用到的液相體系為超高壓液相SCIEX(UK公司)。所用的色譜分析柱型號(hào)規(guī)格為ACQUITYUPLCT3(100 mm×2.1 mm,1.8" μm,Waters,UK)。采用的流動(dòng)相為A相:水(1%甲酸);B相:乙腈(1%甲酸)。液相梯度設(shè)置為:0~0.5 min,5% B;0.5~7 min,5%~100% B;7~8 min,100% B;8~8.1 min,100%~5% B;8.1~10 min,5% B。采集時(shí),柱溫設(shè)置為35" ℃,流速為0.4 mL/mL。
1.3.3 內(nèi)生真菌發(fā)酵濾液質(zhì)譜特征分析
離子源的遮蔽氣壓為2.07×105 Pa,源溫度650" ℃。正離子模式時(shí)電壓為5 000 V,負(fù)離子模式時(shí)為-4 500 V。數(shù)據(jù)采集模式為IDA(信息依賴性采集)模式。質(zhì)譜儀檢測器有4個(gè)通道,脈沖射頻電的頻率為11 kHz;檢測器的檢測頻率為40 GHz;每次掃描的粒子信號(hào)以4個(gè)通道分別記錄共4次后合并轉(zhuǎn)化成數(shù)據(jù)。在采集過程中,每間隔20個(gè)樣本校正1次儀器的精度。同時(shí),每間隔10個(gè)樣本掃描1次質(zhì)控(Quality control,QC)樣本(一種特殊樣本,從每個(gè)待測樣本中取相同體積的提取物混合)。在整批測試中,QC間的質(zhì)量差距被用來糾正系統(tǒng)誤差。
1.3.4 內(nèi)生真菌發(fā)酵濾液多元統(tǒng)計(jì)分析
對(duì)于樣本質(zhì)譜峰的響應(yīng)強(qiáng)度,使用峰面積歸一化法來進(jìn)行規(guī)格化,得到歸一化的數(shù)據(jù)矩陣,將數(shù)據(jù)矩陣導(dǎo)入SIMCA-P+14.0軟件包,并給出用主成分分析(Principal component" analysis,PCA)與偏最小二乘判別分析(Partial least-squares discrimination analysis,PLS-DA)結(jié)果,來區(qū)分各組間代謝輪廓的總體差異,尋找組間差異代謝物。PLS-DA分析中,變量權(quán)重值(Variable important in projection,VIP)大于1的變量被認(rèn)為是差異 變量。
1.3.5內(nèi)生真菌代謝物注釋分析
通過杭州聯(lián)川生物云平臺(tái)In-House數(shù)據(jù)庫鑒定的所有代謝物與KEGG數(shù)據(jù)庫進(jìn)行比較,獲得數(shù)據(jù)庫注釋信息,將代謝物與KEGG Compound數(shù)據(jù)庫比對(duì),獲得分類信息和KEGG功能通路。
1.3.6 差異代謝物篩選及代謝通路分析
采用t檢驗(yàn)結(jié)合PLS-DA分析方法,篩選內(nèi)生真菌差異代謝物(同時(shí)滿足VIP≥1.0、q≤0.05和FC≥2.0或FC≤0.5)。通過比較KEGG Compound、HMDB和LIPID MAPS數(shù)據(jù)庫,尋找差異代謝物的KEGG ID,再進(jìn)行代謝通路注釋和富集分析,獲得代謝通路圖,并分析通路功能。
1.4 數(shù)據(jù)分析
統(tǒng)計(jì)分析軟件使用SPSS 23.0。采用單因素方差分析(One-way ANOVA)對(duì)抑制率進(jìn)行分析,多重比較使用Tukey HSD檢驗(yàn)法。代謝產(chǎn)物數(shù)據(jù)分析在Excel 2019中進(jìn)行,并計(jì)算相應(yīng)的統(tǒng)計(jì)學(xué)參數(shù),代謝組分析在杭州聯(lián)川生物云平臺(tái)上完成。
2 結(jié)果與分析
2.1 球毛殼菌發(fā)酵濾液的活性
由圖1-A可知,球毛殼菌發(fā)酵濾液在4 ℃條件下貯藏15 d、30 d和45 d后,其對(duì)共生菌 A.areolatum的抑制活性并未隨貯藏時(shí)間的延長而抑制率下降。即在45 d內(nèi),球毛殼菌發(fā)酵濾液均具有較高的抑菌活性。
球毛殼菌發(fā)酵濾液在經(jīng)過15 min、30 min和45 min的紫外線照射后,其抑菌活性并未出現(xiàn)明顯的改變(圖1-B)。在60 ℃條件下水浴處理 15 min、30 min和45 min后不會(huì)影響球毛殼菌發(fā)酵濾液的抑菌活性(圖1-C)。在100 ℃條件下水浴處理15 min不會(huì)影響發(fā)酵濾液活性;水浴 30 min和45 min后共生真菌A.areolatum菌絲僅有少量生長,但與15 min相比差異不顯著(圖1-D)。
2.2 內(nèi)生真菌發(fā)酵濾液代謝組學(xué)檢測結(jié)果
2.2.1 內(nèi)生真菌發(fā)酵濾液的總離子流比較
總離子流圖(TIC)以時(shí)間點(diǎn)為橫坐標(biāo),每個(gè)時(shí)間點(diǎn)質(zhì)譜中所有離子總強(qiáng)度為縱坐標(biāo),每種顏色代表一個(gè)樣本。由圖2可知,混合TIC圖重疊性高,即保留時(shí)間和峰值均一致,說明試驗(yàn)儀器是穩(wěn)定的,本試驗(yàn)檢測的系統(tǒng)誤差在可控范圍內(nèi)。
2.2.2 整體主成分分析以及系統(tǒng)穩(wěn)定性
球毛殼菌和大伏革菌樣本間分布區(qū)別明顯,離散程度較小,并且質(zhì)控樣本聚集在一起(圖3-A),表明整個(gè)分析系統(tǒng)穩(wěn)定性良好,試驗(yàn)結(jié)果可靠性高。球毛殼菌和大伏革菌的主成分分析(PCA)表明,2種內(nèi)生真菌樣本間的重復(fù)性較好,代謝物存在顯著差異(圖3-B)。
通過偏最小二乘判別分析(PLS-DA)表明(圖4-A),不同內(nèi)生真菌組合模型參數(shù)中對(duì)矩陣解釋率R2為0.999,模型的預(yù)測能力Q2為 0.995,模型的解釋率R2和預(yù)測率Q2均大于 0.5,符合對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)模型的預(yù)期,說明本研究所建立的PLS-DA模型可以很好的解釋球毛殼菌和大伏革菌的代謝產(chǎn)物的差異。PLS-DA模型的置換驗(yàn)證(如圖4-B)所示,模型中的Q2從右向左依次降低,說明模型具有較好的預(yù)測能力并且有效可用,能夠用于球毛殼菌和大伏革菌發(fā)酵濾液代謝物的差異分析。
2.2.3 球毛殼菌的抗真菌差異代謝產(chǎn)物篩選
PLS-DA模型中VIP值(VIP≥1)與q值(P值校正后的結(jié)果,可統(tǒng)計(jì)差異的顯著性)(q≤0.05)和FC(變化倍數(shù)Fold change)(FC≥2.0或FC≤ 0.5)綜合分析確定標(biāo)志性差異代謝產(chǎn)物。共篩選得到球毛殼菌的差異代謝產(chǎn)物213種,其中15種差異代謝產(chǎn)物對(duì)真菌有抑制作用。由表1可知,這些差異代謝物主要是由有機(jī)酸、黃酮類、酚類、有機(jī)雜環(huán)化合物、生物堿組成,包括異阿魏酸、香草酸、大麻二酚、甘氨酸、大黃素、丹皮酚等。
2.2.4 差異代謝物通路分析
球毛殼菌發(fā)酵濾液差異代謝產(chǎn)物共富集得到59條差異代謝通路,篩選到的15種含抑菌作用的化合物可檢測到5條代謝通路,這些代謝通路主要涉及不同環(huán)境下的微生物代謝(Microbial metabolism in diverse environments)、次生代謝產(chǎn)物的生物合成(Biosynthesis of secondary metabolites)、精氨酸和脯氨酸代謝(Arginine and proline metabolism)、苯丙氨酸代謝(Phenylalanine metabolism)、雙組分系統(tǒng)(Two-component system)(表2)。
將q值≤0.05的差異代謝通路繪制成氣泡圖(圖5)可知,共8條差異代謝通路,分別是ABC轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(ABC transporters)、檸檬酸循環(huán)(TCA循環(huán)) Citrate cycle(TCA cycle)、纈氨酸、亮氨酸和異亮氨酸生物合成(Valine,leucine and isoleucine biosynthesis)、酪氨酸代謝(Tyrosine metabolism)、苯丙氨酸代謝(Phenylalanine metabolism)、氨基苯甲酸鹽降解(Aminobenzoate degradation)、丁酸代謝(Butanoate metabolism)和C5支鏈二元酸代謝(C5-Branched dibasic acid metabolism)。
差異代謝物聚類分析可知(圖6),球毛殼菌與大伏革菌發(fā)酵產(chǎn)物的不同生物重復(fù)之間聚類效果顯著,明顯劃分成4個(gè)區(qū)域冷暖色差,聚集的主要幾類代謝物上調(diào)和下調(diào)變化規(guī)律與菌種緊密相關(guān)。這說明相比于大伏革菌代謝產(chǎn)物,球毛殼菌代謝產(chǎn)物的變化明顯。2種內(nèi)生真菌樣本組內(nèi)差異不顯著這與差異倍數(shù)值篩選出的結(jié)果一致(表1)。
3 討" 論
松樹蜂作為一種典型的蟲菌共生類蛀干害蟲,其共生真菌A.areolatum的生長會(huì)受到包括寄主內(nèi)生真菌在內(nèi)的諸多外界微生物干擾。以往對(duì)于蟲菌共生類害蟲的防治主要集中于害蟲本身[15],若通過抑制共生菌生長從而影響害蟲的正常生長發(fā)育,則可同樣達(dá)到防治害蟲的目的。
前人研究認(rèn)為C.globosum是一種高效的生防真菌,其產(chǎn)生的差異代謝物質(zhì)和一些酶類能夠抑制病原菌菌絲生長[16]。此外,C.globosum產(chǎn)生的真菌毒素和一些揮發(fā)性有機(jī)物也能抑制真菌孢子萌發(fā)[17]。本研究發(fā)現(xiàn),C.globosum作為松樹蜂寄主樟子松的優(yōu)勢內(nèi)生真菌,其發(fā)酵濾液可完全抑制A.areolatum的菌絲生長,且抑菌活性不受儲(chǔ)存時(shí)間、紫外線和高溫的影響。秦建春等[18]研究發(fā)現(xiàn)銀杏的內(nèi)生真菌C.globosum發(fā)酵濾液可完全抑制小麥赤霉病菌(Fusarium graminearum)的菌絲生長和孢子萌發(fā)。趙連仲[19]研究認(rèn)為,從土壤中分離的球毛殼菌對(duì)小麥赤霉病菌(F.graminearum)、黃瓜褐斑病菌(Corynespora cassiicola)和蘋果斑點(diǎn)落葉病菌(Alternaria mali)等植物病原真菌均有較好的抗菌活性。這與本研究結(jié)果相似,說明球毛殼菌具有一定生防潛力,是挖掘抗菌活性物質(zhì)的重要資源。
球毛殼菌能產(chǎn)生多種活性代謝產(chǎn)物,如具有細(xì)胞毒活性的Globosumones和Chaetopyranins類化合物 [20-22],以及具有抑菌活性的Chaetoglobosins和Chaetomugilins類化合物等[12,23]。本試驗(yàn)采用LC-MS分析平臺(tái)對(duì)球毛殼菌代謝產(chǎn)物進(jìn)行篩選發(fā)現(xiàn),共有抗真菌作用的差異代謝產(chǎn)物15種,主要包括在有機(jī)酸、黃酮類、酚類、有機(jī)雜環(huán)化合物和生物堿5類化合物中。有機(jī)酸能夠抑制多種霉菌、細(xì)菌和酵母,具有廣譜性[24]。本試驗(yàn)篩選到的有機(jī)酸類代謝產(chǎn)物包括異阿魏酸、香草酸、甘氨酸、4-胍基丁酸等,前人研究表明,這些物質(zhì)均具有抑菌作用[25-33]。黃酮類化合物是一類重要的植物次生代謝產(chǎn)物,其抑菌范圍較廣[34]。本試驗(yàn)中篩選得到的大黃素對(duì)金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)、白喉?xiàng)U菌(Corynebacterium diphtheriae)、炭疽桿菌(Bacillus anthracis)等均具有較強(qiáng)的抑制效果[35]。球毛殼菌差異代謝產(chǎn)物中的酚類化合物有丹皮酚和大麻二酚。研究表明丹皮酚是常見的植物次生代謝產(chǎn)物,表現(xiàn)出廣譜的抗菌活性[36]。大麻二酚具有廣泛的生物活性,如抗氧化[37]、抑菌等[38]。有機(jī)雜環(huán)化合物苯并呋喃具有良好的生理活性,如抗病毒、抗腫瘤、抗菌、抗自由基、抗氧化作用等[39]。此外,生物堿類化合物龍葵素和二甲喹唑啉C均有抗菌作用[40]。例如:龍葵素對(duì)真菌、細(xì)菌等病原微生物有一定的抑制和毒害作用,尤其是對(duì)馬鈴薯抗早疫病、晚疫病病菌的抑制效果明顯[41]。本試驗(yàn)主要是通過代謝組學(xué)技術(shù)檢測到了球毛殼菌中潛在的抑菌物質(zhì),初步揭示了球毛殼菌發(fā)酵濾液對(duì)松樹蜂共生真菌的抑制作用。然而,目前筆者僅通過LC-MS篩選出了球毛殼菌的抑菌差異代謝產(chǎn)物,對(duì)于各種差異代謝物的具體功能及其參與的代謝途徑尚未明確,需更進(jìn)一步分析和探討。后續(xù)試驗(yàn)通過選取差異倍數(shù)較大的組分進(jìn)行分析,并檢測其活性,以期精準(zhǔn)防控松樹蜂的危害。
4 結(jié)" 論
綜上所述,樟子松內(nèi)生真菌球毛殼菌的發(fā)酵濾液可以完全抑制松樹蜂共生真菌A.areolatum的生長,且該菌發(fā)酵濾液的抑菌活性穩(wěn)定。通過研究內(nèi)生真菌發(fā)酵濾液差異代謝產(chǎn)物發(fā)現(xiàn),共篩選到213種差異代謝產(chǎn)物,59條差異代謝通路,其中潛在的抑菌物質(zhì)有5類15種,對(duì)應(yīng)5條代謝通路,抑菌活性物質(zhì)包括異阿魏酸、香草酸、大麻二酚、甘氨酸、大黃素、丹皮酚、4-胍基丁酸、隱綠原酸、苯并呋喃、4-羥基苯甲酸、綠原酸、琥珀酸、4-甲氧基肉桂酸、龍葵素、二甲喹唑啉C。本研究結(jié)果表明球毛殼菌發(fā)酵濾液代謝產(chǎn)物含有較多具抑菌作用的化學(xué)物質(zhì),這可能是球毛殼菌發(fā)酵濾液可以完全抑制松樹蜂共生真菌菌絲生長的原因,有望成為松樹蜂共生真菌的高效抑制劑。
參考文獻(xiàn) Reference:
[1] 王鄭通,楊華巍,李碧鷹,等.松樹蜂毒素腺解剖結(jié)構(gòu)和毒素成分[J].東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2021,49(3):148-153.
WANG ZH T,YANG H" W,LI B Y,et al.Anatomical structure of venom gland and venom composition analysis of Sirex noctilio [J].Journal of Northeast Forestry University,2021,49(3):148-153.
[2]王 明,王立祥,李大鵬,等.網(wǎng)隙裂粉韌革菌與松樹蜂共生關(guān)系的研究進(jìn)展[J].溫帶林業(yè)研究,2020,3(2):1-11.
WANG M,WANG L X,LI D P,et al.Advances in the study of mutualism relationship between Amylostereum areolatum and Sirex noctilio[J].Journal of Temperate Forestry Research,2020,3(2):1-11.
[3]TAYLOR K L.The Sirex Woodwasp:Ecology and Control of an Introduced Forest Insect[M]∥KITCHING R L,JONES R E.The Ecology of Pests-Some Australian Case Histories.Melbourne Australia:CSIRO,1981:231-248.
[4]FITZA K N,TABATA M,KANZAKI N,et al.Host specificity and diversity of Amylostereum associated with Japanese siricids[J].Fungal Ecology,2016,24:76-81.
[5]李 遷,范 佳,孫京瑞,等.昆蟲內(nèi)共生菌-昆蟲-植物互作關(guān)系研究進(jìn)展[J].植物保護(hù)學(xué)報(bào),2016,43(6):881-891.
LI Q,F(xiàn)AN J,SUN J R,et al.Research progress in the interactions among the plants insects and endosymbionts[J].Journal of Plant Protection,2016,43(6):881-891.
[6]閆鵬勇,顧 穎,馬安凱,等.三種松樹內(nèi)生真菌的分離鑒定及其對(duì)紅脂大小蠹伴生真菌的拮抗作用[J].微生物學(xué)通報(bào),2023,50(6):2405-2421.
YAN P Y,GU Y,MA AN K,et al.Isolation and identification of endophytic fungi of three pine species and their antagonistic effect on the associated fungi of Dendroctonus valens[J].Microbiology China,2023,50(6):2405-2421.
[7]WANG L X,REN LL,LIU X B,et al.Effects of endophytic fungi in Mongolian pine on the selection behavior of woodwasp (Sirex noctilio) and the growth of its fungal symbiont[J].Pest Management Science,2019,75:492-505.
[8]王立祥,任利利,石 娟,等.松樹蜂入侵樟子松的內(nèi)棲真菌區(qū)系[J].菌物學(xué)報(bào),2016,36(4):444-453.
WANG L X,REN L" L,SHI J,et al.The mycobiota of Pinus sylvestris var.mongolica trunk invaded by Sirex noctilio[J].Mycosystema,2016,36(4):444-453.
[9]王立祥,崔樹鵬,孔露露,等.內(nèi)生真菌對(duì)新渡戶樹蜂共生真菌的抑制作用[J].林業(yè)科學(xué),2022,58(5):113-120.
WANG L X,CUI SH P,KONG L" L,et al.Inhibitory effects of endophytic fungi in host tree on the symbiotic fungi of Sirex nitobei (Hymenoptera:Siricidae) [J] Scientia Silvae Sinicae,2022,58(5):113-120.
[10] 王 瑞,譚 軍,樊 俊,等.基于代謝組學(xué)分析青枯病煙田土壤代謝標(biāo)志物[J].中國煙草學(xué)報(bào),2022,28(5):104-112.
WANG R,TAN J,F(xiàn)AN J,et al.Analysis of metabolic markers in soil with tobacco bacterial wilt based on metabolomics[J].Acta Tabacaria Sinica,2022,28(5):104-112.
[11]STITT M,SULPICE R,KEURENTJES J.Metabolic networks:how to identify key components in the regulation of metabolism and growth[J].Plant" Physiology,2010, 152(2):428-444.
[12]DING G,SONG Y C,CHEN J R,et al.Chaetoglobosin U,a cytochalasan alkaloid from endophytic Chaetomium globosum IFB-E019[J].Journal of Natural Products,2006,69(2):302-304.
[13]MOMESSO L D S,KAWANO C Y,RIBEIRO P H,et al.Chaetoglobosins produced by Chaetomium globosum,endophytic fungus found in association with Viguiera robusta Gardn (Asteraceae)[J].Quimica Nova,2008,31:1680-1685.
[14]CHEN M,LI C,QIU Y S,et al.Antagonistic mechanisms and related properties of strain H5 against black-rot disease of Dracaena sanderiana[J].Microbiology,2008, 35(4):529-532.
[15]李承錦,趙文霞,淮穩(wěn)霞,等.我國新入侵害蟲長林小蠹研究進(jìn)展[J].環(huán)境昆蟲學(xué)報(bào),2023,45(4):850-861.
LI CH J,ZHAO W X,HUAI W X,et al.Research progress on Hylurgus ligniperda Fabricius (Coleoptera:Scolytidae),a new invasive species in China [J].Journal of Environmental Entomology,2023,45(4):850-861.
[16]廖宏娟,張志斌,江玉梅,等.球毛殼菌對(duì)植物病原真菌和根結(jié)線蟲的生物防治潛力[J].天然產(chǎn)物研究與開發(fā),2022,34(6):1076-1089.
LIAO H J,ZHANG ZH B,JIANG Y M,et al.Biocontrol potential of Chaetomium globosum against plant pathogenic fungi and root-knot nematodes:a review [J].Natural Product Research and Development,2022,34(6):1076-1089.
[17]SEKITA S,YOSHIHIRA K,NATOR S.Chaetoglobos-ins,cytotoxic 10-(indol-3-yl)-(13) cytochalasans from Chaetomium spp.IV.C-nuclear magnetic resonance spectra and their application[J].Chemical amp; Pharmaceutical Bulletin,1983,31:490-498.
[18]秦建春,白 莉,李曉明,等.銀杏內(nèi)生菌Chaetomium globosum ZY-22次生代謝產(chǎn)物分離鑒定[J].西北植物學(xué)報(bào),2009,29(6):1264-1268.
QIN J CH,BAI L,LI X M,et al.Isolation and identification of the metabo-lites" produced by endophytic fungus Chaetomium globosum ZY-22" from Ginkgo biloba[J].Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica,2009,29(6):1264-1268.
[19]趙連仲.生防毛殼菌的分離鑒定及其抗菌活性研究[D].濟(jì)南:山東師范大學(xué),2014.
ZHAO L ZH.Isolation,identification and antifungal" activity of the biocontrol strain Chaetomium spp[D].Jinan:Shandong Normal University,2014.
[20]BASHYAL B P,WIJERATNE E K,F(xiàn)AETH S H,et al.Globosumones A-C,cytotoxic orsellinic acid esters from the sonoran desert endophytic fungus Chaetomium globosum[J].Journal of Natural Products,2005,68(5):724-728.
[21]WANG S,LI X M,TEUSCHER F,et al.Chaetopyranin,a benzaldehyde derivative,and other related metabolites from Chaetomium globosum,an endophytic fungus derived from the marine red alga Polysiphonia urceolata[J].Journal of Natural Products,2006,69(11):1622-1625.
[22]張文慧,肖依文,梁偉中,等.內(nèi)生真菌Chaetomium globosum S108次生代謝產(chǎn)物分離及黑色素瘤抑制活性研究[J].天然產(chǎn)物研究與開發(fā),2021,33(11):1854-1859.
ZHANG W H,XIAO Y W,LIANG W ZH,et al.Isolation of secondary metabolites from endophytic fungus Chaetomium globosum S108 and its antimelanoma activity[J].Natural Product Research and Development,2021, 33(11):1854-1859.
[23]QIN J C,ZHANG Y M,GAO J M,et al.Bioactive metabolites produced by Chaetomium globosum,an endophytic fungus isolated from Ginkgo biloba[J].Bioorganic amp; Medicinal Chemistry Letters,2009,19(6):1572-1574.
[24]張 軍,田子罡,王建華,等.有機(jī)酸抑菌分子機(jī)理研究進(jìn)展[J].畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào),2011,42(3):323-328.
ZHANG J,TIAN Z G,WANG J H,et al.Advances in antimicrobial molecular mechanism of organic acids[J].Acta Veterinaria et Zootechnica Sinica,2011,42(3):323-328.
[25]張芳英,穆麗娟,楊繼章,等.蜂膠提取物抗菌作用的研究進(jìn)展[J].中國藥房,2011,22(11):1041-1043.
ZHANG F Y,MU L J,YANG J ZH,et al.Advances in the antibacterial effects of propolis extracts[J].Chinese Pharmacy,2011,22(11):1041-1043.
[26]付美玲,張文治,白麗明,等.落葉松針葉化學(xué)成分研究[J].廣西植物,2020,40(5):654-662.
FU M L,ZHANG W ZH,BAI L M,et al.Chemical constituents of Larix gmelinii needles[J].Guihaia,2020, 40(5):654-662.
[27]王 輝,劉長遠(yuǎn),趙奎華,等.辣椒疫病拮抗真菌ASD菌株發(fā)酵優(yōu)化研究[J].吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2012,34(3):264-269.
WANG H,LIU CH Y,ZHAO K H,et al.Study on fermentation optimization of ASD strain against" pepper phytophthora blight[J].Journal of Jilin Agricultural University,2012,34(3):264-269.
[28]劉 榮,卿星赤,馮智博,等.高分子材料接枝抗菌功能改性方法研究現(xiàn)狀[J].高分子通報(bào),2023,36(5):564-573.
LIU R,QING X CH,F(xiàn)ENG ZH B,et al.Progress of antibacterial modification of" polymer" materials by grafting[J].Polymer Bulletin,2023,36(5):564-573.
[29]XU" Z,CAO Q,MANYANDE A,et al.Analysis of the binding selectivity and inhibiting mechanism of chlorogenic acid isomers and their interaction with grass carp endogenous lipase using multi-spectroscopic,inhibition kinetics and modeling methods[J].Food Chemistry,2022,382:132106.
[30]張麗娟,張春樂,宋康康,等.3-羥基苯甲酸對(duì)酪氨酸酶的抑制作用和抑菌作用[J].廈門大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2006,45(5):705-708.
ZHANG L J,ZHANG CH L,SONG K K,et al.Inhibition of 3-hydroxyl benzoic acid on tyrosianse and its bacteriostatic activity [J].Journal of Xiamen University (Natural Science),2006,45(5):705-708.
[31]陳光英,莫崢嶸,宋鑫明,等.青梅屬植物的化學(xué)成分及藥理作用研究進(jìn)展[J].海南師范大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2008,56(2):180-183.
CHEN G Y,MO ZH R,SONG X M,et al.Advances in the studies on chemical constituents and pharmacological effect of" Vatica" genus[J].Journal of Hainan Normal" University(Natural Science),2008,56(2):180-183.
[32]CHEN Y D,ZHAO C,ZHU X Y,et al.Multiple inhibitory effects of succinic acid on Microcystis aeruginosa:morphology,metabolomics,and gene expression[J].Environmental Technology,2022,43(20):3121-3130.
[33]黃翠欣,顧 家,熊萬明,等.兩個(gè)含對(duì)羧甲氧基肉桂酸鋅(Ⅱ)/鎘(Ⅱ)配合物的合成、晶體結(jié)構(gòu)與抑菌活性[J]. 無機(jī)化學(xué)學(xué)報(bào),2021,37(7):1197-1203.
HUANG C X,GU J,XIONG W M,et al.Synthesis,crystal structures and antibacterial activities of two complexes of Zn(Ⅱ)/Cd(Ⅱ)" assembled by 4 carboxymethoxycinnamic acid" ligand[J].Chinese Journal of Inorganic Chemistry,2021,37(7):1197-1203.
[34]王 嘉,梁曉潔,高 暝,等.千年桐根部黃酮類化合物生物合成對(duì)枯萎病菌侵染的響應(yīng)[J].林業(yè)科學(xué),2022, 58(2):159-170.
WANG J,LIANG X J,GAO M,et al.Response of flavonoids biosynthesis in roots of Vernicia montana to Fusarium wilt" infection[J].Scientia Silvae Sinicae,2022, 58(2):159-170.
[35]HAZNI H,AHMAD N,HITOTSUYANAGI Y,et al.Phytochemical constituents from Cassia alata with inhibition against methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA)[J].Planta Medica,2008,74(15):1802-1805.
[36]屈 歡,馬 莉,惠 敏,等.丹皮酚及百里酚磺酸酯類衍生物的合成及其抑菌活性[J].農(nóng)藥,2021,60(4):250-256.
QU H,MA L,HUI M,et al.Synthesis of paeonol and thymol sulfonate derivatives and their" antifungal" activities[J].Agrochemicals,2021,60(4):250-256.
[37]JASTRZAB A,JAROCKA-KARPOWICZ I,MARKOWSKA A,et al.Antioxidant and anti-inflammatory effect of cannabidiol contributes to the decreased lipid peroxidation of keratinocytes of rat skin exposed to UV radiation[J].Oxidative Medicine and Cellular Longevity,2021(9):1-13.
[38]MARTINENGHI L D,JNSSON R,LUNDT,et al.Isolation,purification,and antimicrobial characterization of cannabidiolic acid and cannabidiol from Cannabis sativa L[J].Biomolecules,2020,10(6):900.
[39]葉 姣,顏曉維,張翠央,等.環(huán)丙魚藤雙腙的合成與抑菌活性[J].有機(jī)化學(xué),2015,35(2):396-403.
YE" J,YAN X W,ZHANG C Y,et al.Synthesis and fungicidal activity of the cycloproply derris dihydrazone derivatives[J].Chinese Journal of Organic Chemistry,2015, 35(2):396-403.
[40]KHAJOEE N F,KHOSRAVAN M,EBRAHIMIPOUR S Y,et al.A mixed-ligand quinazoline-based Ni (II) Schiff base complex:Synthesis,characterization,crystal structure,antimicrobial investigation and catalytic activity for the synthesis of 2H-indazolo [2,1-b] phthalazine-triones[J].Applied Organometallic Chemistry,2018,32(1):e3907.
[41]李志文,周寶利,劉 翔,等.茄科植物體內(nèi)糖苷生物堿的生理生態(tài)活性研究進(jìn)展[J].上海農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2011,27(3):129-134.
LI ZH W,ZHOU B L,LIU X,et al.The progress of researching into physiological and ecological activities of glycoalkaloid in Solanaceae[J].Acta Agriculturae Shanghai,2011,27(3):129-134.
Antibacterial Activity of Fermentation Filtrate from Chaetomium"globosum" against Symbiotic Fungi of Sirex" noctilio
WANG Xuan1,CUI Shupeng1,WANG Gaijin1,YANG Zongji1,SHANG Suqin1,LUO Youqing2,F(xiàn)AN Longfei1 and WANG Lixiang1
(1.College of Plant Protection,Gansu Agricultural University,Lanzhou 730070,China; 2.Beijing Key Laboratory for Forest Pest Control,Beijing Forestry University,Beijing 100083,China)
Abstract To" investigate the inhibitory effect of the fermentation filtrate of the endophytic fungus Chaetomium globosum isolated from Pinus sylvestris var.mongolica on symbiotic fungus Amylostereum areolatum of the significant invasive pest Sirex noctilio, and to screen differential metabolites with high inhibitory capacity,aiming at effectively controlling S.noctilio. The antibacterial activity of C.globosum fermentation filtrate was determined first,and then,potentially antibacterial substances were screened using a metabolomics approach.The results showed that the fermentation filtrate of" C.globosum completely inhibited the mycelial growth of A.areolatum,the symbiotic fungus of" S.noctilio,with stable antibacterial activity unaffected by storage time,ultraviolet rays and temperature.A total of 213 metabolites were screened out in C.globosum fermentation filtrate,including 15 potentially antibacterial substances namely isoferulic acid,vanillic acid,cannabipiperidiethanone,glycitein,emodin,paeonol,4-guanidinobutanoic acid,cryptochlorogenic acid,benzofuran,3-caffeoylquinic acid,4-hydroxybenzoic acid,chlorogenic acid,succinic acid,4-methoxycinnamic acid,solasodine and dictyoquinazol C.KEGG enrichment analysis of differential metabolites showed significant enrichment in pathways including" ABC" transporters,citrate cycle (TCA cycle),valine,leucine and isoleucine biosynthesis,tyrosine metabolism,phenylalanine metabolism,aminobenzoate degradation,butanoate metabolism and C5-branched dibasic acid metabolism.
Studies have shown that the fermentation solution of C.globosum inhibits the mycelial growth of the symbiotic fungus A.areolatum of S.noctilios,with stable inhibition activity,and the potential inhibition substances can be screened.
Key words Sirex noctilio; Chaetomium globosum;Symbiotic fungi; Metabolomics; Differential metabolites
Received" 2023-04-19""" Returned 2023-08-21
Foundation item The National Natural Science Foundation of China (No.32160379); The Natural Science Foundation of Gansu Province (No.20JR10R526); The Fuxi Young Talents Training Program Gansu Agricultural University (No.Gaufx-04Y08).
First author WANG Xuan,female,master" student.Research area:integrated control of wood-boring pests in forest trees .E-mail:wangxuan3639@163.com
Corresponding"" author WANG" Lixiang,male,associate professor.Research area:monitoring and control of wood-boring pests and invasive forestry organisms.E-mail:wanglx@gsau.edu.cn
(責(zé)任編輯:郭柏壽 Responsible editor:GUO Baishou)
基金項(xiàng)目:國家自然科學(xué)基金(32160379);甘肅省自然基金(20JR10R526);甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)伏羲人才專項(xiàng)(Gaufx-04Y08)。
第一作者:王 萱,女,碩士研究生,研究方向?yàn)榱帜局珊οx綜合防控。Email:wangxuan3639@163.com
通信作者:王立祥,男,副教授,研究方向?yàn)榱帜局珊οx和林業(yè)入侵生物的監(jiān)測與防控。E-mail:wanglx@gsau.edu.cn